Name: マウスにおけるGPCRヘテロマーの行動機能を研究するためのキメラ構築物のHSV媒介導入遺伝子発現 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 30 s
Description: 学ぶマウスにおけるGPCRヘテロマー形成を必要とする行動表現型へのウイルス媒介遺伝子導入の影響。前頭皮質へのHSVキメラ構築物注入と頭部痙攣応答を用いて、統合失調症モデルにおける5-HT2A-mGlu2受容体複合体の機能を解明する方法です。

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NIH R01MH084894は、この研究の資金調達に参加しました。我々は、博士に感謝したいと思います。マウスの寄付と、この作品の撮影時に、その手術や行動施設の利用のためのマウントサイナイ医科大学でヤスミンHurd氏とスコット・ルッソ。

注：動物の飼育や心配事のためのすべての手順は、マウントサイナイ医科大学の施設内動物管理使用委員会（IACUC）規則に従って行いました。作業中は滅菌手袋を使用してください。 1.薬剤およびウイルスの準備<ol><li> 医薬品の準備 <ol><li> 0.9％の食塩水の12.9ミリリットルで100 mg / mlでケタミンおよび20mg / mlのキシラジンの0.75ミリリットルの1.35ミリリットルを溶解することにより15.0ミリリットルのケタミン/キシラジン麻酔薬を準備します。溶液を十分に混合します。 </li></ol></li><li> ウイルス調製物 <ol><li> mGlu2のクローンを作成し、mGlu2ΔTM4Nは、標準的なプロトコルは、以前に6を説明し、次のシストロン性単純ヘルペスウイルス（HSV）ベクター内に構築します。以前6,13,14に記載されているようにウイルス粒子をパッケージ化します。残基の置換アラ-677 4.40、mGlu2でのAla-681 4.44およびAla685 4.48 Ser686 4.40、pHについてE690 4.44とのGly-694 4.48 mGlu3（HA-mGlu2ΔTM4N）に以前6に記載されています。 注：これは、以前にキメラ構築HA-mGlu2ΔTM4Nが無傷のGタンパク質依存6シグナル伝達と細胞膜で発現することが示されました。 </li><li> C使用しないときには-80℃でウイルスベクターを保管してください。氷の上でウイルスベクターを解凍してから、10μlのアリコートに分注し。外科的手順については、氷上に保ちます。 </li></ol></li></ol> 2.手術<ol><li> 手術の準備 <ol><li>マウスを計量し、（詳細については、1.1.1を参照）をケタミン/キシラジンのカクテルの適切な用量でマウスを注入。 </li><li>適切に麻酔をかけた場合、疼痛応答のための足と尾を絞る参照するには、マウスをチェックし、応答を誘発することができない場合は、マウスが適切に麻酔されます。 </li><li>バリカンを使用して、鼻の先端に頭蓋底からマウスの頭を剃ります。マウスAFに眼科ゲルを適用しますマウスの失明を防ぐためにterward。 </li><li>定位フレーム上にそれぞれ注射器をロードします。彼らは10度法線から離れているように、そして、定位フレームの各アームの垂直部分を傾けます。針がお互いに直面しているように、アームが傾いていることを確認してください。 </li><li> 70％エタノールで針を充填することにより、各注射器を清掃してください。注射器がクリーンであることを確実にするために、針に少なくとも3回を埋めます。 </li><li>針が洗浄された後、二重蒸留H 2 Oで針を充填することによって針をフラッシュフラッシュたら、二重蒸留H 2 Oの1.3μlの各針を埋めます二重蒸留H 2 Oの0.3μLを解放するために、シリンジのプランジャーをねじります針の先端での水のビーズは、慎重に水を拭き取る場合。何も注射器から出てきていない場合は、完全にダウンしてプランジャーを押し、その後、注射器の洗浄を繰り返します。 </li><li>水を充填した後、次いで、シリンジを充填注射器を引き上げ空気の0.5μlの。 </li><li>空気や水が注射器に入ると、慎重にウイルス液の1.3μlのシリンジを埋めます。この時点で、シリンジ内の総容量は2.8μlであることを確認してください。再びウイルスの0.3μLを解放するために、注射器の先端をねじります。針の先端の液体ビーズは、慎重に液体を拭き取る場合。何も注射器から出てきていない場合は、完全にダウンしてプランジャーを押し、その後、注射器の洗浄を繰り返します。 </li></ol></li><li> 手術 <ol><li>頭蓋骨が水平かつ平坦になるように、定位フレームを調整することを確認して、定位フレームにマウスを接続します。露出した頭皮にpovodine - ヨウ素を適用します。メスを用いて、露出した剃ったエリア内の頭蓋骨の正中線に沿って矢状切開を行います。その後、頭蓋骨が露出したままであることを確認するために切開部位の皮膚にビュレットクランプを取り付けます。 </li><li>の縫合糸を露出させるために骨膜を溶解除去するH 2 O 2を使用して頭蓋骨。今ブレグマおよび縫合糸が見えること、頭蓋骨が水平であることを確認するために、定位フレームを調整するようにしてください。 </li><li>ブレグマと注射器の針の先端の位置を合わせ、ブレグマの座標を記録します。