0 조회수 • 4:18 분 • July 8th, 2025
마우스 뇌에서 편도체에는 내측 전두엽 피질 또는 mPFC 뉴런과 시냅스 연결을 형성하는 뉴런이 포함되어 있습니다.
mPFC 뉴런이 형광 단백질에 융합된 빛에 민감한 채널 로돕신을 발현하는 편도체 뇌 절편을 예로 들어 보겠습니다.
슬라이스를 기록 챔버에 놓고 형광 현미경으로 시각화하여 mPFC 뉴런을 찾습니다.
명시야 보기로 전환하고 내부 용액이 포함된 패치 피펫을 도입합니다.
양압을 가하여 피펫을 편도체 뉴런 쪽으로 전진시킵니다.
신경 접촉 시 보조개가 형성됩니다.
흡입을 가하여 단단히 밀봉합니다.
계속흡입하여 막을 파열시켜 세포 내부와 접촉합니다.
슬라이스를 비추어 mPFC 신경 채널로돕신을 활성화하여 양이온 유입, 활동 전위 생성 및 신경 전달 물질 방출을 유발합니다.
신경 전달 물질은 시냅스 후 편도체 뉴런 수용체에 결합하여 이온 유입 및 전류 생성을 유발합니다.
mPFC-편도체 연결성을 분석하기 위해 시냅스 후 신경 전류를 기록합니다.
섬유와 세포의 광유전학적 활성화를 위한 패치 현미경을 준비하려면 장착된 발광 다이오드(LED)를 광 전달 경로의 중앙에 배치합니다. 파워 미터를 사용하여 후면 초점면과 각 대물렌즈의 출력에서 470나노미터 파장의 LED 광도를 측정합니다. 스프레드시트를 사용하여 광도를 밀리미터 제곱 밀리미터당 밀리와트 단위로 계산하고 각 대물렌즈에 대한 보정 곡선을 만듭니다.
그런 다음 인터페이스 챔버에서 급성 편도체 슬라이스를 회수하여 현미경에 장착된 슬라이스 챔버에 넣습니다. 인터페이스 챔버에서 위쪽을 향하는 슬라이스 표면이 기록 챔버에서도 위쪽을 향하도록 슬라이스를 배치합니다. 분당 1-2밀리리터의 속도로 산소가 함유된 신선한 ACSF로 슬라이스를 관류합니다. 온도는 섭씨 31도 정도여야 합니다. 형광등을 켜고 발현된 특정 형광 단백질에 적합한 필터 세트를 선택합니다. 5배 목표를 사용하여 개요를 얻으십시오.
다음으로, 실험에 필요한 경우 현미경 광 경로의 조리개를 열거나 제한합니다. 패치 기록을 얻으려면 패치 피펫에 내부 용액을 채우고 전극 홀더에 장착합니다. 패치 피펫에 양압을 가하고 천천히 수조 용액에 내립니다. 그런 다음 시각적 제어 하에 마이크로 매니퓰레이터를 사용하여 패치 피펫을 슬라이스 안으로 내립니다. 패치 피펫을 사용하여 측면과 상단에서 관심 있는 뉴런에 접근합니다.
피펫이 세포 표면에 도달하면 세포 표면에 보이는 보조개로 표시된 대로 양압을 해제합니다. 음압을 가하여 기가씰을 얻으십시오. 추가 흡입을 가하여 멤브레인 패치를 파열시키고 전체 세포 기록을 얻습니다. 다음으로, 세포의 전기적 반응을 기록하면서 470나노미터 파장의 빛으로 채널로돕신을 활성화하여 연결된 LED로 표지된 섬유를 자극합니다.
시냅스 자극의 경우 데이터 수집 소프트웨어의 디지털 출력을 사용하여 LED를 트리거합니다. LED 자극 강도를 수동으로 조정합니다. 다음에 기록된 세포에 대해 필요에 따라 또는 특정 테스트 물질이 있는 상태에서 개방되거나 제한된 구멍으로 자극을 반복합니다.
이 논문은 광유전학과 패치 클램프 기술을 이용하여 마우스 뇌의 편도체와 내측 전전두엽 피질(mPFC) 뉴런 간의 연결성을 조사하는 방법을 설명합니다. 이 절차에는 뇌 절편 준비, 뉴런 시각화 및 시냅스 활성 기록 과정이 포함됩니다.
이 방법은 정의된 신경세포 집단 간의 시냅스 연결성을 정밀하게 조사할 수 있게 하여, 신경정신약물 발견 과정에서의 타겟 검증을 지원합니다. 광유전학적 자극과 전기생리학적 판독을 결합함으로써, 경로 특이적 신경전달에 대한 정량적이고 인과적으로 연결된 데이터를 제공합니다. 이러한 접근 방식은 화합물 스크리닝이나 리드 최적화에 투자하기 전, 기능적 연결성을 확인하여 발견 초기 단계에서 기전적 가설의 리스크를 줄여줍니다.
이 방법은 회로 수준의 타겟 검증이 분석법 개발 및 리드 화합물 도출보다 앞서 진행되는 초기 발견 워크플로에 적합하며, 특히 정서 조절과 관련된 CNS 적응증에 유용합니다.
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마지막 업데이트: 29 8월 2026