Name: Colocalizational 분석에 의한 수용체 후 국제화 인신 매매에 약물 유발의 이동을 추적 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-07-03T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 48 s
Description: 배우세요 약물 처리된 배양 세포에서 수용체 운반을 정량적 공동국소화 분석으로 평가하는 방법을. 다중 채널 공초점 현미경을 활용하여 수용체와 세포내 구획의 공간적 공동국소화를 측정합니다.

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이 작품은 CIHR (MOP394808)과 CMCEWO에 캐나다 연구 의자에서 보조금에 의해 지원되었다 NSERC에서 대학원 장학금받는 사람이었다.

참고 :이 프로토콜은 다양한 단층 도금 세포 / 조직 문화 모델, 약물 치료 요법, 및 라벨 대상으로 광범위하게 호환됩니다. 따라서 실제 사용에서, 많은 특정 매개 변수는 실험 설계에 따라 달라질 수 있습니다. 여기에, 이러한 사용자 정의 매개 변수에 대한 참조는 일반적인 있습니다. 대표적인 결과를 얻기 위해 사용되는 예 조건은, 이탤릭체에 포함되어 있습니다. 1. 솔루션 <ol><li> 0.1 M 트리스 버퍼 고장 성 (300 mM)을 식염수와 0.05 % 폴리 솔 베이트 20을 혼합하여 세척 버퍼를 준비; 실온에서 pH가 7.4. </li><li> 버퍼를 차단 준비합니다. 0.05 M 트리스 버퍼 고장 성까지 (300 mM)을 식염수는 0.05 % 폴리 소르 베이트 20, 3 % 소 혈청 알부민 (BSA) 0.1 % 차가운 물고기 피부 젤라틴을 추가하고 실온에서 7.4로 pH를 조정합니다. </li><li> 0.05 M 트리스 - 완충 고장 성 (300 mM)을 식염수로 0.05 % 폴리 소르 베이트 20, 1 % BSA, 0.1 % 냉 물고기 껍질 젤라틴을 첨가하여 항체 희석액을 준비하고 4 O ℃에서 7.4로 pH를 조정 참고 : 트리스 버퍼의 pH는 온도에 따라 달라집니다. 즉, 온도 변화는 용액의 pH를 변경되고있다. 일관성을 위해,이 버퍼는 항상이 사용될 때의 온도에서, pH가 조정되어야한다. </li></ol> 2. 세포 배양 주 : 적절한 세포 배양 프로토콜이 사용될 세포 유형 (들)에 따라 달라질 것이다. 이러한 절차는 별도로 최적화되어야한다. 자세한 세포 배양 방법은 (16)을 포함하여, 쉽게 사용할 수 있습니다. 유사한 절차는 현저한 차이 대표적인 결과를 수득 하였다 : <ol><li> 성인 동물 문화 등의 루트 신경 뉴런은 12 설명 된대로. 문화에 세포를 성인 신경 세포 성장 매체를 사용합니다. 오히려 글루타민산보다, 예비 도금하여 아교 세포 밀도를 줄일 수 있습니다. 이 approximat에 성장 적어도 30 ~ 60 판마다 신경과 동반 아교 세포와 12 라운드 커버 글라스에 성장 혼합 신경 세포 아교 문화 결과엘리 40 % 포화 상태. 또한 신경교 과도 성장시키고있는 경우 일차 배양 신경 세포에서 복제되지 않으며, 신경교 공 배양하여 플레이트 밀려된다는 것을 주목해야한다. 신경에 영향을 미치는 것을 방지하기 위해, 신경교 번호 물리적 환원 화학 / 약학 적 방법에 바람직하다. 주 :이 프로토콜의 목적을 위해, 우리가 관심있는 세포가 성장하고있는 것으로 가정들이 실험적 원하는 상태 및 단층 도금. 우리는 24 웰 플레이트에서 12 라운드 커버 글라스에 도금하는 것이 가장 편리 할 것을 찾을 수 있습니다. 설명 모든 볼륨 및 절차는 24 웰 플레이트 잘 하나에 하나의 coverslip에 적합합니다. </li></ol> 배양 된 세포 3. 약물 치료 참고 : 여러 순차적 또는 중복은, 약물 치료가 가능하다. 