Name: スキャフォールド フリー三次元心筋組織構築純金型ベース方式 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-08-05T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 57 s
Description: 学ぶスカフォールドフリー三次元心筋組織構築法。純金型ベース方式でスフェロイドを用い、iPS細胞由来心筋細胞、線維芽細胞、血管内皮細胞を組み合わせて同期拍動する組織を作成します。再生医療研究に応用可能です。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

著者は、次の資金源を認める: 心血管の研究のため魔法、事項の資金。

1. 心筋細胞の調製
<ol><li>17と前述したように、コート 6 ウェル基底膜マトリックスと文化人間誘導された多能性幹細胞 (hiPSCs)。</li>
	<li>上記の方法18を使用してによる CMs に hiPSCs を区別します。</li>
	<li>16-18 d 後の分化には、カルシウムやマグネシウム、孵化 1 ml/トリプシンまたは細胞解離試薬 (のテーブルを参照のも続いてせず、リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) x 1 の 2 mL の各ウェルを洗浄によって心筋細胞を一時中断します。材料) 室温で 5 分間。</li>
	<li>トリプシンまたは細胞解離試薬を中和 (材料表参照) ロズウェル パーク記念研究所 (RPMI) セル培地 B-27 (RPMI/B-27 携帯メディア) の等量を使用して。上下のピペット、付着細胞を緩める。</li>
	<li>10 mL の血清ピペットで中断された心筋細胞を収集し、50 mL の円錐管にそれらを転送します。</li>
	<li>250 x g細胞ペレットを取得するために室温で 5 分間で細胞懸濁液を遠心します。</li>
	<li>RPMI/B-27 携帯メディアの 10 mL にペレットを再懸濁します。</li>
	<li>細胞懸濁液の 20 μ L を組み合わせて 0.4% トリパン ブルー溶液の同量入れ、軽く混ぜます。</li>
	<li>マニュアルの検定を使用してカウントし、細胞懸濁液の濃度と細胞の生存率を入手します。</li>
</ol>2. 線維芽細胞の作製
<ol><li>16を前述のよう人間心臓線維芽細胞 (HCF) (成人心室型) 細胞株の培養を開始します。</li>
	<li>トリプシンまたはセルの解離試薬の適切な量でそれらをインキュベートし、HCFs を中断 (材料表参照) 室温16で 5 分間。T175 フラスコ 10 mL のトリプシンまたはセルの解離試薬の使用しています。</li>
	<li>トリプシンまたは細胞解離試薬を中和 (材料の表を参照してください)、50 mL の円錐管にサンプルを転送し、250 x gを入手する部屋の温度で 5 分間で細胞懸濁液を遠心分離媒体の等量を使用して、ペレット。</li>
	<li>線維芽細胞成長培地 10 mL にペレットを再懸濁します (材料の表を参照してください)。</li>
	<li>HCF 細胞懸濁液の 20 μ L を組み合わせて 0.4% トリパン ブルー溶液の同量入れ、軽く混ぜます。</li>
	<li>自動化された細胞カウンターまたは手動検定を使用してカウントし、新しい細胞懸濁液の濃度と細胞の生存率を入手します。</li>
</ol>3. 血管内皮細胞の調製
<ol><li>ひと臍帯静脈内皮細胞 (株) 線、17を前述の培養を開始します。トリプシンまたはセルの解離試薬の適切な量でそれらをインキュベートし、比較を中断 (材料表参照) 室温17で 3 分間。トリプシンまたは細胞解離試薬を中和する (材料の表を参照してください)、50 mL の円錐管に転送中の等量を使用して、250 x gペレットを取得するために室温で 5 分間で細胞懸濁液を遠心分離します。 注: T175 フラスコ 10 mL のトリプシンまたはセルの解離試薬が使用されました。</li>
	<li>内皮細胞成長培地 10 mL にペレットを再懸濁します (材料の表を参照してください)。</li>
	<li>新生活懸濁液 20 μ L を組み合わせると 0.4% トリパン ブルー溶液の同量とそれを汚す、軽く混ぜます。</li>
	<li>自動化された細胞カウンターまたは手動検定を使用してカウントし、細胞懸濁液の濃度と細胞の生存率を入手します。</li>
