December 12th, 2011
Luminex Corporation의 xMAP의 microsphere 기술을 사용, 우리는 다양한 실험실 동물 종의 serosurveillance에 대한 다중 Fluorometric 면역 분석법 (MFIA)를 개발했습니다. MFIA는 항원, 조직 제어 또는 면역 글로불린이 covalently 색으로 구분되는 폴리스티렌 마이크로에 연결되어 정지 microarray입니다. MFIA 테스트 방법뿐만 아니라 다양한 문제 해결 항목은 해결됩니다.
다음 실험의 전반적인 목표는 실험실 동물에서 외래 감염원에 대한 항체를 검출하는 것입니다. 이는 항원으로 코팅된 미세구로 테스트 혈청을 배양함으로써 달성됩니다. 다음으로, 혈청은 항원 항체 면역 복합체를 검출하는 비오틴화된 태그가 지정된 종 특이적 항면역글로불린으로 배양됩니다.
그런 다음 streptavidin labeled FICO eryn Fluor force solution을 추가하여 다중 형광, 면역분석 순 점수, 형광 샘플 값을 기반으로 실험실 설치류의 일반 제제에 대한 양성 또는 음성 항체 상태를 보여주는 비오틴화된 면역글로불린 결과를 검출합니다. Eliza와 같은 기존 방법에 비해 이 기술을 사용하는 주요 이점은 MFIA가 다중 분석이라는 것입니다. 이를 통해 연구자는 단일 테스트에서 최대 100개의 서로 다른 분석을 스크리닝할 수 있습니다.
글쎄요, 이 기술은 기존 방법에서 사용되는 혈청 영역과 폐기 일회용품의 양을 줄이는 동시에 단일 테스트에서 생성되는 정보의 양을 증가시킵니다. 글쎄요, 여러 제제에 대해 많은 수의 Sera 샘플을 테스트하고 노동력과 테스트 시간을 줄이고 싶었을 때 이 방법을 사용하자는 아이디어가 처음 떠올랐습니다. 이 절차를 시연할 사람은 우리 연구실의 선임 기술자인 Donna Cohen이 할 것입니다.먼저 멀티플렉스, 형광, 면역분석 또는 MFIA 절차에 필요한 두 개의 완충액을 준비하십시오.
첫 번째는 Charles River에서 구할 수 있는 1차 희석제로, 분석 세척 버퍼에 대한 비특이적 상호 작용을 줄이기 위한 독점 차단제를 포함하고 있습니다. 미립자를 제거하기 위해 1% BSA pH 7.4의 PBS 용액을 준비합니다. 분석 세척 버퍼를 사용하여 0.2 미크론 병 상단 장치를 통해 버퍼를 멸균 라벨링된 용기로 필터링합니다.
2 x 농도의 비오틴화 항물질 종, IGG 또는 BAG 및 연쇄상구균 AVID 및 FICO erything 또는 SPE를 준비하여 테스트 혈청 배양 단계에서 형성된 항원 항체 복합체를 라벨링하는 데 사용되며, 이는 다중 및 단일 채널 마이크로피펫 및 팁으로 조립된 다음 재료 및 일회용품의 샘플과 단백질 희석을 위한 96웰 저단백질 결합 마이크로타이터 플레이트를 준비합니다. 혈액 샘플을 채취하고 혈청 와류를 분리한 후, 혈청을 1차 희석제로 샘플을 희석하기 전에 96웰 마이크로타이터 플레이트에 넣어 습윤 전 적절하고 균일한 웰 배출을 보장합니다. 분석 세척 버퍼가 있는 96웰 테스트 플레이트의 모든 웰은 분석 전반에 걸쳐 용액을 천천히 흡인합니다.
흡인은 비드 응집을 방지하고 비드가 필터 멤브레인으로 압축되는 것을 방지하는 데 5-10초가 소요되며, 둘 다 분석 종료 시 판독 시간을 늦출 수 있습니다. 종이 타월로 테스트 플레이트의 아래쪽을 닦아 액체 배수가 멈췄는지 확인합니다. 배양 중 우물에서 심지가 빠지는 것을 방지하기 위해 모든 세척 단계 후에 테스트 플레이트를 닦아내는 것이 중요합니다.
비드를 준비하려면 스톡 결합 비드 현탁액을 볼텍싱하여 시작합니다. 그런 다음 욕조에서 잠시 초음파 처리하십시오. 판독 시간이 길어질 수 있는 응집된 비드 클러스터를 방지하기 위해 비드를 적절하게 재현하는 것이 중요합니다.
다음으로, 20 x 스톡 현탁액을 1차 희석액의 2x 작동 비드 용액에 분배합니다. 그런 다음 50마이크로리터의 2 x 비드 현탁액을 사전 습식 테스트 플레이트의 각 분석 웰에 분배합니다. 각 2개의 x 테스트 및 제어 혈청 50마이크로리터를 사전 정의된 플레이트 맵을 기반으로 테스트 플레이트에 피펫팅합니다.
뚜껑을 접시에 고정합니다. 알루미늄 호일로 덮고 실온의 궤도 셰이커에서 테스트 플레이트를 60분 동안 배양하여 분석의 성공을 방해할 수 있는 용액의 증발을 방지합니다. 모든 배양 단계에서 테스트 플레이트를 플레이트 뚜껑으로 덮은 상태로 유지하십시오.
