Name: マイクロコンタクトプリントスルーアライン機能心筋組織の生成 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-19T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 9 s
Description: 学ぶマイクロコンタクトプリンティング法を用いて、胚性幹細胞由来の心臓前駆細胞から整列した機能的心筋組織を作製する方法。細胞形態の精密制御により、心臓再生医療への応用可能性が向上する。

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この作品は、ナノシステム研究センター（CNS）、無のNSF賞の下で国立科学財団によってサポートされている国家ナノテクノロジー基盤ネットワーク（NNIN）のメンバーで、一部で実施された。 ECS-0335765。 CNSは、ハーバード大学の一部である。

整列機能心筋組織を生成するためのプロトコルは、大きく3つの部分に分けることができます。ソフトリソグラフィ技術を用いてマイクロパターンマスタの製造は、次のプロトコルの一部とは見なされませんが、確立された方法6に基づいて行うことができる。 1。 PDMS基板上にフィブロネクチンのマイクロコンタクトプリンティング<ol><li>ミックスシルガード10時01分硬化剤の比率をベースと脱ガス気泡を除去するためにデシケーターを使用して、アセンブリで184（ダウコーニング）のPDMSエラストマー。 </li><li> 20μm幅と室温または65℃で4時間で2日間のどちらかに20μmの間隔で区切られた2μmの背尾根、°Cが微小構造のPDMSスタンプを取得すると以前に製造されたマスターに対してPDMSを硬化させる。 </li></ol> *デシケーター中で硬化は非常に任意の気泡を除去することをお勧めします。 <ol start="3"><li>ガラスカバースリップ（ 例えば上にスピンコートPDMS15μmの厚さであっても薄いとPDMS基板を製造するために車間スピンコーターを用いて2分間5,000 rpmで22x22のmm）です。 </li><li>埃や汚れの粒子を除去するために、70％エタノールでスタンプをきれいにしてください。空気が乾燥してみましょう。 </li></ol> *スタンプが複数回使用することができますが、定期的にPDMSスタンプを更新する時間をかけて表面の摩耗により推奨されます。 <ol start="5"><li> 275ミリトルで1分間、SPIプラズマPrep IIプラズマクリーナーとプロセスに置きスタンプはPDMSの表面が親水性にする。 </li></ol> *酸素プラズマ処理は監視すべきである。長い治療時間は、エラストマーの割れが発生することがあります。 <ol start="6"><li> 1分間、70％エタノールでスタンプを滅菌する。圧縮空気で素早く乾燥。 </li></ol> *さらなるステップは、無菌性を維持するために、生物学的安全キャビネットで行うべきです。 <ol start="7"><li> Fでスタンプ表面を覆うibronectin液（蒸留H 2 O中の50μg/ ml）を。それが吸着する少なくとも10分してみましょう。 </li><li>スタンプからフィブロネクチンソリューションを振り払うと圧縮空気で素早く乾燥。 </li><li> 2分間スタンプおよびPDMS基板間の等角接触を確立し、しっかりと押してください。 </li><li>蒸留H 2 Oでマイクロパターン基板をすすぐ最初に使用しない限り、4℃で2週間の最大のddH 2 O中で保管してください。蒸留H 2 OのストアPDMSスタンプ</li></ol> 2。ダブルトランスジェニック胚性幹細胞株の維持まず、培養マウスES細胞については、次のメディアを準備します。 