</ol>4. ドロップ回転楕円体の作成
<ol><li>絞首刑の場所ドロップ デバイス滅菌 6 ウェル プレートに 850 の細孔 (それぞれ 350 μ m の直径) が含まれています。</li>
	<li>前述のようにセルの 3 種類を分離: による CMs、HCFs、および比較します。1 mL あたり 2,475,000 細胞の濃度で RPMI/B-27 携帯メディアで 70% iPSC CMs、15 %hcfs と 50 mL の円錐管に 15 %huvec の比率で結合します。</li>
	<li>ハンギング 6 ウェル プレートに装着されているドロップ システム (350 μ m の細孔径) と超低添付ファイルの各ウェルに 4 mL (1 mL あたり 2,475,000 細胞) の細胞懸濁液を調剤します。</li>
	<li>回転楕円体が絞首刑に細胞懸濁液を調剤の 12 h の中で形成される自発的にドロップ デバイス。37 ° C、5% CO2、湿度 95%、72 時間 (3 d) の合計のための文化、回転楕円体の成熟のために続けます。</li>
	<li>文化の 72 時間後収穫は絞首刑の下部孔を通って回転楕円体中皿にデバイスを配置し、絞首刑からスフェロイドをリリースに優しくそれを旋回システムをドロップ ドロップ デバイス。</li>
</ol>5. 3-D パッチ作成新規純金型を使用
<ol><li>基本、底正方形板、底網、10 レイヤード サイド滅菌ピンセットのペアの助けを借りて新規金型を作成する網をまとめます。まず、スタック ベースで底正方形板を合わせ、コーナー ポストを使用してネットを底します。スタックし、層の良いステンレス製熊手の網を作成する方向を交互に 10 側網。</li>
	<li>表面張力を軽減し、その後、充填ベースの上に組み立てられた金型を転送 PBS またはメディア ベースの充填をフラッシュします。</li>
	<li>PBS と同じ方法でメディア ネット金型キャビティを濡れています。希望するサイズの前提の空洞に、回転楕円体をゆっくり記入 (2 × 2 × 1 mm、4 × 4 × 1 mm、または 6 × 6 × 1 mm)。 注: ので、細胞凝集塊はタイトな接続で、静的なまま、空洞に回転楕円体の予想量の 120% を供給することを確認します。</li>
	<li>Net トップ、コーナー ポストの上に四角い天板を組み立てる、ストッパーとスフェロイドのにじみを防ぐためにホールディング チューブを固定します。</li>
	<li>いっぱいネット金型システムを 6 ml RPMI/B-27 携帯メディアの全体の組み立てられた金型をカバーする十分な培地で無菌容器に 6 ウェル プレートに転送します。</li>
	<li>3,000-4,000 x gで 7-10 日間スイング シェーカーで塗りつぶされた金型システム 6 ウェル プレートを孵化させなさい。 注: 孵化の持続期間は、心臓のパッチのサイズによって決定されます。大規模なパッチ、インキュベーション時間心臓パッチ成熟増加すべき必要があります。</li>
</ol>6. 新規純金型からのパッチの削除
<ol><li>メディアから金型システムを取り外して滅菌 10 cm 皿に滅菌処理マットの上に置きます。</li>
	<li>ホールディング チューブ、ストッパー、正方形天板上の net を削除します。慎重に滅菌ピンセットのペアを持つ層状側網 1 つずつをスライドさせます。抜後、そのまま心臓パッチは、ネットの底の上に取得されます。</li>
	<li>滅菌鉗子を使用してパッチでネットの下をピックアップし、RPMI/B27 メディアの 5 ml 35 mm ディッシュにネットの下を転送します。軽く料理、または無菌細胞スクレーパーとネットをゆっくりと旋回してネットの下からパッチを緩めます。ネットの下から剥離後 RPMI/B27 メディアで心筋組織を培養することができます。</li>
	<li>35 mm ディッシュの浮遊 3次元心筋パッチをインキュベートし続けます。機能同期鼓動は、鋳型から取り出した後、早ければ 24 時間観察できます。</li>
	<li>Net の金型からパッチを削除した後整合性と時間同期暴行増加の強度とその形状が維持されることを確認します。 注: 3-D ネット金型ベース心筋パッチ抜後コンポーネント cardiospheres の電気的統合を出展しました。60 から 80 ビート/分 60 日間以上の永続化に至るまで、周波数を見ました。</li>
</ol>