또한, 속도의 흔들림은 400 이상 700 RPM 미만이어야 하며, 그래야 비드가 현탁액 상태로 유지되어 혈청 항체가 결합된 항원의 모든 표면에 접근할 수 있습니다. BAG과 SPE로 비드의 순차적 배양에서 플레이트를 세척한 후 샘플을 다시 세척합니다. 그런 다음 125마이크로리터의 분석을 추가하여 비드를 다시 현탁시키고 세척하고 버퍼링한 다음 2분 동안 흔들어 플레이트를 읽습니다.
비드를 매달아 소생시킨 후 10분 이내에 분석 리더기에 넣으면 비드가 한 번에 하나씩 검출기를 통과하여 두 개의 레이저에 노출됩니다. 하나의 레이저는 비드 색상 세트를 식별하는 내부 염료를 여기시키고 다른 레이저는 FICO erything 리포터 염료를 여기시킵니다. 미리 결정된 수의 비드에 대한 FICO erything 형광의 강도는 선택된 비드 패널이 테스트 웰의 비드 프로파일과 일치하는지 확인하기 위해 FM FI가 첫 번째 웰을 판독함에 따라 보고됩니다.
프로토콜 디스플레이에서 지정된 비드 영역을 벗어나는 비드가 있는 경우 잘못된 프로필 선택이 이루어진 것입니다. 적절하게 재현탁된 비드는 어세이 리더 소프트웨어에 표시된 대로 지정된 영역을 채웁니다. 비드가 응집되면 느린 속도로 해당 영역을 채웁니다.
리더에서 테스트 플레이트를 제거하고 웰을 수동으로 다시 매달아 비드를 분리할 수 있습니다. 리더에서 테스트 플레이트를 제거하고 다중 채널 피펫을 사용하여 각 웰을 3-4회 트라이 레이트합니다. 그런 다음 시험판을 판독기에 반환하고 결과를 계속 검사합니다.
부적절한 비드 수 또는 IgG anti IgG 비드 점수 하락과 같은 오류를 보고하고 이러한 샘플에 대해 분석을 반복합니다. 데이터를 Excel로 내보내고 순 MFI를 계산한 후 고범위 면역 혈청을 제외한 테스트 플레이 분석 대조군이 있는지 여부를 결정합니다. 실패한 통제는 용납할 수 없으며 분석을 반복해야 합니다.
이 표는 일반적인 분석 플레이트의 테스트 혈청 및 분석 대조군에 대한 데이터를 나타냅니다. 모든 IgG 컨트롤을 통과했습니까? 이 플레이에 대한 테스트 결과는 주황색 웰에서 볼 수 있듯이 수많은 조직 반응성 및 IgG 대조군 샘플이 실패했음을 나타냅니다.
A1C 1 및 F1은 TC 점수가 괄호 안에 표시되는 TC 조직 반응성 부전을 나타내고, Wells B 1 및 E 1은 두 가지 유형의 IgG 내부 제어 실패, 불충분한 테스트 항체 또는 테스트 시약, 각각 BAG 또는 SPE를 나타냅니다. 테스트 플레이트 결과는 시스템 적합성 제어 및 혈청 제어가 여기에 표시된 허용 기준을 충족하는 경우에만 해석됩니다. 종 특이적 안티 테스트 혈청 면역글로불린으로 코팅된 마이크로스피어는 불충분한 샘플이 너무 높게 추가되거나, 샘플 희석이 증가하거나, 잘못된 종 또는 면역 결핍 숙주의 테스트 혈청으로 인해 점수가 떨어지는 것을 나타낼 수 있습니다.
테스트 플레이 분석 제어 결과가 만족스러우면 개별 분석 점수는 다음과 같이 분류됩니다. 이 절차에 따라 Eliza, IFA 및/또는 웨스턴 블롯과 같은 추가 방법을 사용하여 초기의 예상치 못하거나 긍정적인 결과를 확인해야 합니다. 동물 관리 결정을 내리기 전에 이러한 결과를 확인하는 것이 중요합니다.
이는 동일한 시료 또는 동일한 군체의 추가 시료에 대해 다른 방법론을 사용하여 수행할 수 있습니다. 이 비디오를 시청한 후에는 멀티플렉스 플루오로, 미터법 면역 분석을 수행하는 방법과 시설에서 얻은 결과를 해석하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다. 이를 통해 노동력을 줄이면서 각 테스트 샘플 웰에서 더 많은 정보를 수집할 수 있습니다.
본 연구는 실험동물의 혈청감시를 위해 Luminex Corporation의 xMAP 기술을 사용한 다중형 형광 면역측정법(MFIA)의 개발을 제시합니다. MFIA는 여러 감염 원인에 대한 항체를 동시에 검출할 수 있어 효율성을 높이고 검사 자원 사용을 줄입니다.
Multiplexed Fluorometric ImmunoAssay (MFIA) addresses the need for high-throughput serosurveillance in preclinical research by enabling simultaneous detection of antibodies against multiple infectious agents. This capability reduces sample consumption, reagent use, and assay time while increasing data density per test well. For biopharma R&D, MFIA supports early-stage target validation and mechanistic de-risking by providing reliable, quantitative immune status data from limited preclinical sample volumes.
MFIA fits within the discovery continuum from Early Discovery to Lead Identification and Preclinical work, serving as a gatekeeping step for model suitability before compound screening or efficacy testing.