マウス胚線維芽細胞（MEF）ミディアム：ダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）、10％ウシ胎児血清（FBS）、ES細胞や分化グレード、1％ペニシリン-ストレプトマイシン（P / S） 胚性幹細胞（ESC）ミディアム：DMEM、15％FBSをES細胞グレード、非必須アミノ酸（NEAA）1％、0.5％、P / S、0.2％白血病阻害因子（LIF）、0.0007％2 - メルカプトエタノール（2-ME）を<ol><li>蒸留H 2 Oおよび37℃で15分間吸着させ、それを聞かせて℃のゼラチン滅菌0.1％コート6ウェルプレート</li><li>円錐管で解凍アリコートから50 mlのPBSにMEFを加え、5分間1,000 rpmで、それらを遠心分離します。 MEF-培地に再懸濁したMEF。 </li><li>ウェルに吸着、吸引過剰ゼラチンおよびadd MEFの後。 MEFは1日、添付することができます。 </li></ol> * 3 6ウェルプレート用の千万のMEFで十分のアリコート。 <ol start="4"><li> MEFには添付している場合には、円錐管で解凍アリコートから50 mlのPBSにES細胞を追加し、5分間1,000 rpmで、それらを遠心分離します。再懸濁したESは、ESC-培地中の細胞とMEFを含むウェルに追加します。合流点に到達するまで、ESC-培地で培養したES細胞。 </li></ol> *一度ES細胞は継代はのrequです、合流点に達している繁茂を回避し、ES細胞コロニーを維持するために、赤外発光ダイオード。 <ol start="5"><li>継代のためにES細胞を準備します。吸引ESC-培地と滅菌PBSで1回洗浄します。 </li><li> PBSを吸引除去し、トリプシンの500μlを添加する。 37℃で3.5分プロセス℃まで</li><li> ES細胞コロニーを打破​​し、ESC-培地500μlでそれを中和するために、上下に数回トリプシン溶液をピペット。 </li><li>ご希望の比に応じて通過したES細胞は、通路1月30日に先に調製したMEFを持つ別のウェルに33μlの転送など 。 ESC-培地でES細胞を維持。 </li></ol> * 1/30の通過率は、ES細胞が3日以内にコンフルエントに到達することができます。通過したES細胞は、あなたのin vitro分化のスケジュールに従って。 （3）二重トランスジェニック胚性幹細胞株および心臓前駆細胞の単離とその種のインビトロ分化まず、followiを準備ES細胞のin vitroでの分化に必要なNGメディア： 適応-ミディアム：イスコフ改変ダルベッコ培地（IMDM）、15％FBSをES細胞グレード、1％NEAA、0.5％、P / S、0.2％、LIF、0.0007％2-ME 分化ミディアム：IMDM、15％のFBS分化グレード。 1パーセントNEAA、0.5％、P / S、0.1Mアスコルビン酸の0.35％、0.0007％2-ME <ol><li> ES細胞がコンフルエントに達したときのin vitro分化に起動します。蒸留H 2 Oおよび37℃で15分間吸着させ、それを聞かせて℃のゼラチン無菌の0.1％のコート10cmの培養皿を</li></ol> * in vitroでの分化過程の期間に注意してください。心臓前駆細胞を単離することができるようになるまで、それは8日かかります。それに応じてあなたの実験を計画します。 <ol start="2"><li>以前のように収穫したES細胞。吸着、吸引過剰ゼラチン後、準備された文化にES細胞懸濁液の約1/3-1/2追加適応-培地を含む料理をお楽しみいただけます。 2日間の培養細胞。 </li></ol> *あなたの実験によると適応のためのES細胞の量を選択してください。 <ol start="3"><li>収穫は1を使用してPBSを含む50mlコニカルチューブにES細胞を適応した。トリプシンの5ミリリットル。 5分間1,000 rpmで解離したES細胞を遠心分離し、分化培地で再懸濁します。 </li><li>マルチチャンネルピペットを用いて15cmの培養皿で10μlのドロップあたり約1000個の細胞の胚様体（EB）を作る。 37℃で2.5日間滴をぶら下げとしてプレートや文化EBを反転℃に</li><li> 2.5日後、1 37℃でさらに3.5日間分化培地や文化、それらを使用して℃に6月8日15cmの培養皿のプールのEB </li><li> 3.5日後には、円錐形の50mlチューブにEBSを収集し、それらを約5分間、底に沈むことができます。上清を吸うと滅菌PBSでEBを洗う。 EBをAPPRための底に再び沈むましょうoximately 5分。 </li><li> 2でそれらを処理することにより、EBを解離する。 37℃の水浴中で2分間トリプシンを5ml℃〜そっとチューブを振る。次に、2を追加します。 5トリプシン溶液に滅菌PBSミリリットルと10ミリリットル血清ピペットで細胞塊を分解するのに約8から10回上下にピペッティング。 7.5パーセントのFBS ES細胞または分化グレードおよびPBS中の0.01％DAPIを含むFACS緩衝液10mlでトリプシンを中和する。 </li><li> 5分間1,000 rpmで解離EBを遠心分離し、FACS緩衝液約1mlに再懸濁します。 1mlのピペットで細胞塊を分解するのに約8から10回上下にピペッティング。 </li></ol> *解離EBの推定量に応じて、FACS緩衝液を追加します。あまりに高度に濃縮された細胞は、FACSの間に詰まらせることがあり、あまりにも低濃度の細胞が不必要にFACSの時間を延長することがあります。 <ol start="9"><li>取得するために35μmのセルストレーナーで滅菌丸底チューブに細胞を移し単一細胞懸濁液。 </li><li> FACSAriaフローサイトメーターを用いて分化したES細胞を選別し、CVPの精製された集団を得る。 </li></ol> *私たちは、高度に精製された着色された細胞を単離するためのマルチステップゲーティング戦略を開発した。簡単に言えば、我々前方散乱振幅（FSC-A）と側方散乱振幅（SSC-A）（ 図1A）上の最初の門。これは、私たちは細胞の破片から全細胞を分離することができます。その後、我々は、FSCと前方散乱光幅（FSC-W）（ 図1B）にゲート。これは、私たちはダブレットおよび他の細胞集合体から細胞シングレットを特定することができます。次に我々のSSC-及び側方散乱幅（SSC-W）（ 図1C）でゲート。これは、細胞シングレットの純度を向上させます。その後、我々は、DAPIでゲート非生存細胞（ 図1D）から生細胞を（DAPI陰性）を単離する染色。それから私達Phycoeryhthrin振幅（PE）とPE-シアニン色素7振幅（PE-Cy7-）上のゲート（R +真赤陽性を得るために </&gt;をSUP）と（R赤陰性真- ）細胞と自家蛍光赤陰性細胞（ 図1E）を除外する。 R +とR -細胞はフルオレセインイソチオシアネートの振幅（FITC）で別々に次にゲートされると、PE-緑真陽性（G +）と（ - G）グリーン陰性真ソートするために、これらの集団内の細胞（ 図1F + 1G）。次のようにセルの4集団でこの結果：R + G +、R + G -であり 、R - G +とR - G - （ 図1H）。 <ol start="11"><li> 10分間蒸留H 2 O中1％プルロニックF-127とマイクロパターン基板を不動態化する。その後、滅菌PBSで彼らは3倍洗う。 </li></ol> *プルロニックF-127は、そのブロックの細胞接着界面活性剤である。これは、マイクロパターン化エリアへの細胞接着の閉じ込めをサポートしています。 <ol start="12"><li>パターン化された領域の周囲のPDMSガスケットを取り付けしっかりと押し込みます。フィブロネクチンマイクロパターン基板上に続いて、シードは、CVP。 </li></ol>