특정 실험에 따라 달라집니다 사용하는 노출의 약물, 용량 / 농도 및 지속 시간. <ol><li> 원래의 성장 배지를 제거 16 </SUP&gt;를 선택한 농도 (들)에 관심있는 약물 (들)을 포함하는 배지로 교체합니다. 이 경우, 모르핀의 10 μm의이 식염수에 용해 또는 대조군으로 생리 식염수를 사용하여 사용합니다. 참고 : 각각의 독립적 인 복제 (일반적으로 하나의 24 웰 플레이트 문화) 같은 공통 제어 조건을 포함하는 것이 중요합니다. 이 간 재판 변동을 보정 복제에서 데이터의 정상화를 허용합니다. </li><li> 48 시간 16 원래의 성장 조건에서 세포를 품어. </li><li> 이후 약물 치료의 경우, 반복 3.1 단계 및 Deltorphin 1 μm의 3.2, SNC80 1 ㎛, 또는 차량을 60 분 12 품어. 물에 deltorphin II를 용해하고 물에 1 mm로 희석하여 40 μm의 HCl 및 초음파 처리, 10mm의에서 SNC80를 용해. 주 :이 프로토콜들이 선택 성장 배지에서 원하는 농도 (들)에 용해 될 수 있다는 약물 (들)을 가용화 한 가정한다. 에 대한 적절한 절차이러한 가용화 문제의 약물에 따라 달라집니다 개별적으로 최적화해야합니다. </li><li> 세척 당 세척 버퍼의 1 ~ ㎖로, 부드럽게 세 번 세포를 씻으십시오. (세척 버퍼이 경우) 원하는대로 부드럽게, 신선한 용액을 잘 보충, 우물에서 액체를 흡입 한 후 신속하게, 부드럽게 각 세척을 수행합니다. </li></ol> 4. 고정 및 면역 세포 화학 참고 : 특정 표시 대상이 실험에 의해 달라질 수 있습니다. 논의 된 바와 같이 우리의 사용에서, 우리는, 델타 오피오이드 수용체 (DOR) 및 Rab5, 랩 (11), 및 램프 1 레이블. 특정 항체는 특정 실험에 따라 달라집니다 사용. 최적의 라벨 조건은 특정 항체를 사용 (들)에 따라 달라집니다. 이 주제의 많은 풀러 논의는 다음과 같습니다. <ol><li> 37 ºC에서 10 분 동안 ~ 0.1 M 인산염 완충 생리 식염수 300 μL 4 % 파라 포름 알데히드를 침지하여 세포를 고정합니다. 참고 :이 중요하다 4 % 파라포름 알데히드 갓 인해 이전에 냉동 파라 포름 알데히드를 사용함으로써 발생되는 형광도에 제조 될 수있다. </li><li> 3.3에 기술 된 바와 같이, 세척 당 세척 완충액 중 ~ 1 ㎖로, 부드럽게 3 번 세포를 씻어. </li><li> 실온에서 2 시간 동안 버퍼를 차단 μL (300)에있는 세포를 품어. </li><li> 4 ºC에서 48 시간 동안 항체 희석액 300 μL에서 일차 항체와 세포를 품어. 우리의 사용에서, 차 DOR에 대한 항체 (토끼 반 DOR)과 중 하나 Rab5 (마우스 항 - Rab5), 랩 11 (마우스 항 - Rab11), 및 램프 1 (염소 항 - 램프 1). </li><li> 3.3에 기술 된 바와 같이, 세척 당 세척 완충액 중 ~ 1 ㎖로, 가볍게 세 번 세포를 씻어. </li><li> 상이한 형광 물질에 접합 된 이차 항체와 세포를 부화 RT에서 1 시간 동안 항체 희석액 300 μL의 (아래 설명 참조). 이, 이후의 모든 단계에서 빛으로부터 세포를 보호합니다. 대표적인 결과를 얻으려면, 녹색 발광 형광 접합 된 항 - 토끼와 eith을 사용어 적색 발광 형광 접합 된 항 - 마우스 또는 적색 발광 형광 접합 된 항 염소. </li><li> 3.3에 기술 된 바와 같이, 세척 당 세척 완충액 중 ~ 1 ㎖로, 부드럽게 3 번 세포를 씻어. </li><li> ~에 접시를 들고, 잘 각각 45 °를 세척 버퍼 ~ 1ml를 떠나 24 웰 플레이트에서 12 라운드 된 커버를 제거하고 미세 집게를 사용 고타 떨어져 커버 슬립을 올립니다. 커버 슬립은 용이하게 집게를 사용하여 제거 할 수있는 곳에서, 웰 벽에 닿 올 것이다. </li><li> 현미경, 커버 슬립, 세포 측 다운 마운트 장착 매체를 방지 페이딩 슬라이드. </li></ol> 5. 