2018年3月15日
アフリカツメガエル幼生の発達回路を勉強するセル全体パッチ ・ クランプ記録の 3 脳剤について述べる。それぞれの準備を独自の特定の利点は、神経回路機能を研究するモデルとしてアフリカツメガエルのオタマジャクシの実験的少ないに貢献します。
この手順の全体的な目標は、オタマジャクシ視蓋のニューロンから全細胞電気生理学的記録を取得し、発生中の接続パターンについて学び、最終的には神経回路がどのように形成および機能するかを理解することです。この方法は、ニューロンが発達の過程でどのように変化するのか、回路はどのように機能して行動を引き起こすのかなど、神経発達の分野における重要な質問に答えるのに役立ちます。これらの調製物の主な利点は、視蓋ニューロンの電気生理学的記録を可能にし、発達中の神経回路の機能についての洞察を提供することです。
その手順を実演するのは、私の研究室の大学院生であるZhenyu Luiです。廃棄移送ピペットを使用して、麻酔をかけたオタマジャクシを外部記録溶液を含む解剖記録皿に移します。麻酔をかけたオタマジャクシを、解剖記録皿の床にある水没したシリコンブロックに固定します。
脳をはっきりと見るには、滅菌済みの25ゲージの針を使用して正中線に沿って表面的な切開を行い、脳を覆っている皮膚を取り除きます。針を神経管に挿入し、床板をそのままにして管の背側部分がきれいに切断されるようにゆっくりと上に引っ張ることにより、同じ正中線軸に沿って脳を切り詰めます。脳を分離するには、まず25ゲージの針を使用して後脳を切断します。
次に、針を脳の下に尾側から吻側方向にそっと通し、すべての外側および腹側の結合組織と神経線維を切断します。次に、1本のピンを嗅球の1つに通し、もう1本のピンを後脳に通して、脳をシリコンエラストマーのブロックに固定します。これは、テクタルニューロンからの記録に最適な構成です。
次に、ピン留めされた全脳製剤が入った皿を解剖スコープから電気生理学リグに移動します。壊れたガラスピペットを使用して心室膜を取り出します。RGC軸索を直接活性化するには、バイポーラ刺激電極を視交叉にゆっくりと下げて、組織に小さなへこみが形成されるようにします。
バイポーラ刺激電極は吻側にあり、視交叉が位置する大きな中心室にほぼ隣接している必要があります。バイポーラ電極はパルス刺激装置によって駆動され、刺激の強さを正確に制御することができます。水平脳スライスを準備するには、全身の準備から始めます。
次に、かみそりの刃を使用して、1つの視蓋の片側の最も外側の4分の1を切り取ります。このカットは、吻側尾面と平行に作成されます。その後、脳をシリコンエラストマーの側面に再度固定し、スライスした面を上に向けて、体腫と神経孔に直接アクセスして記録できるようにし、脳の心室表面をシリコーンエラストマーブロックから遠ざけて、バイポーラ電極を視交叉に配置できるようにします。
次に、全細胞パッチクランプまたは局所電界電位記録を実行します。これは、水平ブレインスライス調製の構成を示す概略図です。刺激電極は視交叉に留まっていますが、記録ピペットは、水平脳スライス調製によって露出されたすべてのテクタル層にわたる細胞にアクセスするように配置されていることに注意してください。
これは、テクタムの表層に存在するニューロンからのRGC誘発応答です。この図では、ニューロピル全体で記録された電界電位と変換された電流源密度がイメージプロットで示されています。一度習得すると、このテクニックは10分以内に完了し、通常は最大3〜4時間かかります。
このビデオを見れば、テクタルニューロンの電気的特性とその接続性を定量化するために、全細胞記録のための全脳および水平脳スライスの準備を行う方法について十分に理解できるはずです。
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本研究では、アフリカツメガエル(Xenopus laevis)のオタマジャクシにおける視網膜視蓋路を研究するためのホールセルパッチクランプ記録法について検討します。異なる脳標本を用いることで、発生過程におけるオタマジャクシの視蓋ニューロンの結合パターンおよび神経回路の全体的な機能を理解することを目的としています。
アフリカツメガエル(Xenopus laevis)のオタマジャクシにおけるホールセルパッチクランプ記録は、神経回路の形成と機能の高解像度解析を可能にし、発生過程におけるシナプス接続性とニューロンの興奮性に関するメカニズム的な知見を提供します。この手法は、視覚蓋における網膜神経節細胞誘発活動など、定義された刺激に対するニューロンの反応を直接測定できるため、神経科学におけるターゲット検証を支援します。本手法は、in vivo、全脳、および水平切片標本のいずれにも適応可能であり、神経発達ターゲットの前臨床段階におけるリスク低減に向けた再現性と拡張性を向上させます。
この手法は、リード最適化の前に神経細胞ターゲットの機能的な検証を行うことで、初期の創薬ワークフローに組み込まれ、その結果はターゲットの選定とメカニズムの解明の両方に寄与します。