<ol><li>Gao, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myocardial+Tissue+Engineering+With+Cells+Derived+From+Human-Induced+Pluripotent+Stem+Cells+and+a+Native-Like%2C+High-Resolution%2C+3-Dimensionally+Printed+Scaffold%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Myocardial Tissue Engineering With Cells Derived From Human-Induced Pluripotent Stem Cells and a Native-Like, High-Resolution, 3-Dimensionally Printed Scaffold.</a> Circulation Research. 120 (8), 1318-1325 (2017).</li>
<li>Borovjagin, A. V., Ogle, B. M., Berry, J. L., Zhang, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+Microscale+Devices+to+3D+Printing%3A+Advances+in+Fabrication+of+3D+Cardiovascular+Tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">From Microscale Devices to 3D Printing: Advances in Fabrication of 3D Cardiovascular Tissues.</a> Circulation Research. 120 (1), 150-165 (2017).</li>
<li>Tandon, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrical+stimulation+systems+for+cardiac+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Electrical stimulation systems for cardiac tissue engineering.</a> Nature Protocols. 4 (2), 155-173 (2009).</li>
<li>Duran, A. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regenerative+Medicine%2FCardiac+Cell+Therapy%3A+Pluripotent+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Thoracic+and+Cardiovascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">Regenerative Medicine/Cardiac Cell Therapy: Pluripotent Stem Cells.</a> The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 66 (1), 53-62 (2018).</li>
<li>Lux, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+maturation+of+large-scale+cardiac+patches+based+on+a+perfusable+starter+matrix+by+cyclic+mechanical+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">In vitro maturation of large-scale cardiac patches based on a perfusable starter matrix by cyclic mechanical stimulation.</a> Acta Biomaterialia. 30, 177-187 (2016).</li>
<li>Eschenhagen, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+reconstitution+of+embryonic+cardiomyocytes+in+a+collagen+matrix%3A+a+new+heart+muscle+model+system%5BTitle%5D)+AND+%22The+FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional reconstitution of embryonic cardiomyocytes in a collagen matrix: a new heart muscle model system.</a> The FASEB Journal. 11 (8), 683-694 (1997).</li>
<li>Moldovan, N. I., Hibino, N., Nakayama, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+the+Kenzan+Method+for+Robotic+Cell+Spheroid-Based+Three-Dimensional+Bioprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering+Part+B%3A+Reviews%22%5BJournal%5D)">Principles of the Kenzan Method for Robotic Cell Spheroid-Based Three-Dimensional Bioprinting.</a> Tissue Engineering Part B: Reviews. 23 (3), 237-244 (2017).</li>
<li>Sugiura, T., Hibino, N., Breuer, C. K., Shinoka, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+cardiac+patch+seeded+with+human+induced+pluripotent+stem+cell+derived+cardiomyocytes+promoted+the+regeneration+of+host+cardiomyocytes+in+a+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cardiothoracic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered cardiac patch seeded with human induced pluripotent stem cell derived cardiomyocytes promoted the regeneration of host cardiomyocytes in a rat model.</a> Journal of Cardiothoracic Surgery. 11 (1), 163(2016).</li>
<li>Caspi, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+engineering+of+vascularized+cardiac+muscle+from+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Tissue engineering of vascularized cardiac muscle from human embryonic stem cells.</a> Circulation Research. 100 (2), 263-272 (2007).</li>
<li>Ong, C. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomaterial-Free+Three-Dimensional+Bioprinting+of+Cardiac+Tissue+using+Human+Induced+Pluripotent+Stem+Cell+Derived+Cardiomyocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Biomaterial-Free Three-Dimensional Bioprinting of Cardiac Tissue using Human Induced Pluripotent Stem Cell Derived Cardiomyocytes.</a> Scientific Reports. 7 (1), 4566(2017).</li>
<li>Kelm, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+concept+for+scaffold-free+vessel+tissue+engineering%3A+self-assembly+of+microtissue+building+blocks%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">A novel concept for scaffold-free vessel tissue engineering: self-assembly of microtissue building blocks.</a> Journal of Biotechnology. 148 (1), 46-55 (2010).</li>
<li>Noguchi, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+three-dimensional+pre-vascularized+scaffold-free+contractile+cardiac+patch+for+treating+heart+disease%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Heart+and+Lung+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Development of a three-dimensional pre-vascularized scaffold-free contractile cardiac patch for treating heart disease.</a> The Journal of Heart and Lung Transplantation. 35 (1), 137-145 (2016).</li>