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</ol>

著者らは、彼らが競合する経済的利益を持っていないことを宣言します。

このプロトコルでは、我々は彼らが整列し、心筋細胞のようなロッド形状を取ることができますどのような心原性前駆細胞の精製された集団を区別し、フィブロネクチンマイクロパターン基板上シードそれらをするための方法を提示した。正常な細胞組織は、心筋組織のために、特に、正常な組織機能8,10のために重要です。心筋細胞は、異方性セル·アレイを形成する際に、11,13 11,12改善された機械的および電気生理学的特性を発現することが示されている。マイクロパターン基板をフィブロネクチン上で培養した心臓前駆細胞は 、in vitro で 、棒状の心筋細胞に分化するので、これは心臓組織工学内apivotalステップを表します。 マイクロコンタクトプリントは 、in vitro での心筋組織に似ている2次元のテンプレートを生成するために使用できる、シンプルで安価なツールです。抽のが、効率的かつ成功したパターニングellularマトリックスタンパク質は、選択された蛋白質に決定的に依存しています。...

薬物療法における最近の進歩にもかかわらず、高度な心不全は、先進国における死亡率と罹患率の主要な原因のままです。臨床症状は、機能心筋組織の損失および罹患した個体の代謝要求を満たすために、心不全のその後不能から生じる。心臓が限られた再生能力を持っているので、自家心臓移植は、直接失わ機能的な心臓組織を補充を目的とした、現在臨床的に認められ治療法です。ドナー心臓および長期免疫抑制療法の必要性の限られた数を含む、心臓移植の重大な欠点は、この治療法の普及の使用を排除する。その結果、薬物療法では、心疾患患者の治療の主力となっている。医薬品開発における主要な課題は正確にin vitroで正常と病的心筋の生理を繰り返す細胞アッセイの識別である。 <html>幹細胞生物学と組織工学技術の最近の収束は、心臓再生のための新しい有望な道を発生させます。再生可能な患者固有のソースから機能的な心筋組織を生成すると、フィールド内の主要な進歩であろう。これは、医薬品開発と発見のための疾患特異的な細胞アッセイの開発が可能になると心臓の再生医療のための基礎を築くだろう。ヒト胚性幹細胞（ES細胞）と、もっと重要なのは、人間の人工多能性幹細胞（iPS細胞）は、心室前駆細胞および成熟した心室筋細胞の潜在的に再生可能な患者固有のソースを表します。幹細胞生物学と組織工学戦略の組み合わせでは、創薬のためか、進行した心不全の治療のための心臓再生のアプローチにおける細胞アッセイの開発に使用することができるin vitroで機能的な心臓組織を生成することで、この問題に対処しています。 _content &quot;&gt;心臓再生における中心的な課題は、最適な細胞タイプの同定されています。様々なソースから異なる多能性心臓前駆体が発見されているものの、細胞の広い配列が、しかし、今日まで、細胞の識別を1に研究されているこのような筋原細胞の運命へのコミットメントなどの重要な要件を満たしているソースは、機能的な心筋組織へのin vivoまたは in vitroおよび組成の展開する能力を維持することは、中心的な問題であることが証明された2。我々は以前に二重トランスジェニックマウス系を記載しているそれは非常にin vitroで分化したES細胞から、コミットされた心室性前駆細胞の集団（CVP）を精製単離を可能にします私たちはMEF2C遺伝子のISL1依存エンハンサーの制御下のDsRed赤色蛍光タンパク質を発現する新規な二重トランスジェニックマウスを作製し、の制御下で増強された緑色蛍光タンパク質心臓特異的エンハンサーNkx2.5。この2色の蛍光レポーターシステム、MEF2CとNkx2.5遺伝子の発現に応じて蛍光活性化細胞選別（FACS）を用いて単離することができる開発ES細胞からの第一及び第二の心臓フィールド前駆細胞に基づく。 CVPは、心臓組織の再生を目的とした偉大な約束を提供しています何の心筋マーカーとの構造的および機能的な資質3の発現パターンに基づいて、心筋細胞に似ている。 組織工学の分野における多くの進歩があったが、ネイティブの細胞構造を模倣することは重要な課題として残されている。この課題に対処するための従来の方法は 、in vitro での細胞と播種生物学的または合成足場が含まれています。急速な分解、限られた物理的および機械的安定性と低細胞密度1,4,5含む足場、の多くの欠点のために、我々は足場のない組織を設計しようとしました。 Altキーハフ心臓の細胞が細胞外マトリックスタンパク質の分泌によってそれらの局所微小環境を変更することができ、それらは細胞外手がかりがない状態で棒状の心筋細胞に自分自身を整理するための、より限られた能力を持っている。このように、機能的な心筋組織を構成する細胞は、適切な空間および生物学的な手がかりを提供するテンプレートが必要です。マイクロコンタクトプリントは、正確に位置合わせ機能心筋組織の生成のために重要であるすべては細胞の形状、組織、機能6-8を 、制御するための簡単かつ安価な手法を提供することにより、この課題に対応します。それは正確なパターンで、PDMS基板上に細胞外マトリックスタンパク質の沈着を有効にしてこのように空間的に細胞接着に影響を与えることが2μm9に至るまで、機能·サイズの微小構造のポリジメチルシロキサン（PDMS）スタンプの使用を含む。 ここで、我々は、幹CELで組織生体工学技術を組み合わせることを提案するlは生物学異方性、機能心筋組織を生成する。したがって、我々はここで、次のための私達の最近出版されたアプローチを示す：（1）境界の心筋組織のためのテンプレートを生成するためのマイクロコンタクトプリンティングによるPDMS基板上にマイクロパターンタンパク質表面の生成（2）高から心臓前駆細胞の精製分離ES細胞は 、in vitro で分化、および（3）の両方の技術の組み合わせは、整列機能的な心筋組織を生成する。

