2014年3月28日
フローサイトメトリーによる免疫細胞の亜集団と定義されたナノ粒子の相互作用の解析。
本手順の目的は、フローサイトメトリーを用いて、蛍光ナノ粒子と初代免疫細胞のサブポピュレーションとの相互作用を検出することである。まず、目的の細胞をナノ粒子で処理し、次に細胞特異的な表面マーカーに対する抗体で細胞を標識し、フローサイトメトリーにより解析を行うことでこれを達成する。
最終的に、ナノ粒子と個々の免疫細胞集団との相互作用を測定できます。顕微鏡観察などの既存の手法に対するこの技術の主な利点は、ナノ粒子によって誘発される蛍光強度の変動を、非付着性細胞集団において定量化できることです。血液白血球または精製単球におけるナノ粒子の内部移行を調べるには、まず12ウェルプレートの各ウェルに、目的の細胞を5 × 10⁵個、1 mLあたりの濃度で播種します。
次に、調製したばかりの蛍光シリカナノ粒子作動液を各実験ウェルに10 µLずつ加え、同時に未処理のコントロールウェルにも同量の完全培地を加えます。37 °Cで1時間内部に取り込ませた後、サンプルを個別の1.5 mLポリプロピレンチューブに移し、室温、6,000 ×gで3分間遠心分離します。その後、Blue IncuBateを用い、各細胞懸濁液100 µLに対して1:11の比率で10 µLのヒト抗CD14抗体をランニングバッファー中で加え、4 °Cで10分間インキュベートして細胞を染色します。1 mLのランニングバッファーで未結合の抗体を洗浄した後、細胞を200 µLの新鮮なランニングバッファーに再懸濁し、フローサイトメトリー分析に供します。
次に、スペクトルのスピルオーバー補正を行うために、フローサイトメトリーソフトウェアの装置設定ボックスを開き、抗体未標識のナノ粒子フリーサンプルを低流速で測定します。蛍光ナノ粒子が存在するとサイドスキャッターに干渉する可能性があるため、補正設定の調整は本手順の中で最も困難な部分となります。確実に成功させるには、目的の細胞集団のゲートを定義する必要があります。電圧チャンネルを調整して、フォワードスキャッターとサイドスキャッターを手動で調整します。その後、目的の細胞集団を囲むように、適切に十分な大きさのゲートを作成します。
別の未標識サンプルをロードし、装置設定ボックス内のコンペンセーション(補正)タブを開きます。蛍光陽性細胞集団と陰性細胞集団において、スピルオーバーチャンネルの蛍光強度がほぼ等しくなるまで、データ取得中にコンペンセーション係数を調整します。最後に、単色染色した各蛍光色素コントロールチューブのコンペンセーション調整を完了した後、ナノ粒子処理サンプルを測定します。ナノ粒子に対する白血球の挙動をより詳細に特性評価するため、上述した方法で内部取り込みアッセイを実施しました。
例えば、この代表的な実験では、PBMCの分離後、前方散乱光および側方散乱光によって、3つの主要な血液白血球サブポピュレーションが明確に同定されました。さらに、fz 二酸化ケイ素処理後、リンパ球、単球、および顆粒球は、蛍光強度で示されるように、異なるナノ粒子内部移行率を示しました。これらの画像では、pbmcから精製された一次 CD 14 陽性単球におけるナノ粒子の内部移行が示されています。
これらの散布図は、fitzの二酸化ケイ素ナノ粒子存在下におけるCD 14陽性単球を示しています。ヒストグラムは、蛍光強度として発現したfitzy陽性細胞の定量結果を表しています。同様の内部移行実験が、未処理の細胞を陰性対照として、fitzの二酸化ケイ素ナノ粒子を濃度を上げて処理したTP one単球を用いて実施されました。
ドットプロットは、ナノ粒子の細胞内への取り込み後、TP 1細胞株において前方散乱光は不変である一方で、側方散乱光が用量依存的に増加することを示しています。これらのグラフのデータは、fitzの二酸化ケイ素ナノ粒子による処理が、細胞内顆粒性の増強によって特徴づけられる、単球への用量依存的な取り込みを誘導することを示唆しています。免疫細胞とナノ粒子の相互作用についてさらに詳しく調べるため、ミクログリアをin vitroで7日間培養し、ナノ粒子とともに1時間インキュベートしました。蛍光顕微鏡観察により、多数のGFP陰性の非接着性アストロサイトと、一部のGFP陽性細胞を含む、混合一次グリア細胞培養であることが示されました。
この代表的な実験では、CD 11 B抗体を用いた単一の染色により、フローサイトメトリーで3つのグリア細胞サブポピュレーションを区別することができました。具体的には、CD 11 B陰性かつGFP陰性の星状細胞およびその他のグリア細胞、CD 11 B陽性かつGFP陰性のミクログリア細胞、そしてCD 11 B陽性かつGFP陽性のサブポピュレーションです。後者の2つのサブポピュレーションはナノ粒子を取り込むことができ、GFP陽性集団ではその効率がわずかに上昇しています。ナノ粒子の取り込みは、この画像に示すロッド状二酸化ケイ素ナノ粒子を用いた共焦点顕微鏡観察によってさらに確認することが可能です。
この手順を行う際は、蛍光色素の退色を防ぐためにサンプルを遮光し、抗体インキュベーション中はサンプルを4°Cに保持することが重要です。本手順の後、共焦点顕微鏡法などの他の手法を用いることで、ナノ粒子の細胞内局在に関するさらなる疑問を明らかにすることができます。
本研究では、フローサイトメトリーを用いて、蛍光ナノ粒子と初代免疫細胞のサブポピュレーションとの相互作用に焦点を当てます。この手法により、さまざまな免疫細胞におけるナノ粒子の細胞内取り込みを定量化することができ、その挙動に関する知見を得ることが可能です。
この手法により、一次免疫細胞のサブポピュレーションにおけるナノ粒子の内部移行を定量的に評価することが可能となり、ナノセラピューティクス開発におけるターゲットのバリデーションおよびメカニズムのリスク低減を支援します。用量依存的かつ細胞型特異的な取り込みデータを提供することで、初期探索段階における予測の信頼性を高め、ナノ粒子ベースの介入策に関するゴー/ノーゴー(続行か中止か)の意思決定に寄与します。本アプローチは、ナノ粒子と細胞の相互作用を、ポートフォリオの優先順位付けに活用可能な再現性のある指標へと変換するという、探索段階における重要な課題を解決します。
本手法は、初期のターゲット結合スクリーニングから前臨床段階のメカニズム評価に至る創薬のコンティニュアムに適合しており、特に免疫細胞との相互作用プロファイルが極めて重要となる免疫調節ナノセラピーに有用です。