January 17th, 2025
Bergmeyerの血糖定量はブドウ糖の量を正確そして敏感に測定する臨床テストのために主に使用される分光光度法の酵素技術である。ここでは、この方法を微生物学的サンプルに使用するためのプロトコルを示します。
この研究では、細菌フィルターと酵母フィルターの定量技術を使用して、微生物サンプル中のグルコース濃度を評価します。目的は、微生物学的研究におけるグルコース質量グラムの精度を向上させることです。課題には、複雑な微生物サンプル中の低グルコース濃度の正確な定量化や、混合培養における微生物と環境起源のグルコースの区別などがあります。
この研究は、特定の微生物株とそのグルコース消費率との間に明確な相関関係があることを示しており、環境要因が代謝経路にどのように影響するかを明らかにしています。当社のプロトコールは、特異性と感度を向上させながら処理時間を短縮することにより、グルコース検出を強化します。硫酸を制御された方法で使用することで、干渉を最小限に抑えます。
今後の研究では、産業微生物学アプリケーションのためのグルコース検出法の最適化と、さまざまな環境条件下でのグルコース代謝における特定の遺伝子の役割の調査に焦点を当てます。まず、ガラスビーカーに1.28グラムのリン酸二水素カリウムと0.1304グラムのリン酸二カリウムを量ります。70ミリリットルの脱イオン水を追加し、5.5モルの塩酸または水酸化カリウムを使用してpHを調整します。
次に、溶液を100ミリリットルの容量フラスコに移し、脱イオン水で容量を100ミリリットルに調整します。調製した溶液を4〜8°Cの琥珀色の容器に最大3か月間保管します。次に、0.01ミリリットルの遠心分離チューブで2グラムのo-ジアニシジン二塩酸塩を計量します。
1, 000マイクロリットルのピペットを使用して、1ミリリットルの脱イオン水を加えて化合物を溶解し、溶液をゆっくりと混合します。遠心分離管をアルミホイルで包んで光から遮り、摂氏20度で保管します。次に、100ミリリットルの容量フラスコで採取した10ミリリットルのリン酸緩衝液にo-ジアニシジン二塩酸塩溶液を加え、リン酸緩衝液で最終容量を100ミリリットルに調整します。
溶液を琥珀色のフラスコに移した後、摂氏4〜8度で3〜4か月間保管します。次に、100ミリリットルのメスフラスコと30ミリリットルの脱イオン水を入れて氷浴に入れます。10分後、51ミリリットルの98%硫酸をフラスコの壁にゆっくりと注ぎ、静かに振ってください。
その後、脱イオン水で最終容量を100ミリリットルに調整し、溶液をガラスの琥珀色のフラスコに移して保管します。酵素調製のために、2ミリリットルの滅菌マイクロチューブに0.01グラムのグルコースオキシダーゼを秤量します。pH 50の50ミリモル酢酸ナトリウム緩衝液1ミリリットルをマイクロチューブに加え、穏やかに混合します。
次に、新しい2ミリリットルのマイクロチューブに0.0031グラムのペルオキシダーゼ酵素を秤量し、pH 5.5に設定された1ミリリットルのリン酸緩衝液に溶解します。酵素を含む両方のマイクロチューブをアルミホイルで覆い、摂氏20度で保管します。次に、脱イオン水を使用して1リットルあたり1グラムのD-グルコース標準溶液を調製します。
まず、グルコース標準試料とアッセイに必要なすべての溶液を調製します。新鮮な2ミリリットルのチューブに適切な量のブドウ糖を追加します。乾式温浴を摂氏37度にセットし、安定させます。
各マイクロチューブに適切な量のバッファーを追加し、続いて3.3マイクロリットルのグルコースオキシダーゼと1.2マイクロリットルのペルオキシダーゼを追加します。チューブを摂氏37度でインキュベートし、タイマーを20分に設定します。インキュベーション直後に、各マイクロチューブに750マイクロリットルの50%硫酸を加え、氷浴に2分間入れて冷まします。
冷却した1, 500マイクロリットルの混合物をプラスチックキュベットに移し、529ナノメートルで吸光度を測定します。次に、70%アルコール溶液で作業エリアを清掃し、バーナーに点火して無菌状態を確保します。液体培地で細菌または酵母を入手します。
滅菌チップを使用して、100マイクロリットルの培養物を1.5ミリリットルのマイクロチューブに移します。サンプルを7, 500Gで摂氏4度で7分間遠心分離します。遠心分離後、溶液中にグルコースが含まれている上清を慎重に取り除きます。
0.5マイクロリットルの上清を必要なすべての成分と混合して、反応混合物を調製します。マイクロチューブを摂氏37度で20分間インキュベートし、直ちに750マイクロリットルの50%硫酸を加えます。混合物を氷浴で2分間冷まします。
最後に、529ナノメートルで吸光度を測定します。分光光度分析では、最大吸光度ピークが529ナノメートルであることが示されました。Debaryomyces hanseniiによるグルコース消費量の分析は、グルコースオキシダーゼとDNSメソッドの間で一貫した結果を示しましたが、6時間、8時間、および12時間で有意差が現れました。
グルコースオキシダーゼ硫酸法の適用により、1リットルあたり最大100gの高グルコース濃度の分析が容易になり、希釈後も信頼性の高い結果が得られました。
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この研究では、Bergmeyerのグルコース定量化法を用いて微生物サンプルのグルコース濃度を定量化するプロトコルを提示します。この技術は、微生物学研究におけるグルコース測定の精度を向上させることを目的としています。
Accurate quantification of glucose in microbiological samples is critical for understanding cellular metabolism and metabolic pathway modulation in early discovery and process development. The Bergmeyer enzymatic method offers enhanced specificity and sensitivity, enabling reliable metabolic profiling and supporting data-driven decisions in microbial strain selection and optimization. This capability strengthens predictive confidence at key inflection points in bioprocess and translational research pipelines.
The Bergmeyer glucose quantification method integrates into the discovery-to-preclinical continuum, supporting both early metabolic hypothesis testing and downstream process optimization.