현미경 설정 <ol><li> 고배율 대물 렌즈 (100X)를 사용하여, 표면 형광 제를 사용하여 묘화 될 수있는 대표적인 셀을 찾은. </li><li> 예를 들어, 사용되는 각 형광 물질의 검출, 488 nm 내지 59 (각 분류 채널의 8 비트 압축 TIFF 화상을 기록하는 촬상 설정 구성4 ㎚), (중 라인 또는 프레임에 의해), 최종 이미지에 대한 평균 4 ~ 6 스캔 이미지에 각 채널을 순차적으로. 최적의 이미지 해상도는 현미경 별 수 있지만 X 1024 (1024)는 일반적으로 좋은 결과를 얻을 수 있습니다. </li><li> 공 초점 이미징 경로로 전환 세포의 중심을 Z-면에 초점을 맞 춥니 다. </li><li> 핀홀 (전형적 에어리 1 부), 레이저 전력, 광전자 증 배관 전압 (게인)를 최적화하고, 각 채널에 대한 오프셋. 이러한 설정을 기록 / 저장합니다. 같은 복제에 특정 대상 쌍에 대해 표시된 모든 세포 이미징에 대해 같은 현미경 설정을 사용합니다. 참고 :이 프로세스는 일반적으로이 세포 분석을 위해 몇 군데되지 않도록 충분한 광표백 발생합니다. </li></ol> 6. 이미징 <ol><li> 고배율 대물 렌즈 (예를 들어, 100X)를 사용하여, 표면 형광 제를 사용하여 묘화 될 수있는 세포를 찾아. </li><li> 공 초점 이미징 경로로 전환 세포의 중심을 Z-면에 초점을 맞 춥니 다. 나는F 가능한 소프트웨어를 사용 크게 / 작물의 관심 셀로의 스캔 영역을 제한한다. </li><li> 설정을 사용하여 레이블이있는 각 채널에 대한 이미지를 캡처 이전에 설립했다. 반복 충분한 샘플을 보장하기 위해 이미지에 복제 당 조건 당 15 이상의 셀을 6.3에 6.1 단계를 반복합니다. </li></ol> 7. colocalization을 분석 <ol><li> 이미지의 쌍을 엽니 다 (예를 들어, &#39;녹색&#39;과 &#39;빨간색&#39;) ImageJ에있는 셀의. &gt; 컬러&gt; RGB 이미지를 생성하는 명령 ... 채널 병합 이미지를 사용합니다. </li><li> 관심의 세포 주위에 선택을 그립니다. 선택한 셀에 대상의 colocalization을 정량화 (https://www.cpib.ac.uk/tools-resources/software/psc-colocalization-plugin/에서 사용할 수 11) &quot;PSC colocalization을을&quot;플러그인 ImageJ에 사용합니다. </li><li> 원하는 colocalization을 측정 (일반적으로 피어슨의 R 17)를 기록한다. 반복 각 군데 셀에 대한 7.1-7.3 단계를 반복합니다. </li></ol&gt; 8. 데이터 정규화 <ol><li> 각각의 공통 제어 조건의 기록 colocalization을 값들의 평균을 계산한다 각 표시 상태의 복제. 참고 : 예를 들어, 뉴런의 colocalization을 값의 평균 &quot;48 시간 차량 60 분 차량&quot;3 라벨 조건 (수용체와 3 구획의 각) 각 3 독립적 인 복제 각각의 약물 상태. </li><li> (-1) 각 각 라벨 상태에서 복제에 대 한 오프셋 산출하는 기준 수단을 곱하십시오. 각각 그 복제의 각 colocalization을 값으로 각각의 라벨 상태에서 복제에 대 한 오프셋 (offset) 추가. 주의 : 이것은 공통 제어 조건에 대한 평균 측정 colocalization을 각 표시 상태의 각 복제에 0이되도록 데이터를 정규화한다. </li><li> 각 표시 상태의 모든 복제에서 데이터를 풀. 참고 : colocalization을의 변화는 지금 복제를 통해 분석 할 수 있습니다. 통계 항문이 Analysis 실험 설계에 따라 달라집니다하지만 일반적으로 분석 수준의 분산을 포함 할 것이다 (ANOVA)은 (예를 들어, Tukey에) 적절한 사후 테스트 하였다. 통계 자료를 들어, 18, ​​예를 참조하십시오. </li></ol>