<li>Zuppinger, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+culture+for+cardiac+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+Biophysica+Acta%22%5BJournal%5D)">3D culture for cardiac cells.</a> Biochimica et Biophysica Acta. 1863 (7 Pt B), 1873-1881 (2016).</li>
<li>Langenbach, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+and+differentiation+of+microtissues+from+multipotent+precursor+cells+for+use+in+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Generation and differentiation of microtissues from multipotent precursor cells for use in tissue engineering.</a> Nature Protocols. 6 (11), 1726-1735 (2011).</li>
<li>Fennema, E., Rivron, N., Rouwkema, J., van Blitterswijk, C., de Boer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spheroid+culture+as+a+tool+for+creating+3D+complex+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Spheroid culture as a tool for creating 3D complex tissues.</a> Trends in Biotechnology. 31 (2), 108-115 (2013).</li>
<li>Agocha, A., Sigel, A. V., Eghbali-Webb, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+adult+human+heart+fibroblasts+in+culture%3A+a+comparative+study+of+growth%2C+proliferation+and+collagen+production+in+human+and+rabbit+cardiac+fibroblasts+and+their+response+to+transforming+growth+factor-beta1%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Tissue+Research%22%5BJournal%5D)">Characterization of adult human heart fibroblasts in culture: a comparative study of growth, proliferation and collagen production in human and rabbit cardiac fibroblasts and their response to transforming growth factor-beta1.</a> Cell Tissue Research. 288 (1), 87-93 (1997).</li>
<li>Baudin, B., Bruneel, A., Bosselut, N., Vaubourdolle, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+protocol+for+isolation+and+culture+of+human+umbilical+vein+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">A protocol for isolation and culture of human umbilical vein endothelial cells.</a> Nature Protocols. 2 (3), 481-485 (2007).</li>
<li>Pimentel, C. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+fabrication+of+thick+and+densely+populated+soft+constructs+with+complex+and+actively+perfused+channel+network%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional fabrication of thick and densely populated soft constructs with complex and actively perfused channel network.</a> Acta Biomaterialia. 65, 174-184 (2018).</li>
<li>Shimizu, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polysurgery+of+cell+sheet+grafts+overcomes+diffusion+limits+to+produce+thick%2C+vascularized+myocardial+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22The+FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">Polysurgery of cell sheet grafts overcomes diffusion limits to produce thick, vascularized myocardial tissues.</a> The FASEB Journal. 20 (6), 708-710 (2006).</li>
<li>Sakaguchi, K., Shimizu, T., Okano, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Construction+of+three-dimensional+vascularized+cardiac+tissue+with+cell+sheet+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Controlled+Release%22%5BJournal%5D)">Construction of three-dimensional vascularized cardiac tissue with cell sheet engineering.</a> Journal of Controlled Release. 205, 83-88 (2015).</li>
<li>Ong, C. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Creation+of+Cardiac+Tissue+Exhibiting+Mechanical+Integration+of+Spheroids+Using+3D+Bioprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Creation of Cardiac Tissue Exhibiting Mechanical Integration of Spheroids Using 3D Bioprinting.</a> Journal of Visualized Experiments. 125 (e55438), (2017).</li>
<li>Tan, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+number+per+spheroid+and+electrical+conductivity+of+nanowires+influence+the+function+of+silicon+nanowired+human+cardiac+spheroids%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Cell number per spheroid and electrical conductivity of nanowires influence the function of silicon nanowired human cardiac spheroids.</a> Acta Biomaterialia. 51, 495-504 (2017).</li>
<li>Karra, R., Poss, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Redirecting+cardiac+growth+mechanisms+for+therapeutic+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">Redirecting cardiac growth mechanisms for therapeutic regeneration.</a> Journal of Clinical Investigation. 127 (2), 427-436 (2017).</li>
<li>Bartholoma, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+in+vitro+reaggregates+of+embryonic+cardiomyocytes%3A+a+potential+model+system+for+monitoring+effects+of+bioactive+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomolecular+Screening%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional in vitro reaggregates of embryonic cardiomyocytes: a potential model system for monitoring effects of bioactive agents.</a> Journal of Biomolecular Screening. 10 (8), 814-822 (2005).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