<table border="1"><tbody><tr><td> マテリアルの名前 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> 注釈 </td></tr><tr><td> L-アスコルビン酸</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> A4544 </td><td>蒸留H 2 O中0.1M溶液を準備</td></tr><tr><td>デシケーター、真空10インチ</td><td>ノヴァテック·インターナショナル、Inc。 </td><td> 55206 </td><td></td></tr><tr><td> 4 &#39;、6 - ジアミジノ-2 - フェニルインドール、塩酸塩（DAPI） </td><td>ライフテクノロジーズ</td><td> D1306 </td><td></td></tr><tr><td>ダルベッコ改変イーグル培地</td><td>サーモサイエンティフィック</td><td> SH30022.01 </td><td></td></tr><tr><td> DPBS </td><td>ギブコ</td><td> 14190 </td><td></td></tr><tr><td> FACSAria IIフローサイトメーター</td><td> BD Biosciences社</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎仔血清ES細胞グレード</td><td>ジェミニバイオ製品</td><td> 100から106 </td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清分化グレード</td><td>ジェミニバイオ製品</td><td> 100から500 </td><td></td></tr><tr><td>ウシ血漿からフィブロネクチン</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> F4759 </td><td>蒸留H 2 O中で1 mg / mlに可溶化</td></tr><tr><td> Fisherfinestプレミアムカバーガラス22x22mm </td><td>フィッシャー·サイエンティフィック</td><td> 12から548-B </td><td></td></tr><tr><td>ブタ皮膚由来のゼラチン</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> G1890 </td><td> ddH 2 Oを0.1％の溶液を調製</td></tr><tr><td>車間スピンコーター</td><td>ヘッドウェイ·リサーチ社</td><td> PWM32-PS-CB15 </td><td></td></tr><tr><td>イスコフ改変ダルベッコ培地</td><td>サーモサイエンティフィック</td><td> SH30228.01 </td><td></td></tr><tr><td>白血病抑制因子</td><td>セルフLIFの分泌細胞株から調製された</td><td></td><td> 500分のストック溶液を調製</td></tr><tr><td> MEM非必須アミノ酸</td><td>ギブコ</td><td> 11140-050 </td><td></td></tr><tr><td> 2 - メルカプトエタノール</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> M6250 </td><td></td></tr><tr><td>マウス胚線維芽細胞</td><td>日12月15日マウス胚から採取した</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン - ストレプトマイシン</td><td>ギブコ</td><td> 15140-122 </td><td></td></tr><tr><td>プルロニックF-127 </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> P2443 </td><td>蒸留H 2 O中の1％の溶液を調製</td></tr><tr><td>丸底チューブ35μmのセルストレーナー付き</td><td> BD Biosciences社</td><td> 352235 </td><td></td></tr><tr><td> SPIプラズマPrep IIプラズマクリーナー</td><td> SPI用品</td><td> 11005-AB </td><td></td></tr><tr><td>シルガード184シリコーンエラストマーキット</td><td>ダウコーニング</td><td> 184 SIL ELASTキット0.5KG </td><td></td></tr><tr><td> 0.25％トリプシン-EDTA </td><td>ギブコ</td><td> 25200-056 </td><td></td></tr><tr><td>真空計</td><td> SPI用品</td><td> 11019-AB </td><td></td></tr></tbody></table>

マイクロコンタクトプリントスルーアライン機能心筋組織の生成

Generation of Aligned Functional Myocardial Tissue Through Microcontact Printing

高度な心不全は、生存および/または完全に機能する心筋細胞の損失から生じる、主要な臨床上の満たされていない課題である。最適な薬物療法にもかかわらず、心不全は、先進国における死亡率と罹患率の主要な原因を表しています。医薬品開発における主要な課題は正確にin vitroでの正常および病的な人間の心筋の生理学を再現細胞アッセイの識別である。同様に、回生心臓生物学における主要な課題は、臨床的に関連する量で患者固有心筋前駆細胞の同定および単離を中心に展開。これらの細胞は、ネイティブ心臓組織構造に似ている機能的な組織に組み込まれなければならない。マイクロコンタクトプリントは、このように空間的に細胞接着を制御するために幾何学的な手がかりを提供して、心臓の構造組織に似ている正確なマイクロパターンタンパク質形状の作成 ​​が可能になります。ここに我々は非常にin vitroで 、細胞外マトリックスタンパク質とマイクロパターン化細胞成長表面の生成、および異方性の心筋組織への幹細胞由来の心筋細胞の集合体で分化する多能性幹細胞から心筋細胞を精製単離するための我々のアプローチについて説明します。

in vitroで分化したES細胞でのFACS精製は、前駆細胞の4つの異なる集団（ 図1）を明らかにした。マイクロパターンフィブロネクチンの存在は、連続的なフィブロネクチンライン（ 図2）の完全な転送を表示免疫蛍光顕微鏡検査法により確認された。 G +集団-フィブロネクチン微細パターン上に、FACS分離された前駆体のメッキがR + G +とRの一部のアラインメントをもたらした。細胞接着を支持ブロッカーとしてプルロニックF-127が使用されていたが、R + G -であり、R - G -集団は、フィブロネクチンの異方性アーキテクチャを尊重し、隣接したタンパク質線（ 図3）との間の空間に成長していませんでした。 <p class="jove_content" fo:keep-together.within-page="alw...

