2021년 11월 30일
여기서, 우리는 비용 효율적이고 효율적이며 실행 가능한 1 차성 과립 세포 전구체 (GCP)의 유전 조작을 위한 시험관 내 전기화 프로토콜을 제시합니다. 더욱이, 이 프로토콜은 또한 1 차적인 GCP 세포에 있는 1 차적인 고슴도치 신호 통로의 분자 연구를 위한 간단한 방법을 보여줍니다.
이 프로토콜은 1 차과립 세포 전구체 배양에서 1 차적인 cilium 의존적인 신호 통로의 분자 연구를 위한 간단한 체외 유전 수정 방법을 보여줍니다. 현재 의 경질 전환 방법의 비용, 낮은 생존력 및 효율성 저하로 인해, 우리는 1 차 적인 GCP 배양에서 cilium 의존적인 신호 경로를 조사하기 위한 간단하고 비용 효율적이며 효율적인 전기 기법을 소개합니다. 우선, 코팅된 커버 슬립이 들어있는 24웰 배양판의 각 웰에 0.5 밀리리터의 배양 배지를 추가하고 이산화탄소 인큐베이터에서 섭씨 37도에서 따뜻하게 유지하십시오.
필요한 수의 세포를 멸균 1.5밀리리터 미세원심분리기 튜브로 파이프하고 실온에서 5분 동안 200x G에서 회전합니다. 상체를 버리고 Opti-MEM의 200 마이크로 리터에서 세포 펠릿을 다시 중단하십시오. 이 절차를 두 번 반복하여 잔류 배양 배지가 튜브에 존재하지 않도록 합니다.
전자기화 매개 변수를 나열된 대로 설정합니다. 파이펫 은 전자 기화 반응을 부드럽게 잘 혼합하고 긴 P200 파이펫 팁을 사용하여 혼합물의 100 마이크로 리터의 정확한 부피를 2 밀리미터 갭 큐벳으로 전송합니다. 큐벳이 큐벳 챔버 내부에 들어가면 전기포레이터의 오메가 버튼을 누르고 100 마이크로리터의 정확한 볼륨을 고수하여 임피던스 값을 기록하십시오.
임피던스 값의 범위는 약 30 및 35여야 합니다. 시작 버튼을 눌러 펄스를 시작합니다. 판독 프레임에 표시된 줄에 측정된 전류 값을 기록합니다.
챔버에서 큐벳을 제거합니다. 즉시 100 마이크로리터의 미리 따뜻해지는 배양 배지를 큐벳에 넣고 2~3회 위아래로 피펫팅하여 재장매합니다. 셀 서스펜션을 이전에 준비한 24웰 플레이트로 즉시 전송합니다.
이산화탄소 인큐베이터에서 섭씨 37도에서 세포를 배양합니다. 다음 날 형광 현미경의 밑에 세포를 관찰하십시오. 본 연구에서는, DMSO 및 SAG 처리군의 전기기화 효율이 비교되는 것으로 나타났다.
1차 실슘 마커 Arl13b의 면역염색은 차량과 SAG 처리된 그룹 모두에서 배양의 div-2에서 GCP의 모양 속도를 입증한다. 섬광 속도는 div-2 후 전기포화에서 세포 표면에 1차 실슘을 베어링하는 GCP를 발현하는 Pax6의 백분율을 보여줍니다. 이 수치는 Pax6 발현 GCP 세포의 1차 실륨 액소네메에 대한 부드러운 EGFP 국소화가 SAG 후 24시간 동안 유의하게 증가하여 1차 고슴도치 신호 경로의 심오한 활성화를 나타낸다.
더 높은 전기포기 효율을 달성하기 위해서는 사용되는 플라스미드의 고순도를 보장해야 하며, 잔류물 배양 매체는 플라스미드 전기포기 혼합물에 존재하지 않는다. 이 프로토콜은 뉴런과 인간이 유발한 만능 줄기 세포를 포함하여 트랜스펙트하기 어려운 1 차 배양 및 세포 유형에 대한 체외 유전자 변형 실험에 직접적으로 적용되고 유익해야 합니다.
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본 연구는 일차 소뇌 과립세포 전구체(GCPs)의 유전자 조작을 위해 설계된 재현 가능한 인 비트로(in vitro) 전기천공법 프로토콜을 제시합니다. 본 프로토콜은 일차 섬모 의존적 Hedgehog 신호 전달 경로를 연구하는 데 있어 비용 효율적이고 효율적인 방법에 집중합니다.
일차 과립세포 전구체(GCP)의 효율적인 유전자 조작은 신경 발달 및 질환 경로의 기초가 되는 섬모 의존적 신호 전달 기전을 규명하는 데 필수적입니다. 본 전기천공법 프로토콜은 높은 형질전환 효율과 세포 생존율을 제공하여, 질환 관련 시스템 내 Hedgehog 경로 역학에 대한 강력한 조사를 가능하게 합니다. 이 방법은 신호 전달 경로 조절제의 초기 발견 및 타겟 검증에 있어 예측 신뢰도를 높여줍니다.
본 프로토콜은 초기 발견 및 표적 검증 단계에 통합되어, 일차 신경세포 시스템에서 유전자 조작과 정량적 경로 분석을 연결합니다.