この法の意義は、その再現性と結果の多層の心臓組織の有効性であります。心臓組織工学分野での現在の目標の一つ、打撃、多層、および機能の 3次元心筋パッチを作成する方法を特定します。心筋細胞、血管内皮細胞、線維芽細胞から成る小説ネット型に回転楕円体の手動直播による多層心臓組織を作成する効率的かつ再現性のある方法を報告する.このメソッドで使用される純金型は、様々 な異なるサイズ 6 × 6 × 1 mm 2 × 2 × 1 mm に至る組織を作成するために。については技術を別金型形状と目的組織のジオメトリに応じて、システムの変更もできます。記載されている濃度と比は以前、による CMs に最適化した、異なる細胞型への変更追加の評価が必要になります。
治療および診断モデルの開発の希望を持つ bioprinter 技術を用いた 3次元心臓組織の体外作成を検討されています。ただし、現在バイオプリンティング法は面倒で、膨大な時間と針や足場材料などの補助的なサポート構造の使用を必要です。これらの補助的な存在は、栄養素や酸素18の拡散構造...

現在の心臓組織工学の目的は、交換または構造と負傷した心筋組織1の機能を修復する治療法を開発することです。ネイティブの心臓組織の重要な収縮と電気生理学的特性を示す心筋組織の 3次元モデルを作成する方法には2,3を急速に拡大しています。様々 な戦略を模索、研究4,5で使用されます。これらの方法はゼラチン、コラーゲン、フィブリン、ペプチド6などの合成と天然特定の生理活性物質ゲルの使用からバイオ インク蒸着の技術2バイオプリンティング技術の7まであります。
足場自由な方法が外部足場材料8を組み込むことの欠点がなく、生体材料ベースのメソッドとして匹敵する組織を作り出すことができることが示されています。オレン カスピーらは、種々 の細胞の結合が高度に血管人間設計された心臓ティッシュ9の生成を有効を示した。あごらは、回転楕円体から心臓のパッチを作成するための 3次元印刷法を開発しました。結果として得られるパッチ参照比10で血管内皮細胞、線維芽細胞、心筋細胞で構成されます。回転楕円体は、効果的な「ビルディング ブロック」足場無料心臓組織の作成の彼らの低酸素状態に対する耐性があるし、注入11,12の十分な機械的完全性を持って示されています。以前の研究は、回転楕円体を作成するためのいくつかの製造方法を示している、絞首刑の使用を含むドロップ メソッド、スピナー フラスコ13、マイクロ流体システム14、および非付着性文化の表面光沢をめっきしたものアガロース マイクロ金型15。このプロトコルでは絞首刑を使用してドロップ デバイスは、一度に何百もの回転楕円体を凝縮の細孔が含まれています。
本研究は、小説と正方形の金型に、回転楕円体を手動でシードとシェーカーで組織の成熟をインキュベートを含む心臓組織の創造のための効率的な足場無料メソッドを示します。いつも静置培養条件下で酸素の拡散は中心壊死をもたらす組織構成要素の外側の側面に限定されます。ただし、ネット型で金型にシードすべての楕円は、栄養素や酸素の増加の拡散を可能にする一定の流体運動とメディアに没頭しています。また、この金型ベースのメソッドは、最小限の労力でサイズの異なる組織パッチの同時作成、金型から得られた組織を簡単に削除できます。この手法スキャフォールド フリー、多層の心筋パッチの効率的かつ再現可能な作成できます。