整列心筋組織の生成が臨床的に有用な目的のために、幹細胞生物学の最近の進歩に適応させるための重要な要件です。ここに我々は、細胞の形や機能の正確な制御のためのマイクロコンタクトプリントのアプローチについて説明します。心臓前駆細胞由来の胚性幹細胞の高度に精製された集団を使用して、我々はそれから異方性、機能心筋組織を生成します。

Advanced heart failure represents a major unmet clinical challenge,  arising from the loss of viable and/or fully functional cardiac muscle  cells. ...

本実験の目的は、マイクロコンタクトプリンティングを用いて、配向した機能的な心筋組織を作製することである。これは、まずポリジメチルシロキサン基板上にフィブロネクチンをマイクロコンタクトプリンティングすることで達成される。第2のステップとして、ダブルトランスジェニック胚性幹細胞株をin vitroで分化させ、蛍光活性化細胞分画法（FACS）を用いて単離することで、強い心筋分化能を持つ前駆細胞の高純度な集団を得ることができます。次に、単離した心筋前駆細胞をマイクロパターン化されたPDMS基板上に播種し、細胞を整列させ、心筋細胞のような棒状の形態に誘導します。その結果、実証データおよび免疫蛍光分析に基づき、心筋前駆細胞の単離と等方性成長が成功したことが示されました。等方性の心筋組織を生成することは、疾患特異的な細胞アッセイの開発による創薬および薬剤探索の可能性を高め、さらに心臓再生医療の基盤を築くことで、幹細胞生物学および組織バイオエンジニアリングの分野を発展させるのに役立ちます。まず、ポリジメチルシロキサンエラストマーを硬化剤との比率10:1で調製し、十分に混合します。気泡を除去するため、デシケーターを用いてアセンブリを脱気します。20 micronの幅と2 micronの厚みの突起があり、それらが20 micronの間隔で配置された既製のマスターにPDMSを流し込み、室温のデシケーター内で2日間硬化させて、マイクロテクスチャPDMSスタンプを作製します。その後、プラズマクリーナーを用いてPDMSスタンプの表面を親水化します。スタンプを70% ethanolで1分間滅菌します。生物安全キャビネット内で、圧縮空気を用いて速やかに乾燥させます。滅菌したスタンプ表面をfibronectin溶液で覆い、吸収させた後、少なくとも10分間静置します。スタンプからフィブロネクチン溶液を振り落とし、圧縮空気で速やかに乾燥させます。テキストプロトコルに従い、スタンプと事前に準備したPDMSコーティング済みガラスカバースリップを2分間しっかりと押し付け、コンフォーマル接触させます。マイクロパターン基板を蒸留水で洗浄します。すぐに使用しない場合は、蒸留水中で最大2週間、4 °Cで保存します。6ウェルプレートを蒸留水で調製した滅菌済み0.1%ゼラチンでコーティングし、37 °Cで15分間吸収させます。この間に、マウス胚性線維芽細胞のアリコートをコニカルチューブに入れた50 mLのPBSに加え、準備します。1000 RPMで5分間遠心分離し、meth培地で再懸濁します。インキュベーション時間が経過したら、余分なゼラチンを吸引し、ウェルにMESを添加します。MESを1日間付着させます。分注した胚性幹細胞（ES細胞）を、コニカルチューブ内の50 millilitersのPBSに加えて準備し、遠心分離機で遠心します。ES細胞を1000 RPMで5分間遠心分離し、ESC培地で再懸濁します。マウス細胞を含むウェルにES細胞を加え、コンフルエントになるまでESC培地で維持し、コンフルエントなES細胞を回収します。まず、ESC培地を吸引し、滅菌PBSで細胞を1回洗浄します。次にPBSを吸引し、ウェルに500 µLのトリプシンを加えます。プレートを37 °Cで3分30秒間インキュベートします。トリプシン溶液をピペットで数回吸い上げ、吐き出します。まず、ES細胞のコロニーを分散させます。次に、ウェルに500 µLのESC培地を添加してトリプシン溶液を中和します。必要量に応じてES細胞を調整します。ここでは、ES細胞を1:30の比率で継代しており、これにより3日以内にコンフルエントになります。ES細胞がコンフルエントに達したら、in vitro 分化を開始します。まず、10 cm 培養皿を蒸留水で調製した滅菌済み 0.1% ゼラチンでコーティングし、37 °C で15分間浸透させます。この間に、前述の手順と同様に ES 細胞を回収します。15分経過後、余分なゼラチンを吸引し、E ES細胞懸濁液の約3分の1から半分を、適応培地を含む培養皿に加えます。