Name: マイクロピラーとマイクロ流体デバイス内のバイオフィルムストリーマ形成のためのプロトコル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-20T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 19 s
Description: 学ぶマイクロピラー付きマイクロ流体デバイスを用いたPseudomonas fluorescensのバイオフィルムストリーマ形成プロトコル。蛍光顕微鏡による時系列観察で動態を可視化し、多孔質媒体における細菌挙動の理解に貢献します。

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著者は、細菌株を提供してくださったカルガリー大学生物科学部のハワード・セリ教授に感謝します。A. KumarはNSERCからの支援を認めています。T. ThundatはCanada Excellence Research Chair (CERC) プログラムからの財政的支援を認めています。また、Zahra Nikakhtari氏のビデオ撮影の支援にも感謝しています。

以下に説明するために、ここに実験プロトコルを実行します。マイクロ流体プラットフォームを作成するための微細加工プロトコルは、ステップ1、ステップ2で説明されています（ 図2）細菌培養プロトコルを説明し、実験装置（ 図3）の組み立てステップ3が関係。最後に、実際の実験手順は、工程4に記載されている。 1チップ製造手順注：適切な安全手順は、以下に記載のプロセスに従わなければなりません。詳細については、制度的安全管理者に相談してください。 <ol><li>適切なソフトウェア（ 例えば 、L-Editの）マスクを設計します。チャンネルのデザインは、幅625ミクロンの主なマイクロ流路で構成されています。チャネルの中央領域の直径が50μmの微細柱の配列が含まれ、（補足ファイルを参照してください）​​離れて25μmの間隔をあけ。 </li><li>ガラス上このデザインを印刷（5 &quot;×5&quot;ソーダライムガラス次に、クロムエッチング液を用いCr層をエッチングし）、その0.09の厚さを有し、「フォトマスクを製造するためにマスキングを使用して、クロム（Cr）の約70nmの厚さの層で被覆されている。1分間使用してAZ400K現像液。約1分間のレジストと冷たいピラニア溶液でそれをきれいに取り除くために、アセトンを使用してください。（H 2 SO 4とH 2比3 O 2：1）。 </li><li>フォトリソグラフィー<ol><li> 20分間ピラニア溶液と化学的に標準的な4 &quot;のシリコンウェハを清掃してください。 </li><li> DI水でウェーハを洗浄して、それを乾燥させます。 </li><li>ホットプレート（15分間200℃）上のウエハ加熱する。 </li><li>コー​​トレジストを有するシリコンウェーハ。ここでは、ポジ​​型フォトレジストAZ4620は12.5ミクロンの厚さの層を得るために25秒間2000rpmでシリコンウェハ上にスピンコートした。 </li><li> 100℃で窒素流で90秒間ウェハを浮遊させることによって、ホットプレート上でウェーハのソフトベークして、すべての溶媒を除去します。次に、tに真空中でそれを維持60秒間、彼は同じ温度。 </li><li>脱水のための24時間暗箱にウェハを配置します。 </li><li>フォトレジストに設計されたパターンを転写するために、UV光にウェハを公開します。 </li><li> 240秒間、フォトレジスト現像液（AZ400K）のウェハを浸し。その後、イソプロピルアルコール、ウエハをリンスし、窒素ガス流中に置くことによって、それを乾燥させる。 </li></ol></li><li> ICP-DRIE（誘導結合プラズマ - ディープ反応性イオンエッチング）プロセス<ol><li> DRIEエッチングを適用します。デバイスに必要な最終的な深さ（この調査では50程度）に応じて適切なエッチング深さを選択してください。フォトレジストは、このプロセスの間にマスキング層として機能します。 </li><li>アセトンで残りのフォトレジストを除去し、ウェーハを洗浄してください。 </li></ol></li><li> PDMS（ポリジメチルシロキサン）鋳造<ol><li>シリコンマスターモールドをシラン化するためのトリクロロメチルシラン（TCMS）を使用します。バイアル中のトリクロロメチルシランの2または3滴を注ぎ、横にデシケーターに入れてくださいシリコンマスターモールド。シラン化プロセスが完了するまで2〜3時間を許可します。 </li><li> PDMSを製造するために1：別の容器に、10の重量比で硬化剤とのSylgard 184シリコーンベースを混合する。真空条件（約2時間）に供することによりPDMSを脱気。 </li><li>ホルダにシリコンマスターモールドを入れてください。その後、PDMSスタンプを形成するために、シリコンマスターモールド上にPDMSを注ぐ。気泡がこのプロセスの間に、PDMSで形成されないことを確認してください。 </li><li> 80℃で2時間、PDMSを治す。 </li><li>マスターモールドからPDMSスタンプをはがし。その後、独立したマイクロチップにPDMSスタンプを切った。最後に、入​​口および出口（単数または複数）のための穴をドリル切削コアを使用する。 </li></ol></li><li>ガラスへのPDMSの接着<ol><li> 30秒間酸素プラズマにカバースリップとPDMSスタンプを公開します。