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우리는 성인 후근 신경절 신경 세포 (차 감각 뉴런)의 차 문화의 분석을 위해이 프로토콜을 최적화했다. 또한 광범위 단층 도금 배양 된 세포에 대해 거의 또는 수정없이 사용할 수있다. colocalizational 분석 그러나 약물 치료 및 조직 고정 / 혼합물의 구성 요소가 적절하지 않을 것입니다, 또한 조직의 조각 및 기타 준비 (11)에서 가능하다. 흥미로운 것은, 여기에 제시된 ICC 방법은 또한, 조직 슬라이스의 이중 면역 표지를 수행 할 적절한 정착 및 티슈 제조에 사용될 수에 관계없이 후속 분석 (예를 들어, 19). 이 프로토콜은 서로 다른 라벨 대상으로 광범위하게 호환됩니다. 도금 세포의 각 coverslip에 두 번 표시됩니다. 전형적으로, 이것은 관심 수용체 관심 구획 중 하나의 마커에 대한 것이다. 그곳에일반적으로 다수의 다른 구획 수용체 coloc...

수용체 특히, G 단백질 결합 수용체 (GPCR에)는, 정기적으로 및 세포 표면 (1)로부터, 세포 내에서 팔려. 이 복잡하게 조율하고 엄격하게 제어 과정은 세포의 가능한 수용체 보완을 지시하고 수용체 시간 활동, 탈감작 및 resensitization 2 조절 - 4. 중요한 것은, 이들 방법은 약물 유발 수용체 활성 또는 비활성을 포함한 셀룰러 환경에 응답한다. 즉, 수용체에 리간드의 행동함으로써 세포 응답을 변경, 그 수용체의 세포 내 인신 매매를 변경할 수 있습니다. 이러한 방식으로, 외부 리간드에도 고전 메신저 투 이펙터 캐스케이드 5,6- 넘어 더 효과 세포 기능에 아직 발휘. 유도 수용체 인신 매매에 이러한 변화를 검토하는 것은 어렵다. 사용 가능한 모든 기술은 한계를 포함한다. 비오틴 보호 분석법 모니하는데 사용되어왔다토르 표면 수용체 집단. 이들 수용체는 바이오틴 화되어 면역 침전의 timecourse은 시간이 지남에 따라 바이오틴 수용체의 감소를 정량화하기 위해 수행된다. 이러한 기술은 본질적으로 수용체 (7)의 초기 레이블, 인구의 점진적인 열화를 모니터링하고,이 공정의 시간 코스를 구성하는데 매우 유용하다. 불행하게도,이 분석은 내재화, 재활용, 또는 새로운 수용체 등의 수용체, 원래 풀 저하 이외의 프로세스를 모니터링 할 수 없다. 또한, 50kDa 범위 수용체 150kDa 범위의 항체의 첨가는 수용체의 매매 8,9 변경할 수 있으며,이 기술은 낮은 발현 수준의 수용체로 사용하기 어려울 수있다. 다른 절차는 세포 내 인신 매매 구획 (예를 들면, 엔도 좀 등)을 확인하고 관심있는 수용체와 그들의 colocalization을 평가하기 위해 다양한 방법을 사용합니다. 이것은 우리를 포함표현 이종 시스템의 전자 수용체 및 구획 마커 (예를 들면, 랩 - 가족 GTP 아제)의 키메라 구조를 형광 단백질은 태그가. 이로 인해 고정 및 투과성으로 관련된 문제를 제거하는, 살아있는 세포 이미징의 사용을 가능하게한다. 더 생리 학적으로 대표 세포 유형과 행동과 호환성을 인신 매매에 태그와 발현 정도 효과 : 강력한 있지만, 이러한 전략은 이종 일반적으로 시스템의 동일한 제한을 앓고. 더 널리, 염료가 쉽게 세포 내 구획 레이블을하는 데 사용됩니다 (예를 들어, 리소좀, 표면 상) 10. 염료는, 그러나, 특이성 (리소좀에 대한 염료의 경우 모든 산성 세포 소기관을)이 부족하고 다른 구획을 통해 인신 매매를 평가하지 않습니다. 또, 이들 기술은 시스템 및 실험 조건 위에 상당한 제어를 허용 이하, 여기에 제시된 colocalization을 분석 방법 이점있다. 방법 승여기에 현재 전자는 colocalization을하여 수용체 인신 매매의 추적을 정제. 적당한 표식 라벨을 면역 세포 화학 (ICC)를 사용하면, 여러 별개의 세포 내 구획을 식별 할 수있다. 이는 또한 이종 시스템 대신에 생리 학적으로 관련 일차 세포 배양의 사용을 허용한다. 이러한 ICC 프로토콜 라벨 이전 관심 세포를 정착시키는 것을 포함한다; 이 약물 치료 (들) 다음과 같은 특정 평가시기에 표시를 허용합니다. 이것은 그 평가시기에 글로벌 수용체 구획 협회의 &#39;스냅 샷&#39;을 생산하고 있습니다. 여러 시점들로, 인신 매매 변경 timecourse도 구성 할 수있다. 간단히, 세포가 약물 처리, 수용체와 관심의 세포 내 구획 표지이며, 공 초점 이미징 및 현미경은 수학적 수용체와 실 (11)의 colocalization을 정량화 분석된다. 우리의 사용에서, 우리는 류마티스 관절염 수용체의 colocalization을을 조사B5, Rab11 및 막 단백질 1 (램프 1)를 리소좀은 관련. 이 마커는 각각 초기 엔도 좀, 재활용 엔도 좀과 리소좀을 식별합니다. 이 colocalization을 조치 국제화, 재활용, 분해 (12)의 무엇보다 중요한 프로세스에 대한 프록시 역할을합니다. 모든 기술에서와 같이, 몇 가지 제한을 고려해야한다. 인해 모든 개별 뉴런 분석 이미지 필요성이 기법 시점들과 관련된 조건의 수에 따라 상당히 노동 집약적이 될 수있다. 모든 immunolabeling는 고정과 투과성으로 (13)에 의해 발생하는 세포의 미세 구조, 단백질의 현지화 및 에피토프 접근성에 미치는 영향에 맞설해야합니다. 원래 기본 감각 뉴런의 차 문화와 함께 사용하기에 최적화 있지만,이 방법은 다른 단층 도금 문화 모델과 광범위하게 호환됩니다. 수학적 정량 지표 성과의 사용colocalization을의 전자는 특히, 훨씬 더 많은 방법 론적으로, 종종 시각적으로 검사 멀티 채널 오버레이 (14)와 같은 모호한, 주관적 조치에 의존 수용체 인신 매매의 변화를 평가하는 데 사용 이전 기술보다 엄격한입니다. 이 기술은 생체 개입 (이전에 차 문화 세대)과의 폭 넓은 호환성을 위해 특히 유용, 체외 개입 (문화 성장 중), 각종 라벨 (15)을 목표로하고있다. 이와 같이, 많은 다른 연구 질문하도록 구성 될 수있다.

