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Spectrally 해결된 두 광자 현미경을 사용하여 G 단백질 결합 수용체 상호 작용의 생체내 부량에서
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JoVE Journal Biology
In vivo Quantification of G Protein Coupled Receptor Interactions using Spectrally Resolved Two-photon Microscopy

Spectrally 해결된 두 광자 현미경을 사용하여 G 단백질 결합 수용체 상호 작용의 생체내 부량에서

Full Text
13,730 Views
14:26 min
January 19, 2011

DOI: 10.3791/2247-v

Michael Stoneman1, Deo Singh1, Valerica Raicu1,2

1Department of Physics,University of Wisconsin - Milwaukee, 2Department of Biological Sciences,University of Wisconsin - Milwaukee

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study employs a spectrally resolved two-photon microscopy imaging system to obtain pixel-level maps of Förster Resonance Energy Transfer (FRET) efficiencies in cells expressing membrane receptors. The FRET efficiency maps allow for the estimation of stoichiometric information about the oligomer complexes under investigation.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Biophysics
  • Cell Biology

Background

  • Förster Resonance Energy Transfer (FRET) is a powerful technique for studying protein interactions.
  • Understanding the stoichiometry of protein complexes is crucial for elucidating their functions.
  • Two-photon microscopy allows for deep tissue imaging with minimal photodamage.
  • Genetically engineered cells can express specific proteins tagged with fluorescent probes for FRET analysis.

Purpose of Study

  • To determine stoichiometric and structural information about protein complexes.
  • To investigate the formation of homo-oligomeric complexes in living cells.
  • To enhance the understanding of receptor interactions at the cellular level.

Methods Used

  • Genetic engineering of yeast cells to express proteins of interest with fluorescent probes.
  • Excitation of donor probes using a pulsed near-infrared laser.
  • Separation of fluorescent emissions into spectral components using a transmission grating.
  • Projection of spectral data onto an electron multiplying CCD array for analysis.

Main Results

  • Pixel-level FRET efficiency maps were successfully generated.
  • Stoichiometric information about the oligomeric complexes was estimated from the FRET maps.
  • The methodology demonstrated effective imaging of living biological cells.
  • Insights into the interactions of membrane receptors were gained.

Conclusions

  • The study provides a novel approach for analyzing protein interactions in live cells.
  • FRET imaging can reveal important details about receptor complex formation.
  • This technique has potential applications in understanding various biological processes.

Frequently Asked Questions

What is FRET?
FRET stands for Förster Resonance Energy Transfer, a technique used to study interactions between proteins.
How does two-photon microscopy work?
It uses pulsed laser light to excite fluorescent probes in living cells, allowing for deep tissue imaging.
What are homo-oligomeric complexes?
These are complexes formed by identical protein subunits interacting with each other.
Why is stoichiometric information important?
It helps in understanding the composition and function of protein complexes in biological systems.
Can this method be applied to other types of cells?
Yes, the technique can be adapted for various cell types, including mammalian cells.

spectrally 해결 두 광자 현미경 이미징 시스템을 채용함으로써, 포스터 공명 에너지 전달 (무서워) 효율성의 픽셀 수준의지도 게이 oligomeric 단지를 형성하기 위해 가상 막 수용체를 표현하는 세포를 얻을 수있다. 효율성의지도 걱정부터, 우리는 연구에서 올리고머 복합에 대한 stoichiometric 정보를 추정 할 수 있습니다.

다음 실험의 전반적인 목표는 단백질에 대한 stoia 메트릭 및 구조 정보를 결정하는 것입니다. 살아있는 생물학적 세포를 발현하는 모든 인대 복합체인 효모 세포는 공여자 또는 수용체 형광 프로브에 부착된 관심 단백질을 발현하도록 유전적으로 조작되었습니다. 공여체 프로브는 레이저에 의해 직접 여기될 수 있습니다.

수용체는 근처의 흥분된 기증자로부터의 에너지 전달을 통해서만 여기될 수 있지만, 세포는 펄스 근적외선 레이저의 빛에 노출됩니다. 프로브에서 수정되는 형광은 투과 격자에 의해 스펙트럼 구성 요소로 분리되고 전자 증식 CCD 어레이의 표면에 투사됩니다. 따라서 개별의 완전한 형광 스펙트럼, 모든 인대는 샘플의 각 위치에 대해 얻어집니다.

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