カバースリップに結合PDMSスタンプ。 </li><li> PDMSスタンプとカバースリップとの間に適切なシールを達成するために、70℃で10分間オーブンに入れるなどして、デバイスをアニールする。 </李&gt; </ol></li></ol> 2細菌培養注：適切なバイオセーフティ·プロトコルは、ステップ2〜4のために従わなければなりません。詳細については、制度的安全管理者に相談してください。 <ol><li> LB寒天プレートを準備します<ol><li> 20グラムルリア - ベルターニ（LB）寒天（ミラー）粉末、超純水500mlを1Lのフラスコに入れる。粉末を溶解するために撹拌する。 </li><li> 15 psiの、15分間121℃でオートクレーブすることにより滅菌する。 </li><li>フラスコをベンチやバイオセーフティーフード内で水浴中で50〜55℃まで冷却して。 </li><li> 50μg/ mlの最終濃度を達成するために抗生物質テトラサイクリンを加える。旋回でよく混ぜる。 </li><li>プレートに混合物を注ぐ。フル2分の1〜3分の2まで各プレートを埋める。 </li><li>炎空気はそれらが形成する場合は、それらをポップするために簡単に泡。固化した気泡は、細菌培養にわたって拡散することが困難である。 </li><li>プレートを室温で一晩冷却してください。 </li><li>彼らはクールである場合、戻って自分の袖にプレートを入れて、袋を密封し、ラベル（抗生物質および日付）、そして4℃で保存してください。 注：光は多くの抗生物質を不活性化するように、スズ箔でプレートの株式をカバー。 </li></ol></li><li> LBブロス準備<ol><li> 20グラムルリア - ベルターニ（LB）ブロス（ミラー）粉末および超純水1Lをフラスコに加える。粉末を溶解するために撹拌する。 </li><li> 15 psiの、15分間121℃でオートクレーブすることにより滅菌する。 </li><li>フラスコをベンチやバイオセーフティーフード内で水浴中で50〜55℃まで冷却して。 </li><li> 50μg/ mlの最終濃度を達成するために抗生物質テトラサイクリンを加える。旋回でよく混ぜる。 </li><li>ときにクール、4℃で標識ボトルを置く。 注：光は多くの抗生物質を不活性化するように、スズ箔でボトルをカバー。 </li></ol></li><li> LB寒天プレートに培養菌（このプロトコルが使用するシュードモナス·フルオレッ ） <ol><li>冷凍庫から細菌の株式を取る（-80°; C）と氷の上に置きます。 </li><li>バイオセーフティーフードの内側に-80℃で細菌株式およびLB寒天プレートを置きます。 </li><li>ストリークジグザグパターンでLB寒天プレート上に細菌株。寒天プレートをカバーし、一晩30℃以上でそれをインキュベートする。最後に、4℃の冷蔵庫内のプレートを格納します。 </li></ol></li><li>菌液を準備する（S1） <ol><li>オートクレーブをフラスコに50ミリリットルのLBブロス培地を注ぐ。バイオセーフティーフードの内側に、この操作を実行します。 </li><li>フラスコにLB寒天プレートから単一の細菌コロニーを転送します。この操作は、バイオセーフティーフード内で行われるべきである。 </li><li> 30℃、適切な時間（4時間）、150 rpmで振とう培養器でフラスコを入れてください。 </li></ol></li><li>希釈菌液（S2）を準備します<ol><li>滅菌プラスチックチューブに5ミリリットルのLBブロス培地を注ぐ。 </li><li> LBブロス培地と混合することにより、S1に希釈する。次いで、この溶液をボルテックス。溶液を希釈希望視神経を達成ら密度（ODは、600nm = 0.1で測定）。 注：バイオフィルムの実験は、通常、この近くでOD値を採用している。 </li></ol></li></ol> 3実験のセットアップを準備します<ol><li>使用方法ピンセットは、マイクロチップの入口および出口の（複数の）への柔軟なプラスチックチューブ（0.20 &quot;ID）を接続してください。入口と出口は、以前にマイクロチップ（ステップ1.5.5）のPDMS部分に掘削された。本研究でマイクロチップは、2つの入口と一つの出口から構成されています。 </li><li>菌液（S2溶液）で注射器（複数可）を記入し、注射器（複数可）内のすべての気泡を除去。 </li><li>入口管（群）へのシリンジチップ（S）（30 G 0.5」鈍針）を接続した後、コンテナを無駄に排出管を接続します。 </li></ol> 4。実験を実行します<ol><li>シリンジチップ（複数可）に注射器を接続します。 </li><li>シリンジポンプにシリンジ（複数可）場所と固定してください。その後DESIRの対物レンズで、光学顕微鏡下でマイクロチップを配置ED倍率（ 例えば 、40X）。 （P. 30℃でオレッ ）細菌増殖のための一定の温度環境を維持するために、ライブセルチャンバー装置を備えたマイクロチップをカバー。 </li><li>所望の流量レベルにポンプを設定します（たとえば10μL/時間）と流体ポンプを開始します。 </li><li>細菌がチャンバ内に導入されると、バイオフィルム形成も開始される。バイオフィルム形成及び成熟は、一般的に数時間または数日の期間にわたって発生する。観察し、顕微鏡でバイオフィルムの成長を撮影。 </li></ol>