<table><tbody><tr><td>Trizma Base</td><td>: 시그마 Aldrich</td><td>T1503-500G</td><td></td></tr><tr><td>염화나트륨</td><td>: 시그마 Aldrich</td><td>S9888-500G</td><td></td></tr><tr><td>트윈 20</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP337-500</td><td></td></tr><tr><td>염산</td> : 소의 혈청 인 <td>Aldrich</td><td>258148</td><td></td></tr><tr><td>알부민</td><td>시그마 Aldrich</td><td>A7906-100G</td><td></td></tr><tr><td>냉수 어류의 젤라틴 스킨</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G7041-100G</td><td></td></tr><tr><td>Corning Costar 세포 배양 플레이트: 24-well</td><td>Fisher Scientific</td><td>720084</td><td></td></tr><tr><td>12 서클 현미경 커버 유리</td><td>Fisher Scientific</td><td>1254580</td><td></td></tr><tr><td>Aqua/Poly-Mount</td><td>Polysciences</td><td>18606-20</td><td></td></tr><tr><td>인산나트륨 일염기성</td><td>시그마 Aldrich</td><td>S9638-500G</td><td></td></tr><tr><td>나트륨 인산염 이염기성</td><td>시그마 Aldrich</td><td>S9763-500G</td><td></td></tr><tr><td>파라포름알데히드</td><td>Polysciences</td><td>00380-1</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 집게 - 표준/Dumoxel</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-30</td><td></td></tr><tr><td>토끼 항-DOR 항체</td><td>MyBioSource</td><td>MBS316175</td><td>1:1,500에 사용</td></tr> 마우스 <tr><td>항-Rab5 항체</td><td>Sigma Aldrich</td><td>R7904</td><td>1:750에 사용</td></tr><tr><td>마우스 anti-Rab11 항체</td><td>Millipore</td><td>05-853</td><td>1:500</td></tr><tr><td>염소 anti-LAMP1 항체</td><td>Santa Cruz</td><td>SC8098</td><td>1:750</td></tr><tr><td>당나귀 안티 토끼 Alexa 488 접합 항체</td><td>Life Technologies</td><td>A-21206</td><td>1:200 to 1:2,000</td></tr><tr><td>염소 안티 마우스 Alexa 594 복합 항체</td><td>Life Technologies</td><td>A-11005</td><td>1:200 to 1:2,000 사용</td></tr><tr><td>당나귀 안티 염소 Alexa 594 접합 항체</td><td>Life Technologies</td><td>A-11058</td><td>1:200에서 1:2,000에 사용</td></tr></tbody></table>

colocalizational 분석에 의한 수용체 후 국제화 인신 매매에 약물 유발의 이동을 추적

Tracking Drug-induced Changes in Receptor Post-internalization Trafficking by Colocalizational Analysis