適応培地で2日間培養した後、1.5 mLのトリプシンを用いて、適応させたES細胞をPBSを含む50 mLコニカルチューブに回収します。1000 RPMで5分間遠心分離し、分化培地で再懸濁します。15 cm培養皿の中の分化培地10 µLのドロップあたり、約1000細胞の胚体（EB）を作成します。マルチチャネルピペットを使用してプレートを反転させ、培養します。EBを37 °Cで2.5日間、吊り下げ滴法（hanging drop）で培養します。2.5日後、分化培地を用いて6〜8枚の15 cmディッシュからEBSを1枚のディッシュにまとめ、さらに3.5日間培養します。さらに3.5日後、EBSを50 mLコニカルチューブに回収し、すべてのEBSを回収するためにプレートを滅菌PBSで1回洗浄します。その後、約5分間、EBSを底に沈殿させます。次に上清を除去し、EBSを滅菌PBSで洗浄します。EBSが再び底に沈殿するまで約5分間放置します。2.5 millilitersのtrypsinを加えてEBSを分散させ、37 degrees Celsiusのウォーターバス中で2分間、チューブを静かに振盪します。次に、トリプシン溶液に滅菌PBSを2.5 milliliters加え、10 milliliterのセロロジカルピペットで8〜10回ほどピペッティングし、細胞塊を分散させます。7.5%のES細胞または分化グレードのFBSおよび0.01%のDPIを含むPBSベースのfax buffer 10 millilitersを加え、トリプシンを中和させます。解離させたEBSを1000 RPMで5分間遠心分離します。その後、上清を除去し、約1 milliliterのfax bufferを加え、1 milliliterピペットで8〜10回ほどピペッティングして細胞塊を分散させます。細胞を35 micronのセルストレーナーを備えた滅菌済みのラウンドボトムチューブに移し、単一細胞懸濁液を得ます。ariaフローサイトメーターを用いて分化させたES細胞を分取し、精製されたコミット済み心室前駆細胞集団を取得します。詳細なゲーティング戦略については、プロトコルの本文を参照してください。1%onic F1 27の蒸留水溶液でマイクロパターン基板を10分間処理します。その後、滅菌PBSで3回洗浄します。パターン領域の周囲にPDMSガスケットを取り付け、しっかりと押し付けます。次に、心筋前駆細胞をフィブロネクチンマイクロパターン基板上に播種します。以下の画像は、in vitroで分化させた6日目のES細胞の代表的なフローサイトメトリーチャートです。この画像は、前方散乱光強度FSCAおよび側方散乱光強度SSCAによるゲーティングを示しています。これにより、全細胞を細胞デブリから分離することが可能になります。ここでは、FSCAおよび前方散乱光幅（FSCW）によるゲーティングが行われています。これにより、ダブレットやその他の細胞凝集体からシングルレット細胞を単離することができます。この画像は、SSCAとSSCWを用いた散布図によるゲーティングを示しています。これにより、シングルセル（単一細胞）の純度を高めることができます。また、この画像はFSCAとDPI染色のゲーティングを示しており、これにより非生存細胞から生存しているDPI陰性細胞を分離することが可能になります。ここでは、FITC、Rine、PE、およびPE-Cyanin 5.5、PE-Cy7のゲーティングが示されています。これにより、真の赤色陽性細胞および真の赤色陰性細胞の取得が可能となり、自家蛍光を持つ赤色陰性細胞を除外できます。これらの画像は、FITCおよびPEの振幅によるゲーティングを示しており、これにより赤色陽性および赤色陰性集団内の真の緑色陽性細胞および真の緑色陰性細胞を分取することが可能になります。in vitroで分化させたES細胞のFACS精製により、このフローサイトメトリーのプロットに示されるように、4つの異なる前駆細胞集団が明らかになります。これら4つの異なる前駆細胞集団は、赤陽性/緑陽性、赤陽性/緑陰性、赤陰性/緑陽性、および赤陰性/緑陰性です。この代表的な免疫蛍光顕微鏡像は、マイクロパターニングされたフィブロネクチン基質を示しています。スケールバーは80 micronsを表しています。この画像は、上段パネルに胚由来のfact（単離した前駆細胞）、下段パネルにフィブロネクチンマイクロパターン上でさらに5日間培養したESL由来のfact（単離した前駆細胞）の代表的な免疫蛍光顕微鏡写真を示しています。核は青色に染色されています。S-M-M-H-C-Aは赤色に染色されており、サルコメアα-アクチニンは緑色に現れています。スケールバーは40 micronsです。このビデオを視聴することで、心筋前駆細胞という再生可能な細胞源から、異方性を持つ機能的な心筋組織を作製する方法について十分に理解できるはずです。