<ol><li>Valiei, A., Kumar, A., Mukherjee, P. P., Liu, Y., Thundat, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+web+of+streamers%3A+biofilm+formation+in+a+porous+microfluidic+device%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">A web of streamers: biofilm formation in a porous microfluidic device.</a> Lab Chip. 12, 5133-5137 (2012).</li>
<li>Costerton, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacterial+Biofilms%3A+A+Common+Cause+of+Persistent+Infections%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Bacterial Biofilms: A Common Cause of Persistent Infections.</a> Science. 284, 1318-1322 (1999).</li>
<li>Flemming, H. C., Wingender, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+biofilm+matrix%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">The biofilm matrix.</a> Nat Rev Microbiol. 8, 623-633 (2010).</li>
<li>Wong, G. C. L., O’Toole, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((All+together+now%3A+Integrating+biofilm+research+across+disciplines%5BTitle%5D)+AND+%22MRS+Bulletin%22%5BJournal%5D)">All together now: Integrating biofilm research across disciplines.</a> MRS Bulletin. 36, 339-342 (2011).</li>
<li>Yazdi, S., Ardekani, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacterial+aggregation+and+biofilm+formation+in+a+vortical+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Biomicrofluidics%22%5BJournal%5D)">Bacterial aggregation and biofilm formation in a vortical flow.</a> Biomicrofluidics. 6, 044114(2012).</li>
<li>Rusconi, R., Lecuyer, S., Guglielmini, L., Stone, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laminar+flow+around+corners+triggers+the+formation+of+biofilm+streamers%5BTitle%5D)+AND+%22J+R+Soc+Interface%22%5BJournal%5D)">Laminar flow around corners triggers the formation of biofilm streamers.</a> J R Soc Interface. 7, 1293-1299 (2010).</li>
<li>Drescher, K., Shen, Y., Bassler, B. L., Stone, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biofilm+streamers+cause+catastrophic+disruption+of+flow+with+consequences+for+environmental+and+medical+systems%5BTitle%5D)+AND+%22P+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Biofilm streamers cause catastrophic disruption of flow with consequences for environmental and medical systems.</a> P Natl Acad Sci USA. 110, 4345-4350 (2013).</li>
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<li>Barathi, S., Vasudevan, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Utilization+of+petroleum+hydrocarbons+by+Pseudomonas+fluorescens+isolated+from+a+petroleum-contaminated+soil%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Int%22%5BJournal%5D)">Utilization of petroleum hydrocarbons by Pseudomonas fluorescens isolated from a petroleum-contaminated soil.</a> Environ Int. 26, 413-416 (2001).</li>
<li>Das, S., Kumar, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+and+post-formation+dynamics+of+bacterial+biofilm+streamers+as+highly+viscous+liquid+jets%5BTitle%5D)+AND+%22arXiv+preprint+arXiv%3A1312.6056%22%5BJournal%5D)">Formation and post-formation dynamics of bacterial biofilm streamers as highly viscous liquid jets.</a> arXiv preprint arXiv:1312.6056. , (2013).</li>
<li>Shaw, T., Winston, M., Rupp, C. J., Klapper, I., Stoodley, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Commonality+of+elastic+relaxation+times+in+biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22Phys+Rev+Lett%22%5BJournal%5D)">Commonality of elastic relaxation times in biofilms.</a> Phys Rev Lett. 93, (2004).</li>
<li>Berejnov, V., Djilali, N., Sinton, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lab-on-chip+methodologies+for+the+study+of+transport+in+porous+media%3A+energy+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Lab-on-chip methodologies for the study of transport in porous media: energy applications.</a> Lab Chip. 8, 689-693 (2008).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