<table><tbody><tr><td>ヒト心臓線維芽細胞(HCF)</td><td>Sciencell</td><td>6310</td><td></td></tr><tr><td>FM-2は基礎培地で構成されていますSciencell</td><td></td><td>2331</td><td>HCF培養培地</td></tr>ヒト<tr><td>臍帯静脈内皮細胞(HUVEC)</td><td>ロンザ</td><td>CC-2935</td><td></td></tr><tr><td>EGM+バレットキット&nbsp;</td><td>ロンザ</td><td>CC5035</td><td>HUVEC 培地</td></tr><tr><td>E8 培地&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>A1517001</td><td>HiPSC培地</td></tr><tr><td>Geltrex&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>A1413202</td><td></td></tr><tr><td>TrypLE Express Enzyme (1X)</td><td>Thermo Fisher</td><td>12604013</td><td>Trypsin and Cell disscleation reagent</td></tr><tr><td>RPMI 培地</td><td>Invitrogen</td><td>11875093</td><td>RPMI 培地と B-27 サプリメントは hiPSC-CM 培地</td></tr><tr><td>B-27 supplement (50x)</td><td>Thermo Fisher</td><td>17504044</td><td>RPMI 培地と B-27 supplement は hiPSC-CM 培地</td></tr><tr><td>Trypan Blue溶液、0.4%</td><td>サーモフィッシャー</td><td>15250061</td><td></td></tr><tr><td>ノベルネットモールド&nbsp;</td><td>ティッシュバイネット(株</td>) <td>NM25-1</td><td></td></tr><tr><td>吊り下げ式ドロッププレート</td><td>クラレ(株</td>) <td>MPc350</td><td></td></tr><tr><td>6ウェルプレート&nbsp;</td><td>シグマ・アルドリッチ</td><td>CLS-3516</td><td></td></tr></tbody></table>

スキャフォールド フリー三次元心筋組織構築純金型ベース方式

A Net Mold-based Method of Scaffold-free Three-Dimensional Cardiac Tissue Creation

このプロトコルでは、小説と追加足場材料なし三次元 (3 D) の心筋組織を作成する簡単な純金型ベース方法をについて説明します。人間誘導された多能性幹細胞由来心筋細胞 (iPSC CMs)、心臓 (HCFs)、線維芽細胞およびひと臍帯静脈血管内皮細胞 (Huvec) は、隔離され、70 %ipsc - cms、15 %hcfs と 15 %huvec 細胞懸濁液を生成するために使用します。回転楕円体の数百人を一度に凝縮用孔を含む超低添付ファイル「ハンギング ドロップ」システムの共培養しています。セルを集計、自発的に共培養 3 日後暴行スフェロイドを形成します。スフェロイドは収穫され、新規金型に播種、シェーカーのインキュベーター内で培養しました。スフェロイドは播種後約 7 日成熟した機能的な組織になります。結果多層組織は満足のいく構造的整合性と同期打撃動作溶かされた回転楕円体から成っています。この新しいメソッドでは、将来的に心不全の治療のために設計された組織を作成する再現性とコスト効果の高い方法として有望な可能性があります。

実験では、我々 は 70% iPSC CMs、15% HCFs mL あたり 2,475,000 細胞の濃度で RPMI/B-27 携帯メディアで 15 %huvec の細胞懸濁液を利用しました。プロトコルの手順 4.3 細胞懸濁液を作成した後は、ハンギング ドロップ システム、超低添付ファイルの各ウェルに細胞懸濁液 4 mL を分配しました。絞首刑の使用ドロップ システムは湿度 95%、5% CO2、37 ° C で培養 3 日後回転楕円体を破っての何百もの自発の形成で起因しました。スフェロイドは 4 X、10 X 倍率平均直径 350 μ m の文化 (図 1) の 72 時間後に顕微鏡下で叩いている簡単に観察されました。
、回転楕円体を収穫後、プロトコルの手順 6.5 の終わりに金型は簡単に単純なピペッティング メソッドをシードだった。回転楕円体の融合で使用できるカ...