針が挿入されようとしているの座標を計算します。 <ol><li>吻側-Cauldal（RC）面については、記録されたRCのブレグマ座標（ブレグマから1.6）に1.6ミリメートルを追加します。背腹（DV）面については、記録されたDVのブレグマ座標（ブレグマから-2.4）から2.4ミリメートルを引きます。 </li><li>最後に、内側側横方向（ML）面のために、記録されたMLのブレグマ座標（ブレグマから2.6）に2.6ミリメートルを追加します。これは二国間の注射であるように、すべての座標は、左右両方の座標を記録するようにしてください。 </li></ol></li><li>希望の座標に針を持参してください。針を挿入し、ドリルで、マークされた領域をドリルダウンしようとしている場所の場所をマークします。 </li><li>綿の先端アプリケータのwiと余分な血液や骨片を離れPE。 </li><li>針の先端は、脳の表面に触れている頭蓋骨に針を持参してください。その後、ゆっくりとそれらを下げる目的の座標に針を下げます。 </li><li>針は、所望の座標になったら、ゆっくりと（合計0.5μLで）5分にわたって毎分針0.1μlとプランジャーをねじることによって、注射器の内容物を注入します。 </li><li>注入が行われた後、別の5分間の皮質に注射器を残します。 </li></ol></li><li> アップクローズ/ケア <ol><li>着実に、ゆっくりとマウスの皮質から針を外します。そして、定位フレームからマウスを削除します。 </li><li>切開部から皮膚のベースフラップにシアノアクリレート（皮膚接着剤）を塗布した後、ピンセットで皮膚のフラップをつかみ、それらを一緒に配置します。 </li><li>シアノアクリレートが乾燥することができます。加熱パッドの上にケージにマウスを置きます（加熱パッドはオプションです外科場合それ以外の場合は不要） - iCalのスイートは、37℃の室温下に保たれています。寝具は、手術部位に付着しないことを確認するために、ペーパータオルの上にマウスを置くようにしてください。 </li><li>処置後60分 - 外科処置の長さに応じて、マウスが30以内に麻酔から外れていることを確認してください。手術後、動物はそれ自身のケージに入れ、それを回復するためにその部屋に戻る前に、意識的になるまで監視されています。彼らは脳の生化学的経路の一部を変更することによって、私たちの実験の結果を変更することができるので、無鎮痛薬は、手術後に使用されていません。しかし、彼らは手術の日に、麻酔から回復するまで、動物が監視され、感染および痛み/苦痛の評価の徴候について毎日術後。 </li></ol></li></ol> 3.ヘッド単収縮応答実験<ol><li> セットアップ <ol><li> 3日stereota後 - 2、午前10:00と午後2:00の間のすべての行動試験を実施ウイルス粒子のCTIC注射。 </li><li>ディゾルブ（±）-1-（2,5-ジメトキシ-4-ヨードフェニル）2.0ミリグラム/ kgの0.9％生理食塩水に-2-アミノプロパン塩酸塩（DOI）。また、0.9％生理食塩水溶液を調製。 </li><li>任意の寝具なしホームケージ（28×18×15センチ）を準備し、三脚を使用して、ビデオカメラのビューが直接ホームケージの上にあるようにカメラを調整します。 </li><li>実験の開始に先立って、少なくとも4時間、部屋にマウスを慣らします。 </li><li>ヘッド単収縮を記録するビデオカメラを設定します。 </li></ol></li><li> 実験 <ol><li>それはホームケージの真上になるようにカメラを置きます。全体のホームケージが視野に入るようにカメラを調整します。 </li><li>マウスを計量し、0.9％生理食塩水またはDOI（0.01ミリリットル/ g）のいずれかの適切な用量で腹腔内にマウスを注入します。注：マウスは25グラムの重量を量る場合、0.25ミリリットルの全容積に用量を投与。 </li><li> foのホームケージに戻って各マウスを置きますR 10分間。 10分後、空のホームケージの中央にマウスを置いて、カメラの視野内に死角がないことを確認します。ビデオカメラを押してレコード。部屋のままにしておきます。 注：マウスの動きやその中の様々な行動反応（。。。頭がけいれん、耳の傷などは DOIによって誘発される行動応答の完全なリストについてのゴンザレス-Maeso ら 2007補足データテーブル1を参照してください）3、のために記録されます30分。したがって、記録された視野内に死角が存在しないことが重要です。 </li><li> 30分には元のホームケージにバックカメラと場所マウスの録音を停止した後。各マウスについて、このプロセスを繰り返します。 </li></ol></li><li> レビュー <ol><li>テープは、マウスの実験条件に盲目各審判のレビューを持っている）（ すなわち 、ヘッドの間に使用される薬剤は、実験や頭蓋内注射時に使用されるウイルスをけいれん）。手動ですべてのヘッドがthrougけいれん記録ビデオハウト。 注：ヘッド単収縮は、マウス（補足ビデオ）が実施し、迅速な振とうヘッドの動きとして定義されています。 </li><li>各マウスについて、ブラインド審判の合計3からの最終的なHTR応答を平均します。実験条件によってその後のグループ、これらの値を、統計分析を行う（ すなわち 、t検定またはANOVA）。 </li></ol></li></ol>