私たちは、複雑な生息地でバイオフィルムの発達を研究するための多孔質媒体を模倣シンプルなマイクロ流体デバイスを実証した。実験の結果を決定するいくつかの重要なステップがあります。彼らは、デバイスのジオメトリが含まれています。ポスト形状が変化することができますが、フォームにストリーマに十分な細孔空間が必要である。また、Valiei ら 1はストリーマの形成のみを特定の流量範囲で起こることを実証している。閾値よりも低い流速で、ストリーマへのバイオフィルムの変形が観察されない場合がある。まだ別の特定の閾値流量値、バイオフィルムの破壊がストリーマの形成を可能に支配することができず、上記の。これらの実験を悩まできるもう一つの問題は、マイクロピラーアレイ中に溜まったガスの気泡である。通常、これらの気泡が所望の値に次第に減少最初に、次に、流量を増加させることによって除去しなければならない。 マイクロ流体プラットフォームこれらのような、いくつかの利点といくつかの制限があります。プラットフォームは、小さな培養容量で動作することを可能にし、ユーザ定義の特徴を組み込ん...

最近では、多孔質媒体1を模したマイクロ流体デバイス内の細菌のバイオフィルム形成のダイナミクスを示した。細菌性バイオフィルムは、本質的に、細胞外高分子物質（EPS）2-4によって包まれている表面に凝集する細菌のコロニーである。細菌のこれらの薄膜は、滑らかな表面から多孔質媒体のはるかに複雑な生息地に至るまで、ほぼすべての考えられるニッチを内形成することができる。 Valiei ら 1は多孔質媒体の構造をシミュレートするために、マイクロピラーのアレイを有するマイクロ流体デバイスを使用し、流体の流量の関数として、この装置ではバイオフィルム形成を研究した。彼らはある特定の流れ状態で、ストリーマとして知られている糸状バイオフィルムを別の柱の間に現れ始めたことがわかった。ストリーマは、一方に係留され得るか、または両方が、固体表面に終了するが、その他の構成は、液体中に懸濁されている。ストリーマの形成は、典型的には、バイオフィルムの初期層を形成した後に開始し、そのフォーマットイオンは、このような複雑な生息地でバイオフィルムの長期的な発展を決定することができます。最近、いくつかの研究者は、ストリーマ形成のダイナミクスを調べた。ヤズディら 5はストリーマが発振バブルから生じる渦流れに形成することができることを示した。別の実験では、Rusconiからら 6は、ストリーマの形成にチャネル曲率およびチャネルの形状の影響を調べた。彼らは、ストリーマは、マイクロチャネルの湾曲部分に形成できることを見出し、ストリーマ形態は、運動性に関連する。最近の研究では、ストリーマは、彼らが多孔インタフェースで成熟した構造の形成の前駆体として働くことができるように、さまざまな天然および人工のシナリオで幅広い影響を持つ生物医学システムで迅速かつ壊滅的なバイオフィルムの増殖につながり、また、実質的なフロースルーを引き起こす可能性があることを実証した構造の相互作用など 1,7-9。 バイオフィルム吹流しは、多くの場合、私を形成するそのような多孔質媒体としてのn複雑な生息地。多孔質のメディア環境におけるバイオフィルムの成長を理解することは、例えばCO 2回収11、土壌12中の細孔の閉塞のような状況ではよく穴の整合性を維持、このような生物学的廃水処理10などのいくつかの環境および産業プロセスに関連しています。このような複雑な生息地でのバイオフィルム形成を観察することにより、しばしば多孔質媒体の不透明度に挑戦することができます。それらはリアルタイムで可能にし、 その場での監視にこのような状況では、マイクロ流体ベースの多孔質媒体プラットフォームは、非常に有利で ​​証明することができる。マイクロフルイディクスのもう一つの利点は、単一のバイオマイクロ流体プラットフォーム上で複数のバイオリアクターを構築し、同時にオンライン監視および/またはセンサの組み込みを可能にする機能です。一つの装置で正確な統計分析のために有意な関連データを収集する機能で複数の研究室での実験を実施するための柔軟性が重要である前売りマイクロ流体システム13,14のアンテージ。 