수용체의 세포 내 이동은 복잡하고 고도로 통제된 과정의 집합체입니다. 수용체 이동은 리간드에 대한 신호 전달 및 전반적인 세포 반응성을 조절하며, 그 자체로 리간드 유도 신호전달을 포함한 세포 내 및 세포 외 조건의 영향을 받습니다. 단층 도금 배양 세포와 함께 사용하도록 최적화되었지만 자유 부유 조직 절편으로 확장할 수 있는 이 프로토콜은 면역 라벨링 및 공동 국소화 분석을 사용하여 외인성 약물 치료를 포함한 만성/장기 및 급성 중재 후 세포 내 수용체 이동의 변화를 추적합니다. 약물 처리 후, 세포는 수용체(receptor)와 관심 세포 내 구획(intracellular compartment)에 대한 마커를 위해 이중 면역 표지됩니다. 그런 다음 순차 컨포칼 현미경을 사용하여 개별 세포의 2채널 현미경 사진을 캡처하고, 이는 컴퓨터화된 공동 국소화 분석을 거쳐 정량적 공동 국소화 점수를 산출합니다. 이러한 점수는 통계 분석 전에 독립적인 반복실험을 풀링할 수 있도록 정규화됩니다. 대표적인 현미경 사진도 처리하여 예시적인 그림을 생성할 수 있습니다. 여기에서는 유도된 수용체 이동을 정량적으로 평가하기 위한 강력하고 유연한 기술에 대해 설명합니다.

이 기술을 사용하면, 장기간 / 만성 및 급성 약물 치료 모두 다음 수용체 내재화 후 거래의 변화를 정량화하는 것이 가능하다. 약물 치료, 정착, 및 표지 한 후, 고해상도 2 채널 현미경은 관심의 각 셀의 포획된다. 대표적인 이미지는 예시적인 도면 (도 1)를 생성하기 위해 거짓 색 colocalization을 함께 결합 될 수있다. 후속 colocalizational 분석 한 바와 같이, 목표 대상 colocalization을 (예를 들어, 수용체 - 구획 마커)의 정량적 점수를 얻었다. 이 데이터는 그 다음,이 경우, 변화에 비교하기 위해 사용될 수있다, 약물 치료 (S) (도 2)에 의해 유도 된 수용체 매매. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/52824/52824fig1.jpg" /><br ...

수용체는 리간드 매매 시그널링 및 세포 반응성을 조절하고, 그 자체의 리간드 - 유도 된 세포 신호 전달을 포함한 조건에 응답한다. 여기, 우리는 양적 immunolabeling 및 colocalizational 분석을 사용하여 약물 유발 수용체 인신 매매를 평가하기위한 강력하고 유연한 기술을 설명합니다.

Colocalizational 분석에 의한 수용체 후 국제화 인신 매매에 약물 유발의 이동을 추적

The intracellular trafficking of receptors is a collection of complex and highly controlled processes. Receptor trafficking modulates signaling and ...