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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

一緒にmGlu2-KOマウス5の前の所見と、培養細胞において5-HT 2A -mGlu2受容体複合体を形成しないmGlu2およびmGlu2 / mGlu3キメラ構築物を用いた結果は、5-HT 2A -mGlu2ヘテロマー受容体複合体ことを示唆していますマウスの前頭皮質は、LSDのような幻覚5-HT 2A受容体アゴニストによって頭部攣縮挙動を誘発するために必要とされます。この方法の制限は、それが天然の組織内の細胞下レベルで近い分子近接性を測定しないということです。また、注目すべき種々の重要な点があります。注射後4日目 - マウスは、HSVウイルスベクターを注入されているため、実験を実行すること時間枠は2です。ウイルスベクターの位置および発現は、これ以上の4日以内の初期注射後の切片脳の免疫蛍光染色で確認する必要があります。マウスここで座標が一致していないか、またはウイルスベクターをべきで発現しません彼らはmGlu2またはmGlu2ΔTM4Nを発現しないように、実験データから除外されます。定位手術も重要である後頭創傷の不適切な決算は、 インビボ</...

そのようなLSD、サイロシビンやメスカリンなどの幻覚剤は、人間の意識、認知と感情7-9に大きな変化を引き起こします。セロトニンの不活性化は、遺伝的または薬理学的のいずれかの方法により、5-HT 2A受容体のシグナル伝達は、両方の齧歯類モデル3,10、およびヒト11で幻覚剤に著しく減衰行動反応を引き起こします。幻覚剤は、他の受容体サブタイプ8に結合するが、5-HT 2A受容体は、これらの化学物質の固有の行動活性に必要と考えられています。 グループII代謝型グルタミン酸受容体（ すなわち 、mGlu2およびmGlu3）は幻覚剤の分子機構に関するかなりの注目の対象と精神病12の基礎となる彼らの重要な役割となっています。これまでは、mGlu2タンパク質の発現なしでのマウス（mGlu2-KOマウス）はHALの細胞や行動への影響に鈍感であることが実証されていますlucinogens 5。また、5-HT 2AおよびmGlu2受容体は、セロトニンおよびグルタミン酸リガンドが生細胞1,2のGタンパク質結合のパターンを調節し、それを通して、特定のヘテロマー複合体を形成することが示唆されています。 構造的には、膜貫通（TM）ドメイン4およびmGlu2の5は、5-HT 2A受容体5とヘテロマー形成に重要な役割を果たしています。さらに、さらなる調査がmGlu2のTM4の細胞内の端部に位置する3つの残基が、細胞を6生体内5-HT 2A -mGlu2レセプターヘテロを形成するのに必要であることを実証しました。 異種発現系で観察されたこれらの知見に基づいて、ここでは、5-HT 2Aとの間のヘテロマー形成するかどうかをテストするために、野生型mGlu2およびmGlu2-KOマウスの前頭皮質におけるmGlu2 / mGlu3キメラ構築物のHSV媒介表現の使用を記載していますそして、mGlu2はのために必要です幻覚5-HT 2A受容体アゴニストによって誘導される頭部攣縮挙動。