上記の議論の文脈では、多孔質媒体環境でストリーマ形成の動態を理解することは、複数のアプリケーションに有益であろう。本研究では、多孔質媒体を模倣装置におけるストリーマの形成を調査するためのプロトコルを開発しています。マイクロフルイディックプラットホームの製造は、細胞培養実験のために必要な手順が記載されている。実験では、 シュードモナス·フルオレッセンスの野生型細菌株を用いた。P.土壌中に天然に見出さフルオレッセンスは、土壌の生態15を維持する上で重要な役割を果たしている。用いられる細菌株は、遺伝的に恒常的に緑色蛍光タンパク質（GFP）を発現するように操作されていた。

<table><tbody><tr><td>蛍光顕微鏡</td><td>ニコン</td><td></td><td></td></tr><tr><td>LB寒天</td><td>フィッシャー</td><td>BP1425-500</td><td>精製水1Lに40gを懸濁</td></tr><tr><td>LBブロス</td><td>フィ</td><td>ッシャーBP1427-500</td><td>精製水1Lに20gを懸濁</td></tr><tr><td>バイオセーフティフード</td><td>マイクロゾーンコーポレーション</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ペトリ皿</td><td>フィッシャー</td><td>875712</td><td>滅菌済み 100 mm x 15 mm ポリスチレン ペトリ皿</td></tr><tr><td>インキュベーターシェーカー</td><td>ニューブランズウィックサイエンティフィック</td><td></td><td>エクセラ E24インキュベーターシェーカーシリーズ</td></tr><tr><td>50ml滅菌遠心分離管</td><td>コーニング</td><td>430828</td><td>ポリプロピレン RNase-/DNaseフリー</td></tr><tr><td>テトラサイクリンフリーベース</td><td>MP Biomedicals</td><td>103012</td><td>50 &#956;g/ml</td></tr><tr><td>SYLGARD 184 シリコーン</td><td>ダウ コーニング コーポレーション</td><td>68037-59-2</td><td>エラストマー ベースと硬化剤</td></tr><tr><td>ポジ フォトレジスト (AZ4620)</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>プラスチック管</td><td>コール パーマー</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

マイクロピラーとマイクロ流体デバイス内のバイオフィルムストリーマ形成のためのプロトコル

Protocol for Biofilm Streamer Formation in a Microfluidic Device with Micro-pillars

いくつかの細菌種は、表面に付着したバイオフィルムと呼ばれる薄膜の形態でそれらにコロニーを形成する能力を有する。多孔質媒体で成長バイオフィルムは、このような廃水処理およびCO 2の隔離など、いくつかの産業や環境のプロセスに関連している。私たちは、多孔質媒体を模倣マイクロ流体デバイス内のバイオフィルム形成を調査するために、 シュードモナス·フルオレッグラム陰性好気性細菌を使用していました。マイクロ流体デバイスは、ソフトリソグラフィを用いて作製されたマイクロポストのアレイからなる。続いて、流れにこれらのデバイスにおけるバイオフィルムの形成を検討したと私たちは私たちのデバイス内のストリーマとして知られている糸状バイオフィルムの形成を実証する。マイクロ流体デバイスの製造および組立のための詳細なプロトコルは、細菌培養プロトコールと一緒にここに提供されています。マイクロ流体デバイスを用いた実験のための詳細な手順も、代表と一緒に提示されている結果。