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

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この原稿は、表面マーカー発現と細胞選別を使用して、定義された人工心臓組織の作成について説明しています。次に、定義された組織をマルチティッシュバイオリアクターで使用して、心臓細胞療法のメカニズムを調査し、機能的でありながら制御されたヒト心臓のモデルシステムを提供できます。...

心臓細胞療法のメカニズムを研究するために定義されたヒューマン・エンジニア心臓組織の構築

このプロトコルは、生体材料を使用せずに心臓組織の3Dバイオプリントを記述する。 3Dバイオプリントされた心臓パッチは、構成要素スフェロイドの機械的統合を示し、心臓組織の再生および心臓病の3Dモデルとして非常に有望である。...

3D Bioprintingを用いたスフェロイドの機械的統合を示す心臓組織の創出

我々 は、二次電池の種類がさらに血管柄付き組織とオルガノイドを生成するには、このを用いた構造の間質性スペースに播種できるを用いた血管床をエンジニア...

マイクロ流体工学バイオプリンティング血管組織や Organoids

このプロトコルでは、満足のいく構造的整合性と同期打撃動作立体足場無料心臓組織を作成する純金型ベースの方法について説明します。...

スキャフォールド フリー三次元心筋組織構築純金型ベース方式

ここで心臓の生理学をエミュレートする電気的・機械的刺激を用いたセル人口をトレーニングするためのプロトコルを提案する.この電気刺激は扱われた細胞の cardiomyogenic...

細胞の Cardiomyogenic の可能性を高めるに同時電気的・機械的刺激

本プロトコルは、ヒト人工多能性幹細胞由来の心血管細胞を含むメッシュ状の人工心臓組織を生成し、心臓病の細胞移植療法の調査を可能にする。...

生体内心筋修復用ヒトiPS細胞由来のメッシュ状の設計心臓組織の調製

ここでは、分化前のヒト人工多能性幹細胞由来心筋細胞、心臓線維芽細胞、および内皮細胞からなる3D自己組織化心臓ミクロ組織アレイを生成するための使いやすい方法論について説明する。心臓ミクロ組織を生成するためにこのユーザーフレンドリーで低細胞を必要とする技術は、疾患モデリングおよび医薬品開発の初期段階に実装することができる。...

ヒトiPSC由来心筋細胞、心臓線維芽細胞、内皮細胞を用いた3次元心臓ミクロ組織アレイの作製

このプロトコルの目的は、生体整血、コラーゲンベースのヒドロゲル、心臓組織工学、薬物スクリーニング、および疾患モデリングにおける応用のために、心臓線維芽細胞(CF)と共培養された幹細胞由来心筋細胞で構成される、高度に整列したヒト心臓組織の三次元(3D)微小流体モデルの開発を説明し、実証することである。...

マイクロ流体プラットフォーム内での3D組織化ヒト心臓組織の開発

光を使って心臓の細胞や組織を制御することで、非接触で刺激を受けることができるため、細胞の自然な状態や機能を保つことができるため、基礎研究や治療への応用に有用なアプローチとなっています。...

非遺伝的光刺激によるCa2+ 伝播を研究するための心臓微小生理学的システム

メルトエレクトロスピニングライティング(MEW)、ポリカプロラクトン(PCL)スキャフォールド、フィブリンハイドロゲルをhiPSC由来の心筋細胞および線維芽細胞と組み合わせた3D心筋組織を作製するための再現性の高い方法を紹介します。この手法は、スキャフォールドアーキテクチャを正確に制御し、前臨床薬物試験や心疾患モデリングに適用できます。...

ポリカプロラクトン足場およびhiPSC由来心細胞の溶融エレクトロスピニングライティングを用いたヒト心筋組織作製

学ぶマイクロコンタクトプリンティング法を用いて、胚性幹細胞由来の心臓前駆細胞から整列した機能的心筋組織を作製する方法。細胞形態の精密制御により、心臓再生医療への応用可能性が向上する。

マイクロコンタクトプリントスルーアライン機能心筋組織の生成

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