September 17th, 2011
마우스 뇌 피질에서 translationally 활성화, 손상 synaptoneurosomes (SNS)를 준비하는 방법을 설명합니다. 이 메서드는 활성화된 SNS의 빠른 준비를 위해 허용하는 불연속 Percoll - 자당 밀도 기울기를 사용합니다.
이 절차의 전반적인 목표는 불연속적인 peral sucrose density gradient를 사용하여 마우스 뇌 피질에서 신경 영역으로 번역 활성 synap을 준비하는 것입니다. 이것은 먼저 마우스 피질을 수집하고 균질화한 다음 균질화를 원심분리함으로써 수행됩니다. 그런 다음 원심분리기 균질산염 또는 sup natant를 preport per co sucrose gradients에 적용합니다.
마지막 단계는 시냅토솜 분획을 원심분리하여 수집하는 것입니다. 궁극적으로, 웨스턴 블롯 분석과 S 35 메티오닌 혼입 실험은 시냅토솜 분획이 시냅스적으로 풍부하고 번역 활성임을 보여줍니다. 원심분리 및 여과와 같은 기존 방법에 비해 이 기술의 주요 장점은 밀도 구배를 사용하여 첫 번째 기계적 손상을 피할 수 있다는 점이며, 두 번째 호출당 두 번째는 구성 성분의 세포에 대한 독성이 낮다는 것입니다.
일반적으로 이 방법을 처음 접하는 개인은 타이밍이 중요한 역할을 하기 때문에 이 프로토콜에 어려움을 겪을 것입니다. 피질이 적출되면 절차를 신속하게 완료해야 합니다. 절차를 시작하려면 함께 제공된 원고에 설명된 대로 각각의 SIP를 GM 버퍼에 추가하고 잘 혼합하여 3, 10, 15 및 23% gradient 레이어를 준비합니다.
23, 15, 10 및 3% isosmotic perol 용액 각각에서 2ml를 피펫팅하여 캡이 있는 Beckman 원심분리 튜브에 gradient layers를 주입합니다.P 1000 피펫을 사용하면 층이 혼합되지 않고 층 간의 계면을 명확하게 식별할 수 있어야 합니다. 사용하기 전에 섭씨 4도의 기울기를 최소 20분 동안 보관하십시오.
이 절차를 시작하기 전에 함께 제공된 원고에 설명된 대로 다른 필요한 솔루션을 준비하십시오. P 13에서 P 21 사이의 나이에 마우스를 안락사시키고 목 뒤와 머리 뒤쪽에 70 % 에탄올을 분사하여 해부 준비합니다. 그런 다음 날카로운 가위를 사용하여 두개골 기저부의 척수를 자릅니다.
다음으로 두개골 상단의 피부를 제거합니다. 두정골(parietal bone)과 두정골(inter parietal bone) 사이 또는 대뇌와 피질 부위(corebrum regions) 사이 두개골을 옆으로 자릅니다. 그런 다음 시상 봉합사를 따라 기저부에서 코까지 두개골을 자릅니다.
이 단계에서 각 반구를 옆으로 당겨 부드러운 두정골을 조심스럽게 제거합니다. 그런 다음 주걱을 소뇌 위의 뇌에 삽입하여 피질을 퍼냅니다. 얼음처럼 차가운 GM 완충액에 넣고 더 많은 피질을 수집하기 위해 절차를 다시 반복하십시오.
이제 얼음처럼 차가운 GM 완충액으로 피질을 헹굽니다. 그런 다음 2개의 피질을 5밀리리터의 차가운 GM 완충액을 함유한 유리 다운 균질화기로 옮깁니다. 유봉 A, 느슨한 유봉을 5-10 번 스트로크 한 다음 유봉 B 인 유봉 B를 5-10 번 스트로크하여 피질을 부드럽게 균질화합니다.
스트로크 수는 개별 균질기에 따라 다릅니다. 균질산염을 15 밀리리터 원추형 튜브로 옮깁니다. 1000회에 그것을 원심분리기하십시오.
섭씨 4도에서 10분 동안 Allegra six KR 원심분리기를 사용하여 세포 파편과 핵을 펠릿화합니다. 각 피질당 또는 자당 구배에 대해 2밀리리터의 supinate를 각 전체 피질에 대해 하나의 구배로 겹쳐 놓고 튜브를 덮습니다. 그런 다음 Beckman J 2 21 원심 분리기에서 섭씨 4도에서 5 분 동안 중력의 32, 500 배의 고정 각도 로터에서 원심 분리합니다.