<table><tbody><tr><td>mGlu2 bicitronic 単純ヘルペスウイルス (HSV) ベクター&nbsp;</td><td>MIT Core</td><td></td><td>mGlu2およびmGlu2DTM4Nは、CMVプロモーターの制御下で、GFPを発現するバイシストロンHSV-GFPウイルスベクターp1005+ HSVにサブクローニングされました。ウイルス粒子は、マクガバン研究所(MIT)のウイルスコアファシリティによって製造されました。詳細については、ディレクターのレイチェル・ニーブ博士(rneve@mit.edu)</td></tr><tr><td>mGlu2&Delta;TM4N単純ヘルペスウイルス(HSV)ベクター&nbsp;</td><td>MIT Core</td><td></td><td>mGlu2およびmGlu2DTM4Nは、CMVプロモーターの制御下で、GFPを発現するバイシストロンHSV-GFPウイルスベクターp1005+ HSVにサブクローニングされました。ウイルス粒子は、マクガバン研究所(MIT)のウイルスコアファシリティによって製造されました。詳細については、所長のレイチェル・ニーブ博士(rneve@mit.edu)</td></tr><tr><td>GFP bicitronic herpes simplex virus (HSV) vector&nbsp;</td><td>MIT Core</td><td></td><td>mGlu2およびmGlu2DTM4Nは、CMVプロモーターの制御下で、GFPを発現するバイシストロンHSV-GFPウイルスベクターp1005+ HSVにサブクローニングされました。ウイルス粒子は、マクガバン研究所(MIT)のウイルスコアファシリティによって製造されました。詳細については、ディレクターのレイチェル・ネーブ博士(rneve@mit.edu)</td></tr><tr><td>Xylazine&nbsp;</td><td>ロイド</td><td>リスト番号4811-20ml、NADA#139-236、NDCコード:61311-481-10</td><td>1.35 mlのケタミン(100 mg / ml)+ 0.75 mlのキシラジン(20 mg / ml)を12.0 mlの0.9%生理食塩水</td></tr><tr><td>ケタミンで</td>希釈します。<td>Vedco</td><td>KetaVed-10ml、NADA#200-029、NDCコード(s):50989-161-06</td><td>1.35 mlのケタミン(100 mg / ml)+ 0.75 mlのキシラジン(20 mg / ml)を12.0 mlの0.9%生理食塩水で希釈します</td></tr><tr><td>眼科用ゲル</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>NC0550805</td><td></td></tr><tr><td>バレットクリップ</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>NC9268369</td><td></td></tr><tr><td>フェザー外科用ブレード</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>NC9032736</td><td></td></tr><tr><td>水素過酸化物</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>19-898-919&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>ハミルトンシリンジ</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック<td>14815203</td><td></td></tr><tr><td>ハミルトン&trade;スモールハブリムーバブルニードル(33 Ga)</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック<td>14816206</td><td></td></tr><tr><td>コードレスマイクロドリル</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>NC9089241</td><td></td></tr><tr><td>ダーマボンド皮膚接着剤</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック<td>NC0690470</td><td></td></tr><tr><td>(&plusmn;)-1-(2,5-ジメトキシ-4-ヨードフェニル)-2-アミノプロパン塩酸塩(DOI)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>42203-78-1</td><td>0.9%生理食塩水に2.0 mg / kgの濃度で溶解</td></tr></tbody></table>