このプロトコルでは、満足のいく構造的整合性と同期打撃動作立体足場無料心臓組織を作成する純金型ベースの方法について説明します。

This protocol describes a novel and easy net mold-based method to create three-dimensional (3-D) cardiac tissues without additional scaffold material. ...

このプロトコルは、スフェロイドを足場のない心臓組織作成のためのツールとして使用する、3次元心臓組織作成のための新しくて簡単な金型ベースの方法について説明しています。私たちの実験では、ヒト人工多能性幹細胞由来心筋細胞、ヒト心線維芽細胞、ヒト臍帯静脈内皮細胞の3種類の細胞を単離し、細胞懸濁液を作製しました。70%の心筋細胞、15%の線維芽細胞、および15%の内皮細胞を50MLの円錐形チューブに入れています。次に、細胞懸濁液を超低アタッチメントハンギングドロップシステムの各ウェルに分注し、3日後に数百のビートスフェロイドが自発的に形成されます。その後、スフェロイドを回収し、新しい型キャビティに装着します。その後、組織は培地を入れた滅菌容器に、インキュベーター内のシェーカーで数日間維持されます。その後、金型を取り外し、機械的完全性を備えた足場のない組織パッチが得られます。吊り下げ式ドロップ装置は、直径350ミクロンの850個のマイクロポアを備えた再利用可能な超低アタッチメントウェルです。吊り下げ式ドロップは、標準の6ウェルプレートに対応しています。細胞懸濁液を作成した後、1,000万個の細胞を含む4ミリリットルの細胞懸濁液を、吊り下げ式ドロップシステムの各ウェルに分注します。デバイスは、摂氏37度、二酸化炭素5%、湿度95%で培養されます。72時間後、平均直径350ミクロンの鼓動スフェロイドの自発的な形成が観察される。スフェロイドを採取するには、吊り下げ装置を培地のある別の皿に入れ、穏やかに渦巻いてスフェロイドを解放し、吊り下げ式ドロップシステムの下部にある細孔を漂流させます。これは、3次元で足場のない心臓組織を作成するための新しい型の概略図です。ハンドリングマット、充填ベース、新規金型が含まれています。斬新な金型は、ベース、底面の正方形のプレート、底面のネット、細かいステンレス鋼のプロングで作られた10層のサイドネットで構成されています。トップネット、トップスクエアプレート、保持チューブ、ストッパーピン。Novel Moldシステムは、2 x 2 mm、4 x 4 mm、6 x 6 mmなど、さまざまなサイズの組織を作成できます。底面の角型プレートと底部のネットは、コーナーポストを使用して積み重ねられ、位置合わせされます。次に、10層のサイドネットを交互に積み重ねて、滅菌鉗子のペアの助けを借りて、細かいステンレス鋼のプロングのネットを作成します。次に、充填ベースを1Xリン酸緩衝液(PBS)で洗い流し、表面張力を下げてから、スフェロイドを新規の型に着座させます。新規の金型キャビティを同じメタンで濡らした後、スフェロイドは所望のサイズの想定されたキャビティに着座します。着座すると、余分な培地がネットモールドから排出され、スフェロイドが充填され、事前定義されたキャビティ

a-net-mold-based-method-scaffold-free-three-dimensional-cardiac

Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

このプロトコルでは、毛細管現象リソグラフィーを使用して、2つの異なる高分子材料から作られた生体模倣心細胞培養基質の作製を実演します。 記載されている方法は、in vitroおよびin...

心臓組織工学のためのキャピラリーフォースリソグラフィ

整列心筋組織の生成が臨床的に有用な目的のために、幹細胞生物学の最近の進歩に適応させるための重要な要件です。ここに我々は、細胞の形や機能の正確な制御のためのマイクロコンタクトプリントのアプローチについて説明します。心臓前駆細胞由来の胚性幹細胞の高度に精製された集団を使用して、我々はそれから異方性、機能心筋組織を生成します。...