다음 실험의 전반적인 목표는 표적 쌍의 공간적 공국소화(colocalization)를 정량적으로 평가하는 것이며, 본 실험에서는 약물로 유도된 수용체 트래픽킹을 조사합니다. 이는 배양된 살아있는 세포에 약물을 처리하여 수용체 트래픽킹의 변화를 유도함으로써 이루어집니다. 두 번째 단계로, 표적 수용체와 세포 내 트래픽킹 구획에 대한 이중 면역 라벨링을 수행한 후, 다채널 공초점 현미경을 통해 표적 쌍의 공간적 위치를 확인합니다.정량적 공국소화 분석은 표적 수용체와 구획이 동일한 위치에서 발견되는 경향을 측정하는 데 사용됩니다. 분석 결과는 수용체와 세포 내 수송 구획의 공국소화를 바탕으로, 약물 처리 후 수용체 수송의 변화를 보여줍니다. 오버레이 공국소화와 같은 기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 공국소화의 정량적 측정값을 제공한다는 것이며, 이를 통해 훨씬 더 강력한 분석과 복잡한 실험 설계가 가능해집니다.이 방법은 수용체 트래피킹(trafficking)에 대한 통찰을 제공할 수 있을 뿐만 아니라, 배양 세포 내 거의 모든 두 단백질의 공간적 공국소화(colocalization) 변화 연구에도 적용될 수 있습니다. 이 절차를 시작하려면, 기존의 배양액을 제거하고 선택한 농도의 해당 약물이 포함된 배양액으로 교체하십시오. 다음으로, 선택한 처리 시간 동안 기존 배양 조건에서 세포를 배양하십시오.배양 후, 세척 버퍼 1 mL를 사용하여 세포를 3회 부드럽게 세척합니다. 37 °C에서 0.1 M PBS에 희석된 4% paraformaldehyde 300 µL로 세포를 10분 동안 고정합니다. 그 다음, 세척 버퍼 1 mL를 사용하여 세포를 다시 3회 세척합니다.이어서, 세포를 300 µL의 블로킹 버퍼(blocking buffer)에 넣고 상온에서 2시간 동안 배양합니다. 그 후, 300 µL의 항체 희석액에 희석한 1차 항체를 처리하여 4 °C에서 48시간 동안 배양합니다. 그다음 세척 버퍼(washing buffer) 1 mL를 사용하여 세포를 3회 부드럽게 세척합니다.다음으로, 형광 물질이 결합된 2차 항체를 300 µL의 항체 희석액에 넣어 세포와 함께 실온에서 1시간 동안 배양하며, 이때 세포가 빛에 노출되지 않도록 차단합니다. 1시간 후, 1 mL의 세척 버퍼를 사용하여 세포를 3회 부드럽게 세척합니다. 24웰 플레이트에서 커버슬립을 제거하려면 플레이트를 45도 각도로 기울여 잡습니다.미세 핀셋의 끝을 커버슬립이 웰 바닥과 맞닿는 상단 가장자리에 놓습니다. 그런 다음 세척 버퍼 내에서 커버슬립을 웰 바닥 반대 방향으로 조심스럽게 기울입니다. 커버슬립이 웰 벽면에 기대어 멈추면 핀셋으로 쉽게 제거할 수 있습니다.그 다음, 100배 고배율 대물렌즈를 사용하여 세포가 아래를 향하도록 항퇴색 마운팅 용액을 이용해 커버슬립을 현미경 슬라이드에 마운팅합니다. 먼저, 에피 형광(epi fluorescence)을 사용하여 이미징할 대표 세포를 찾습니다. 다음으로, 이미지 캡처 설정을 구성합니다. 각 채널을 순차적으로 이미징하고 최종 이미지에 대해 4~6회의 스캔을 평균화하기 위해, 각 표지 채널의 8비트 비압축 tiff 이미지를 기록합니다.그 다음 공초점 이미징 경로로 전환하고 세포 중심을 통과하는 Z 평면에 초점을 맞춥니다. 각 채널에 대해 핀홀, 레이저 출력, 광전증배관(photo multiplier tube) 전압 및 오프셋을 최적화합니다. 이 설정값들을 기록하고, 주어진 표적 쌍으로 라벨링된 모든 세포를 이미징할 때 동일한 설정을 사용하십시오.동일한 반복 실험군에서 고배율 대물렌즈로 촬영할 로케이터 세포를 찾습니다. 에피 형광(epi fluorescence)을 사용하여 공초점 이미징 경로로 전환하고, 가능하다면 세포 중심을 지나는 Z 평면에 초점을 맞춥니다. 소프트웨어의 줌 크롭(zoom crop) 기능을 사용하여 스캔 영역을 관심 세포로 제한합니다. 그 후.이전에 설정한 세팅을 사용하여 각 라벨링된 채널의 이미지를 캡처하고, 충분한 샘플 수집을 위해 조건당 반복당 15개 이상의 세포를 이미지화하는 절차를 반복하십시오. 이 과정에서 Image J를 사용하여 세포의 이미지 한 쌍을 엽니다. image color merge channels 명령을 사용하여 RGB 이미지를 생성하십시오.그런 다음 관심 있는 세포의 외곽선을 그립니다. ImageJ 플러그인인 SC colocalization을 사용하여 선택한 세포 내 표적들의 공국소화(colocalization) 정도를 정량화합니다. 원하는 공국소화 측정값을 기록하고, 각 이미지의 세포에 대해 이 절차를 반복합니다.다음으로, 각 표지 조건의 각 반복 실험 내 공통 대조군 조건에서 기록된 공국소화 값의 평균을 계산합니다. 이 평균값에 -1을 곱하여 각 표지 조건의 각 반복 실험에 대한 오프셋을 산출합니다. 그런 다음, 각 표지 조건의 각 반복 실험에 있는 모든 공국소화 값에 해당 오프셋을 더합니다.이렇게 하면 각 표지 조건의 각 반복 실험에서 공통 대조군 조건의 평균 공국소화 측정값이 0이 되도록 데이터가 정규화됩니다. 그 후, 각 표지 조건의 모든 반복 실험에서 얻은 모든 데이터를 통해 반복 실험 간의 공국소화 변화를 분석할 수 있습니다. 여기에는 장기 및 급성 약물 처리에 노출된 후근 신경절 감각 뉴런의 일차 배양 세포가 나타나 있습니다. 이후 델타 오피오이드 수용체와 재순환 엔도좀 마커에 대해 서로 다른 1차 및 2차 항체 쌍을 사용하여 면역 표지를 수행하였으며, 2채널 순차 공초점 현미경으로 이미지를 촬영하였습니다.후속적인 정량적 공국소화(colocalization) 및 분석 외에도, 여기에서는 이러한 대표 이미지들을 처리하여 가색 공국소화 맵을 생성하였습니다. delta-opioid 수용체와 초기 엔도좀, 재활용 엔도좀 및 리소좀 마커의 수용체 공국소화 평균 점수를 서로 다른 급성 약물 처리를 받은 그룹 간에 비교하여, 약물로 인해 유도된 수용체 트래픽킹의 변화를 관찰합니다. 이 절차를 수행할 때는 유효한 정량 분석이 가능하도록 고품질의 일관된 현미경 사진을 획득하는 것이 중요합니다.이 영상을 시청한 후에는 정량적 공국소화 분석을 수행하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