완료되면 적절한 어댑터를 사용하여 그래디언트를 통해 강한 SN 밴드 피펫을 제거하고 SN 밴드 위의 용액을 버려야 합니다. 15-23% 인터페이스에서 SN 대역의 유리 파스타 피펫을 사용하면 하나의 그래디언트가 일반적으로 약 0.9-1.1밀리리터의 sns를 제공합니다. 그런 다음 원뿔형 튜브에 옮겨 얼음 위에 보관하십시오.
그런 다음 10배의 자극 완충액의 10분의 1을 추가하여 SNS의 염분 농도를 조정합니다. 선택적으로 염화칼슘의 1000배를 추가하여 최종 농도 12 아노 어금니를 제공합니다. 다음으로, 1 밀리몰 TTX 스톡을 추가하여 1 마이크로몰의 최종 농도를 제공하여 비특이적 여기를 억제합니다.
다음 단계는 단백질 번역 연구와 같은 해당 다운스트림 애플리케이션에서 SNS를 사용하는 것입니다. 다른 응용 분야의 경우, SN 용해물은 Pierce SDS 페이지 시료 전처리 키트를 사용하여 세척하거나 농축할 수 있습니다. SNS의 단백질 농도는 마이크로 BCA 단백질 분석 키트를 사용하여 측정할 수 있습니다.
다음은 6개의 밴드 또는 분수의 예입니다. 마우스 피질이 균질화되고 불연속적인 perol sucrose gradients에서 분리되었을 때, 농축된 SNS는 23 내지 15% 계면에서 밴드 5에 포함되었고, 이 밴드는 제거되어 전자 현미경으로 검사되었습니다. 온전한 시냅스 소포의 예와 시냅스 이전 및 시냅스 후 요소의 보존이 여기 서쪽 얼룩에 나와 있습니다.
시냅스 마커의 증가와 자당 구배의 불연속적인 SN 밴드의 불순물 감소는 글루타메이트 첨가에 따른 S 35 메티오닌 통합의 증가가 de novo 단백질 합성에 기인함을 확인하는 것으로 나타났습니다.40 micromolar anesa mycin 단백질 합성 억제제가 추가되었습니다. 이 그림은 글루타메이트가 존재하거나 존재하지 않는 anso mycin의 존재 하에서 S 35 메티오닌 통합의 현저한 감소를 보여줍니다.
따라서 불연속적인 peral sucrose gradient는 단백질 번역을 연구하는 데 사용할 수 있는 매우 활동적이고 상대적으로 순수한 SNS를 빠르게 생성합니다. 이 그림은 코어당 불연속 자당 구배의 밴드 5가 가장 높은 수준의 de novo 단백질 합성을 포함한다는 것을 보여줍니다. 공극 크기가 감소하는 일련의 필터를 통해 균질화된 피질을 통과시킨 다음 비교를 위해 코어당 불연속적인 슈크로스 구배를 통해 원심분리하여 제조된 SNS는 불연속 페롤 슈크로스 구배법으로 제조된 SNS보다 더 많은 파쇄막과 더 적은 전체 SNS를 포함하며, 불연속 페롤 슈크로스 구배법을 사용하여 제조된 SNS는 여과법을 사용하여 제조된 SNS보다 더 많은 de novo 단백질 합성 활성을 포함하는 것으로 나타났습니다.
어린 마우스에서 제조된 SNS는 나이가 많은 마우스보다 더 큰 번역 활성을 보이는 것으로 나타났습니다. 이 비디오를 시청한 후에는 마우스 피질을 균질화하고, 스윙 버킷 로터에서 균질액을 원심분리하고, 고정각 로터에서 호출당 자당 구배를 통해 상층액을 원심분리한 다음, 생성된 시냅스 신경 영역 밴드를 수집하여 번역 활성 시냅스 신경 영역을 분리하는 방법에 대한 좋은 아이디어를 얻었을 것입니다.
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이 기사는 불연속 Percoll-자당 밀도 구배를 사용하여 마우스 뇌 피질에서 번역적 활성 시냅토뉴로솜(SNs)을 준비하는 방법을 설명합니다. 이 기술은 기계적 손상과 독성을 최소화하면서 빠르게 준비할 수 있습니다.
Synaptoneurosome isolation enables mechanistic de-risking of synaptic targets by preserving native pre- and postsynaptic protein complexes. This method supports target validation in neuroscience drug discovery by providing translationally active preparations that reflect physiological neurotransmitter handling. The Percoll-sucrose gradient approach reduces artifacts from mechanical damage and cytotoxicity, improving data reliability for lead identification campaigns.
This method fits within the discovery continuum from target hypothesis testing to lead identification, where synaptic functional assays inform compound prioritization before preclinical efficacy studies.