上述した微細加工プロトコルを使用して、PDMSベースのマイクロ流体デバイスを構築した。1は走査電子顕微鏡（SEM）PDMSの画像を示し 、デバイス。 図1aは、装置の入口断面を示している。フォーク状の入り口は、デバイス全体に圧力ヘッドを等しくするために作成されます。さらなるSEMイメージングはまた、柱壁が（ 図1b）は、ほぼ垂直であることを示した。培養した菌液（ 図2）で希釈し、その光学密度を0.1の値に調節した。私たちは、入力された流量の関数として、マイクロ流体デバイス内のバイオフィルム形成を調べた。ときにP.フルオレッセンスは、0.8μlの/ hrの低流速で装置に注入し、細菌付着およびバイオフィルム形成は、デバイスの壁に発生した。でも、長時間（&gt; 20時間）した後、表面にぴったりのバイオフィルム以外の他の細菌の構造ない私たち再観察した。次に、同様の実験を8μlの/ hrの流量で繰り返した。この場合には、バイオフィルム形成は、再び希釈した細菌培...

多孔質媒体を模倣したマイクロ流体デバイスでのバイオフィルム形成の研究のためのプロトコルが議論されています。マイクロ流体デバイスは、一連のマイクロピラーで構成されており、このデバイスではPseudomonas fluorescensによるバイオフィルム形成が調査されています。

Several bacterial species possess the ability to attach to surfaces and colonize them in the form of thin films called biofilms. Biofilms that grow in ...

この手順の全体的な目的は、マイクロピラーを備えたマイクロ流体デバイスにおける細菌ストリーマーの形成を実証することです。これは、まずマイクロ流体チップを作製することによって達成されます。手順の第2ステップは、テスト対象の細菌（本ケースでは pseudomonas fluorescence）を培養することです。最終ステップは、実験装置の組み立て、マイクロ流体チップへの細菌の注入、およびデータの収集です。最終的に、蛍光顕微鏡画像を通じてストリーマーの時間的変化を結果として示すことができます。各ステップの習得が困難であるため、この手法を視覚的に提示することは極めて重要です。本実験は学際的な性質を持つため、本手順では深掘り反応性イオンエッチングを施したシリコンウェハが必要です。ウェハ上のフォトレジストは洗浄して除去しておく必要があります。まず、マスターモールドの準備から始めてください。バイアルにトリクロロエチレンを2〜3滴加え、モールドを上向きに配置したデシケーター内に一緒に置きます。2〜3時間で、モールドのシロキサン化が完了します。シロキサン化の間、PDMS混合液（シリコンベースと硬化剤を10:1の比率で混合したもの）を準備します。次に、PDMSを真空状態で約2時間脱気します。シロニゼーション処理を施したウェハをホルダーに移し、気泡が入らないように注意しながら、その上にPDMSを注ぎます。80 °Cで2時間、ウェハ上でPDMSを硬化させます。サイズ調整されたシリコンモールドを用いて、A-P-D-M-Sスタンプを作製します。硬化が完了したら、カッターを使用してPDMSスタンプを剥がします。その後、カッターでスタンプを切り出し、マイクロ流体チップを作成します。次に、カッティングコアドリルを使用して、スタンプの入口と出口の位置に穴を開けます。次のステップは、スタンプをガラスに接合することです。24 mmのカバーガラスとPDMSスタンプを、30秒間酸素プラズマにさらします。露光後、カバーガラスをPDMSスタンプの底面に貼り付けると、接合が形成されます。このアセンブリを70 °Cのオーブンで10分間加熱してください。本プロトコルの工程を完了させるために、超純水を用いて調製し、50〜55 °Cで50 µg/mLのテトラサイクリンを添加したLBプレートを用意します。プレートを注ぐ際、気泡がある場合は火炎滅菌することで取り除くことができます。冷却し凝固させたプレートには日付を記入し、アルミホイルで包んで4 °Cで保存してください。また、超純水を用いて調製し、50 µg/mLのテトラサイクリンを添加したLBブロスを用意しておきます。ブロスを4 °Cで保存し、アルミホイルで包んでください。次に、-80 °Cで保存されているPseudomonas fluorescenceのストックをLB