マイクロコンタクトプリントスルーアライン機能心筋組織の生成

これらの研究では、我々は、回生の研究で使用するための新規、新生児マウスの心臓足場のための方法論を提供します。...

新生児心臓足場：再生研究のための新しい行列

このプロトコルは、生体材料を使用せずに心臓組織の3Dバイオプリントを記述する。 3Dバイオプリントされた心臓パッチは、構成要素スフェロイドの機械的統合を示し、心臓組織の再生および心臓病の3Dモデルとして非常に有望である。...

3D Bioprintingを用いたスフェロイドの機械的統合を示す心臓組織の創出

本プロトコルは、ヒト人工多能性幹細胞由来の心血管細胞を含むメッシュ状の人工心臓組織を生成し、心臓病の細胞移植療法の調査を可能にする。...

生体内心筋修復用ヒトiPS細胞由来のメッシュ状の設計心臓組織の調製

ここでは、分化前のヒト人工多能性幹細胞由来心筋細胞、心臓線維芽細胞、および内皮細胞からなる3D自己組織化心臓ミクロ組織アレイを生成するための使いやすい方法論について説明する。心臓ミクロ組織を生成するためにこのユーザーフレンドリーで低細胞を必要とする技術は、疾患モデリングおよび医薬品開発の初期段階に実装することができる。...

ヒトiPSC由来心筋細胞、心臓線維芽細胞、内皮細胞を用いた3次元心臓ミクロ組織アレイの作製

設計された組織は、重要な栄養素やガスを提供し、代謝廃棄物を除去するために適切な血管ネットワークに大きく依存しています。この研究では、内皮細胞と支持細胞の段階的な播種プロトコルにより、制御された3D環境における血管挙動の開発を研究するための高スループットプラットフォームで、高度に組織化された血管ネットワークを作成する。...

発芽血管を研究するためのテッセレーション足場の段階的な細胞播種

このプロトコルの目的は、生体整血、コラーゲンベースのヒドロゲル、心臓組織工学、薬物スクリーニング、および疾患モデリングにおける応用のために、心臓線維芽細胞(CF)と共培養された幹細胞由来心筋細胞で構成される、高度に整列したヒト心臓組織の三次元(3D)微小流体モデルの開発を説明し、実証することである。...

マイクロ流体プラットフォーム内での3D組織化ヒト心臓組織の開発

患者固有のモデルは、外科計画を開発または学習する際に、外科医と仲間の信頼を向上させます。3次元(3D)プリンタは、手術の準備に十分な詳細を生成しますが、組織触覚忠実度を複製することができません。3Dプリンティング精度とシミュレートされたシリコーン組織を組み合わせた、患者固有のシリコーン心臓モデルの作成を詳述したプロトコルが提示されます。...

手術前計画と実習訓練における応用を有する患者特異的シリコーン心臓モデルの作成

メルトエレクトロスピニングライティング(MEW)、ポリカプロラクトン(PCL)スキャフォールド、フィブリンハイドロゲルをhiPSC由来の心筋細胞および線維芽細胞と組み合わせた3D心筋組織を作製するための再現性の高い方法を紹介します。この手法は、スキャフォールドアーキテクチャを正確に制御し、前臨床薬物試験や心疾患モデリングに適用できます。...

ポリカプロラクトン足場およびhiPSC由来心細胞の溶融エレクトロスピニングライティングを用いたヒト心筋組織作製

学ぶスカフォールドフリー三次元心筋組織構築法。純金型ベース方式でスフェロイドを用い、iPS細胞由来心筋細胞、線維芽細胞、血管内皮細胞を組み合わせて同期拍動する組織を作成します。再生医療研究に応用可能です。

スキャフォールドフリー三次元心筋組織構築純金型ベース方式

さらに動画を探す

スキャフォールド フリー三次元心筋組織構築純金型ベース方式

さらに動画を探す

スキャフォールドフリー三次元心筋組織構築純金型ベース方式