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Biology

생물학

규제 endocytosis는 막 단백질의 대부분의 세포 표면 발현 수준을 관리합니다. 여기서 우리는 도파민 전송 (DAT), polytopic 멤브레인 단백질의 endocytic 속도를 측정하는 줄이할 수있는, 멤브레인 impermeant biotinylation의 시약을 사용합니다. 방법은 대부분의 플라즈마 막 단백질의 endocytic 속도를 측정하는 직접적인 접근을 용이하게합니다.

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뇌 슬라이스 바이오 티 닐화 :<em&gt; 전의 VIVO</em성인 뉴런에서 지역 고유의 플라즈마 막 단백질 인신 매매를 측정하는&gt; 접근

여기에서 우리는 GABA 해마 신경 세포에있는 수용체 표면의 현지화 및 엔도 사이토 시스를 측정하기 위해-bungarotoxin을 α에 결합 형광 알렉사 염료의 사용을 보여줍니다. α-bungarotoxin, 세포막 단백질의 세포 내 이입 매매 분석을 달성 할 수있는 바인딩 짧은 세포 태그 베어링 구조의 사용을 통해.

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신경 흥분의 엔도-동적 과정 및 exocytosis 흥분 성의 ionotropic 글루타민 산 염 수용 체의 통해 변조 될 수 있습니다. 여기에 설명 된 표면 및 내부 수용 체 인구 풀 측정에 대 한 접근, 하이 콘텐츠 분석 결과가입니다.

AMPA 모니터링을 위한 하이 콘텐츠 분석 결과 수용 체 매매

이 문서는 조미료 수용 체를 연구 하는 방법을 제시 (GluR) 해리 된 기본 해 마 문화에서 인신 매매. 약리학적 접근법과 함께 내인성 또는 과발현 수용체를 라벨링하는 항체 공급 접근법을 사용하여, 이 방법은 조절하여 GluR 표면 발현을 조절하는 분자 메커니즘의 식별을 허용합니다. 내재화 또는 재활용 프로세스.

해리 된 기본 해 마 문화에서 조미료 수용 체 인신 매매를 연구 하는 항 체 먹이 접근

GPCR-β-레페틴 상호작용은 GPCR 약물 발견에서 새로운 분야입니다. 정확하고 정확하며 설정하기 쉬운 방법은 살아있는 시스템에서 이러한 상호 작용을 모니터링하는 데 필요합니다. 우리는 GPCR-β-arrestin 상호작용을 실시간 살아있는 세포에서 모니터링하기 위한 구조적 보완 분석방법을 보여주고, 임의의 GPCR까지 확장될 수 있다.

약물 발견을 가속화하기 위해 실시간 생활 시스템에서 GPCR-β-arrestin1/2 상호 작용 모니터링

GPCRs가 매력적인 약물 성 표적이라는 점을 감안할 때, GPCR 리간드 스크리닝은 따라서 납 화합물의 식별및 탈판화 연구에 필수적입니다. 이러한 노력에 대해, 우리는 PRESTO-탱고, TEV 기반 기자 분석기를 사용하여 약 300 GPCRs에서 과도 β arrestin2 모집의 동시 프로파일링에 사용되는 오픈 소스 자원 플랫폼을 설명합니다.

PRESTO-탱고 분석기를 사용하여 GPCR 전체 규모의 리간드 스크리닝을 위한 β-Arrestin2 모집의 병렬 심문

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