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バイオエンジニアリング（生体工学）

我々は、細胞の捕獲と文化を可能にすることができるマイクロ流体デバイスの作製のためのプロトコルについて説明します。このアプローチではこのようなマイクロ流体チャネル内の溝のようなパターン化された微細構造は、セルがドッキングすることができる内に低せん断応力領域を作成するために使用されています。...

細胞挙動を研究するための溝パターンを用いたマイクロ流体デバイス

このプロトコルは、上皮細胞や細菌の同時およびローカライズされた文化のためのマイクロ流体の共培養モデルを説明します。このモデルは、推定されるプロバイオティクス菌株の有効性を病因の異なる水溶性分子シグナルの役割を調べるだけでなく、画面に使用することができます。...

マイクロ流体可溶性シグナルを介した相互作用を調査するために上皮細胞や細菌の共培養

出典: Kurz, D. L., 他 多孔質培地におけるバイオクロッキングを研究するためのマイクロ流体プラットフォーム。 J. Vis. Exp.

バイオフィルム形成中のリアルタイムイメージングおよび圧力追跡のためのマイクロ流体装置

スリット-細孔ジオメトリで毛細血管橋を作成し、イメージングする手順を示します。毛細管橋の作成は、流体を固定する指向性物理的および化学的不均一性を提供するために、柱の形成に依存しています。...

スリット細孔形状におけるキャピラリー橋の製作と可視化

この方法の論文の目的は、典型的にはヒト歯肉縁上の歯垢内で識別種を含む多種バイオフィルムの開発のための微小流体システムの使用を説明することである。バイオフィルムのアーキテクチャ、バイオフィルムの生存率、および文化に依存またはカルチャに依存しない解析が強調表示されるための収穫バイオフィルムへのアプローチを記述するための方法。...

ハイスループットの使用<em&gt;インビトロ</emオーラル多種バイオフィルムを開発するために&gt;マイクロ流体システム

バイオフィルムは、周囲の環境と複雑な相互作用を持っています。バイオフィルムと環境の相互作用を包括的に研究するために、バイオフィルム開発のための不均一な化学環境を作り出すための一連の方法、局所的な流速の定量化、およびバイオフィルムコロニー内および周囲の物質輸送を分析するための一連の方法を紹介します。...

バイオフィルムと生息地異質の共同開発を特徴付けるための方法

このプロトコルでは、ホストの生理学的な条件の下でカンジダ菌のバイオ...

自動マイクロ流体デバイスを使用してカンジダ菌バイオ フィルム形成の可視化

画期的な曲線(BTCs)は、多孔質媒体における細菌の輸送を研究するための効率的なツールです。ここでは、マイクロコピーとフローサイトメトリックカウントと組み合わせて流体デバイスに基づくツールを紹介し、BTCsを取得します。...

流体デバイスと顕微鏡とフローサイトメトリーを組み合わせて、空間スケールを越えた多孔質培地における微生物輸送を研究

マイクロ流体プラットフォーム内の毛細管現象支援アセンブリを用いて、細菌やコロイドなどの液体中に浮遊するマイクロサイズの物体をポリジメチルシロキサン基板上の所定のアレイにパターニングする技術を提示する。...

シーケンシャルキャピラリティーアシストアセンブリによる微生物と微粒子のパターニング

本プロトコルは、高解像度顕微鏡イメージングと同時圧力差測定を組み合わせることにより、...

多孔質媒体中のバイオクラッシングを研究するためのマイクロ流体プラットフォーム

学ぶマイクロピラー付きマイクロ流体デバイスを用いたPseudomonas fluorescensのバイオフィルムストリーマ形成プロトコル。蛍光顕微鏡による時系列観察で動態を可視化し、多孔質媒体における細菌挙動の理解に貢献します。

マイクロピラーとマイクロ流体デバイス内のバイオフィルムストリーマ形成のためのプロトコル

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