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Genetic Modification of Cyanobacteria by Conjugation Using the CyanoGate Modular Cloning Toolkit

シアノゲートモジュラークローニングツールキットを用いたコンジュゲーションによるシアノバクテリアの遺伝子改変

Full Text
17,031 Views
08:25 min
October 31, 2019

DOI: 10.3791/60451-v

Grant A. R. Gale*1,2,3, Alejandra A. Schiavon Osorio*1,2, Anton Puzorjov*1,2, Baojun Wang2,3, Alistair J. McCormick1,2

1Institute of Molecular Plant Sciences, School of Biological Sciences,University of Edinburgh, 2Centre for Synthetic and Systems Biology,University of Edinburgh, 3Institute of Quantitative Biology, Biochemistry and Biotechnology, School of Biological Sciences,University of Edinburgh

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for assembling a self-replicating vector using the CyanoGate modular cloning toolkit and introducing it into cyanobacterial hosts through conjugation. It emphasizes the importance of these techniques for simplifying the design and cloning of heterologous DNA in cyanobacteria, which are valuable for synthetic biology applications.

Key Study Components

Research Area

  • Synthetic biology
  • Biotechnology
  • Cyanobacterial genetic engineering

Background

  • Cyanobacteria are significant photosynthetic microbes used in renewable biotechnology.
  • Conjugation is a method for introducing DNA into cyanobacteria that are not naturally transformable.
  • Robust techniques are necessary for DNA cloning in various cyanobacterial species.

Methods Used

  • Assembly of self-replicating vectors using CyanoGate toolkit.
  • Conjugation to introduce DNA into cyanobacteria.
  • Characterization using plate readers and flow cytometry.

Main Results

  • Successful construction and verification of the cpcBA-eYFP vector.
  • Demonstrated successful conjugation in Synechocystis PCC 6803 and Synechococcus elongatus UTEX 2973.
  • Establishing techniques for selecting transgenic cyanobacteria.

Conclusions

  • The study illustrates a reliable method for genetic manipulation of cyanobacteria.
  • It highlights advancements in tools for synthetic biology and renewable applications.

Frequently Asked Questions

What is the significance of these techniques in synthetic biology?
They simplify the introduction of heterologous DNA into cyanobacteria, enhancing their utility in renewable biotechnology.
How do conjugation and transformation differ?
Conjugation is a method for transferring DNA between bacteria, while transformation typically involves direct uptake of DNA by a bacterial cell.
Which cyanobacterial strains were used in this study?
The study used Synechocystis PCC 6803 and Synechococcus elongatus UTEX 2973.
What are the expected outcomes of successful genetic manipulation?
Expected outcomes include the expression of introduced genes and the development of transgenic cyanobacterial strains.
What tools were utilized for the characterization of transformed strains?
Plate readers and flow cytometry were employed for characterization.
Is there any particular care needed during the procedures?
Yes, proper handling of cyanobacterial and E.coli strains is crucial to prevent contamination and ensure successful experiments.

ここでは、i)CyanoGateモジュラークローニングツールキットを用いて自己複製ベクターを組み立てる方法を記述するプロトコルを提示し、ii)結合によりシアノバクテリア宿主にベクターを導入し、iii)を用いてトランスジェニックシアノバクテリア株を特徴付ける。プレートリーダーまたはフローサイトメトリー。

シアノバクテリアは、合成生物学や再生可能なバイオテクノロジーアプリケーションに有用なプラットフォームとしてますます認識されている光合成微生物の重要なフィラムです。したがって、異種DNAを異なるシアノバクテリア種に設計、クローニング、導入を簡素化するための堅牢な技術を開発することが重要です。したがって、この技術は、自然に変換できないシアノバクテリア種にDNAを導入するための結合または三親交配と呼ばれる確立された方法を実証する。

結合は単細胞から多細胞糸状体種へのシアノバクテリア株の広い配列で正常に行われている。初めてこの技術を試みている場合は、シアノバクテリアと大腸菌の両方を注意して扱ってください。たとえば、プロトコルで指定された値を上回る遠心分離は行わないし、渦を巻かないでください。

細菌とシアノバクテリアを混合することは、初めてのユーザーには奇妙に思えるかもしれません.私たちは、活用プロセスを実証することによって、これを明確にするために役立つことを願っています。レベル 1 のアセンブリを構築した後、適切なレベルの T アクセクター ベクターを選択します。

適切な終了リンクを選択して、最終レベル 1 アセンブリの 3 つの素端をレベル T バックボーンにリゲートします。レベル T で 1 つ以上のレベル 1 のアセンブリを組み立てるには、PBI1 と必要なエンド リンク ベクタとの反応ミックスを準備します。サーマルサイクラープログラムを設定し、原稿に従って進めます。

初日には、シネコシスティスPCC 6803またはシネココッカス・エロンガトゥス・ユートックス2973の新鮮な培養を設定することにより、シアノバクテリア培養を成長させます。熱無菌ループで、無菌BG-11寒天プレートから細胞を削り取り、50ミリリットルの新鮮なBG-11培地で満たされた100ミリリットルの円錐形フラスコに入れて接種します。フラスコを照明付きの振盪インキュベーターに入れ、100 RPMで摂氏30度でシネコシスティスPCC 6803細胞培養を成長させます。