マウスにおけるgpcrヘテロマーの行動機能を研究するためのキメラ構築物のhsv媒介導入遺伝子発現

HSV-Mediated Transgene Expression of Chimeric Constructs to Study Behavioral Function of GPCR Heteromers in Mice

5-HT2AとmGlu2の間のヘテロマー受容体複合体は、精神病1,2のマウスモデルの行動表現型の一部に関与しています。 したがって、統合失調症関連の行動に影響を与える5-HT2AとmGlu2の間の相互作用の構造的詳細の調査は、強力な翻訳ツールを表しています。前に示したように、マウスにおける頭部筋反応(HTR)は幻覚剤によって誘発され、この行動応答は5−HT2Aノックアウト(KO)マウスには存在しない3,4。 さらに、5-HT2A受容体を皮質でのみ条件付きで発現させることにより、皮質錐体ニューロン上の5-HT2A受容体依存性シグナル伝達経路が、幻覚剤に応答して頭部のけいれん行動を誘発するのに十分であることが実証されました3。 最後に、幻覚剤DOIおよびリゼルグ酸ジエチルアミド(LSD)によって誘発される頭部のけいれん行動応答がmGlu2-KOマウスで有意に減少することが示された5。 これらの知見は、mGlu2が、LSD様薬物によって誘発される5-HT2A受容体依存性精神病様行動効果に少なくとも部分的に必要であることを示唆している。しかし、これは、5-HT 2A-mGlu2受容体複合体がこの行動表現型に必要であるかどうかについての証拠を提供しません。この問題を解決するために、mGlu2-KOマウスの前頭皮質でmGlu2またはmGlu2ΔTM4N(5-HT2A-mGlu2受容体複合体を形成しないmGlu2/mGlu3キメラ複合体)を発現する単純ヘルペスウイルス(HSV)コンストラクトを使用して、このGPCRヘテロメア複合体がLSD様薬物によって誘発される行動効果に必要かどうかを調べました6。

以前の知見は、ヘッド単収縮マウスの行動応答を確実かつロバスト幻覚剤によって誘発され、それは、5-HT 2A -KOマウス3には存在しないことを示しています。また、DOIとLSD幻覚の5-HT 2Aアゴニストによって誘発される頭部攣縮応答が有意mGlu2-KOマウス5に減少したことが示されました。しかし、以前の知見は、説得力の5-HT 2AおよびmGlu2が生きているマウスではそのようなものが未解決のままであったように、この構造的配置がふるまうかどうか、1,2,15トランスフェクトされた細胞においてin vitroでのヘテロマー複合体として組み立てられていることを示しているものの。完全にこのマニピュレータかどうかを調べるために、mGlu2-KOマウスの前頭皮質におけるmGlu2またはmGlu2ΔTM4Nのいずれかの発現を幻覚5-HT 2A受容体アゴニストにより誘導された精神のような効果で5-HT <sub...

この記事では、GPCRヘテロマーの形成を必要とする行動アッセイをテストするために、マウスの前頭皮質にウイルスベクターを注入する方法について説明します。

マウスにおけるGPCRヘテロマーの行動機能を研究するためのキメラ構築物のHSV媒介導入遺伝子発現

The heteromeric receptor complex between 5-HT2A and mGlu2 has been implicated in some of the behavioral phenotypes in mouse models of psychosis1,2.  ...