シネコクス・エロンゲタスUTEX 2973の場合、細胞培養物を摂氏400度で100RPMで成長させます。1~2日後、細胞培養の1ミリリットルを引き、分光光度計で測定する。OD 750の吸光度は0.5から1.5に達する。

2日目に、1ミリリットル当たり100マイクログラムの濃度でアンピシリンとクロラムフェニコールの濃度で5ミリリットルのLB培地中のベクターPRK24およびPRL528を含むMC1061大腸菌ヘルパー株を接種する。揺れインキュベーターで225 RPMで一晩摂氏37度で成長します。次に、レベルT貨物ベクターを運ぶ大腸菌培養で適切な抗生物質を含むLB培地の5ミリリットルを接種する。

揺れインキュベーターで225 RPMで一晩摂氏37度で培養を成長させます。3日目には、ヘルパーと貨物大腸菌の一晩培養物を室温で10分間10分間遠心分離します。細胞ペレットを乱さずに上清を捨てます。

抗生物質を使わずに新鮮なLB培地を5ミリリットル加えてペレットを洗います。ペレットを上下に軽くピペット化し、遠心分離機を軽くピペットして上清を取り除きます。この洗浄工程を3回繰り返して、一晩培養から残留抗生物質を除去する。

最後の洗浄後、細胞ペレットを初期培養体積のLB培地の半分の体積で再懸濁する。その後、ヘルパー株の450マイクロリットルを2ミリリットルチューブ内の貨物株450マイクロリットルと組み合わせ、室温で放置します。次に、シアノバクテリア培養物を1ミリリットルで1ミリリットル室温で10分間500g遠心してシアノバクテリア培養を調製する。

その後、細胞ペレットを邪魔することなく慎重に上清を捨てます。同じ初期ボリュームの新鮮なBG-11培地を加えてペレットを4回洗浄します。洗浄したシアノバクテリア培養液の900マイクロリットルを、2ミリリットルチューブ内の結合された大腸菌株の900マイクロリットルに加える。

上下に軽くピペットを入れ、文化を混ぜます。シネコシスティスPCC 6803または2時間の間、室温で混合物を30分間インキュベートします。混合物を室温で1,500gで10分間遠心する。

上清の1.6ミリリットルを除去し、残りの上清のペレットを再懸濁します。抗生物質なしでLB BG-11寒天プレートに1つの0.45ミクロン膜フィルターを置きます。滅菌スプレッダーまたは無菌曲げ先端で膜上に大腸菌/シアノバクテリア培養液の200マイクロリットルを慎重に広げます。

パラフィンフィルムでプレートを密封し、プレートを照らされたインキュベーターに24時間置きます。24時間後、炎殺菌鉗子を用いて膜を、適切な抗生物質を含む新鮮なBG-11寒天プレートに慎重に移動し、貨物ベクターを選択します。パラフィンフィルムでプレートを密封し、コロニーが現れるまで以前と同じ条件でインキュベートします。

コロニーは通常、シネコシスティスPCC 6803の7-14日後に、シネココッカス・エロンゲタスUTEX 2973の3〜7日後に現れる。コンジュガントを選択するには、熱無菌接種ロッドを使用して、膜から少なくとも2つの個々のコロニーを選択し、適切な抗生物質を含む新しいBG-11寒天プレートにストリークする。その後、シアノバクテリア培養物のストリークをLB培地5ミリリットルを含む15ミリリットル遠心分離管に接種し、振盪インキュベーターで一晩摂氏37度でインキュベートする。

明確な培養は、大腸菌汚染の存在を確認する。7日間の十分な成長期間に続いて、長期の凍結貯蔵またはその後の実験のための液体培養物を設定するために個々の無分類コロニーを選ぶ。本研究では、ゴールデンゲートアセンブリのワークフローが実証されました。

組立反応の変換後、大腸菌コロニーの標準の青色白色スクリーニングを使用して、成功したアセンブリを同定した。レベル1ベクトル及びエンドリンク1ベクトルにおけるeYFP発現カセットを、次にレベルTアクセプターベクターに組み立てて、ベクトルcpcBA-eYFPを与えた。組み立てられたcpcBA-eYFPベクターを制限消化により検証した。

cpcBA-eYFPまたはpPMQAK1-Tベクターの共役移動に成功すると、シネコシスティスPCC 6803およびシネココッカス・エロンガトゥスUTEX 2973の膜上で最大数百コロニーの成長をもたらした。強いPcpc560プロモーターに対して予想されるように、フローサイトメーターからのプレートリーダーおよびeYFP蛍光1細胞あたりのeYFP蛍光の正規化されたeYFP蛍光の値は陰性対照と比較して高かった。プレートリーダーとフローサイトメーターの両方を用いて、シネコシスス・エロンゲタスUTEX 2973では、シネコシスティスPCC 6803よりも蛍光値が高かった。

あなたが結合している株に応じて最小時間のインキュベートを確認してください。

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生物学 問題152 フローサイトメトリー 蛍光 ゴールデンゲート プレートリーダー シネコシスティスsp.PCC 6803 シネココッカス エロンガトゥスUTEX 2973 ツールキット 一過性発現

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