この手法の全体的な目的は、マウスモデルにおいて、ウイルス媒介性遺伝子導入が、Gタンパク質共役受容体のヘテロ二量体化を必要とする行動表現型にどのように影響するかを観察することです。この手法は、神経薬理学および精神薬理学の分野における重要な問い、具体的には、Gタンパク質共役受容体が分子レベルでどのように相互作用しているかという問いへの回答に役立ちます。本手法を用いることで、統合失調症やうつ病などの精神疾患モデルにおいて、この相互作用が行動にどのように影響するかを理解することができます。ここでは特に、セロトニン2a受容体と代謝性グルタミン酸受容体2に注目します。これらはいずれも、統合失調症の治療薬の作用機序に関与していることが示されています。まず、承認された方法に従ってマウスを適切に麻酔してください。足指をつまみ、反応がないことを確認して、外科的麻酔レベルに達していることを確かめます。次に、眼を保護するために眼科用ジェルを塗布します。マウスをステレオタキシス固定装置に取り付け、頭蓋骨が水平かつ平坦になるように頭部の傾きを調整します。露出した頭皮にポビドンヨードを塗布します。メスを使用して、露出した剃毛部位の頭蓋骨正中線に沿って正中切開を行います。次に、頭蓋骨が露出したままになるよう、切開部位の皮膚にPureitクランプを装着します。過酸化水素を塗布して骨膜を溶解させ、頭蓋骨の縫合線を露出させます。ブレグマと縫合線が見えたら、頭蓋骨が水平になるように定位固定装置を調整してください。シリンジの針先をブレグマに合わせ、ブレグマの座標を記録します。前頭皮質に両側注入する場合、記録されたブレグマからの吻側・尾側座標に1.6 mmを、正中線からの内側・外側座標に2.6 mmを加えます。頭蓋骨上の注入部位をマークし、注入部位に小さな穴を開けます。綿棒を使用して、過剰な血液や骨片を拭き取ります。針を脳表面まで移動させ、背腹座標の深さまで下げます。次に、プランジャーをゆっくりと回してシリンジの内容物を注入し、0.1 µL/minの速度で5分間投与し、計0.5 µLを注入します。注入後、シリンジを5分間そのまま保持します。規定の時間が経過した後、動物を脳定位固定装置から取り出し、切開部を縫合して、ウォーミングパッドの上に置きます。承認済みの動物実験プロトコルに従い、術後の鎮痛剤を投与してください。ウイルス粒子の定位注入から2〜3日後に、行動テストを実施します。実験開始の少なくとも4時間前に、マウスを室内に慣らしておく。まず、DOIを0.9%生理食塩水に溶解し、2 mg/kgの濃度にする。敷材のないホームケージを用意し、三脚を用いてカメラをホームケージの真上に調整して設置する。ホームケージ全体が視野に入るようにカメラを調整します。マウスの体重を測定し、0.9%生理食塩水またはDOIの適切な用量を腹腔内投与します。その後、マウスをホームケージに戻し、10分間待機させます。10分後、マウスを空のホームケージの中央に配置し、カメラの視野に死角がないことを確認します。カムコーダーの録画ボタンを押し、室外へ出ます。30分後、録画を停止し、マウスを元のホームケージに戻します。次のマウスで行動テストを繰り返します。実験条件を伏せた状態で、査読者にビデオを確認させてください。ビデオ全体を通して、すべてのヘッドツイッチを手動で記録します。ヘッドトゥイッチ（頭部振戦）は、マウスによって行われる急速な頭部の揺すぶり動作と定義されます。プロトコルの記述部分に概説されている手順に従ってデータを処理してください。ここに、前頭皮質におけるHSV介在性のトランスジーン発現の代表的な画像を示します。HSV mGlu2 GFPを前頭前皮質に注入し、免疫細胞化学染色によりGFPの発現を確認した。このスケールバーは200 micronsを示す。この画像は、mGlu2ノックアウトマウスの前頭前皮質におけるHSV介在性トランスジェーン発現および抗mGlu2反応性をウェスタンブロットで示したものである。ここでは、モノマーとしてのmGlu2の免疫反応性を測定しました。このヒストグラムは、mGlu2ノックアウトマウスの前頭皮質において、ウイルス媒介によるmGlu2の発現は、キメラmGlu2の発現とは異なり、幻覚剤であるセロトニン2a受容体アゴニストDOIによって誘発されるヘッドツイッチ反応を有意に回復させることを示しています。この実験において最も重要なステップは、ウイルス注入、ヘッドツイッチ反応の測定、およびマウスの屠殺の間のタイミングです。いかなる遅延も実験結果を変化させたり、データに曖昧さを導入したりする可能性があります。習熟すれば、マウスの手術におけるウイルス注入には約30分かかります。また、ヘッドトゥイッチ実験（頭部振戦実験）には、マウス1匹あたり約35分かかります。複数のマウスを同時に、あるいは時間をずらして手術することを推奨します。これにより、ウイルス構築物の発現がピークとなる手術後3～4日以内に頭部twitch実験を行えるタイムスケジュールを維持することができます。ご視聴ありがとうございました。実験の成功をお祈りいたします。

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

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マウスにおけるGPCRヘテロマーの行動機能を研究するためのキメラ構築物のHSV媒介導入遺伝子発現

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