November 30th, 2021
여기서, 우리는 비용 효율적이고 효율적이며 실행 가능한 1 차성 과립 세포 전구체 (GCP)의 유전 조작을 위한 시험관 내 전기화 프로토콜을 제시합니다. 더욱이, 이 프로토콜은 또한 1 차적인 GCP 세포에 있는 1 차적인 고슴도치 신호 통로의 분자 연구를 위한 간단한 방법을 보여줍니다.
이 프로토콜은 1 차과립 세포 전구체 배양에서 1 차적인 cilium 의존적인 신호 통로의 분자 연구를 위한 간단한 체외 유전 수정 방법을 보여줍니다. 현재 의 경질 전환 방법의 비용, 낮은 생존력 및 효율성 저하로 인해, 우리는 1 차 적인 GCP 배양에서 cilium 의존적인 신호 경로를 조사하기 위한 간단하고 비용 효율적이며 효율적인 전기 기법을 소개합니다. 우선, 코팅된 커버 슬립이 들어있는 24웰 배양판의 각 웰에 0.5 밀리리터의 배양 배지를 추가하고 이산화탄소 인큐베이터에서 섭씨 37도에서 따뜻하게 유지하십시오.
필요한 수의 세포를 멸균 1.5밀리리터 미세원심분리기 튜브로 파이프하고 실온에서 5분 동안 200x G에서 회전합니다. 상체를 버리고 Opti-MEM의 200 마이크로 리터에서 세포 펠릿을 다시 중단하십시오. 이 절차를 두 번 반복하여 잔류 배양 배지가 튜브에 존재하지 않도록 합니다.
전자기화 매개 변수를 나열된 대로 설정합니다. 파이펫 은 전자 기화 반응을 부드럽게 잘 혼합하고 긴 P200 파이펫 팁을 사용하여 혼합물의 100 마이크로 리터의 정확한 부피를 2 밀리미터 갭 큐벳으로 전송합니다. 큐벳이 큐벳 챔버 내부에 들어가면 전기포레이터의 오메가 버튼을 누르고 100 마이크로리터의 정확한 볼륨을 고수하여 임피던스 값을 기록하십시오.
임피던스 값의 범위는 약 30 및 35여야 합니다. 시작 버튼을 눌러 펄스를 시작합니다. 판독 프레임에 표시된 줄에 측정된 전류 값을 기록합니다.
챔버에서 큐벳을 제거합니다. 즉시 100 마이크로리터의 미리 따뜻해지는 배양 배지를 큐벳에 넣고 2~3회 위아래로 피펫팅하여 재장매합니다. 셀 서스펜션을 이전에 준비한 24웰 플레이트로 즉시 전송합니다.
이산화탄소 인큐베이터에서 섭씨 37도에서 세포를 배양합니다. 다음 날 형광 현미경의 밑에 세포를 관찰하십시오. 본 연구에서는, DMSO 및 SAG 처리군의 전기기화 효율이 비교되는 것으로 나타났다.
1차 실슘 마커 Arl13b의 면역염색은 차량과 SAG 처리된 그룹 모두에서 배양의 div-2에서 GCP의 모양 속도를 입증한다. 섬광 속도는 div-2 후 전기포화에서 세포 표면에 1차 실슘을 베어링하는 GCP를 발현하는 Pax6의 백분율을 보여줍니다. 이 수치는 Pax6 발현 GCP 세포의 1차 실륨 액소네메에 대한 부드러운 EGFP 국소화가 SAG 후 24시간 동안 유의하게 증가하여 1차 고슴도치 신호 경로의 심오한 활성화를 나타낸다.
더 높은 전기포기 효율을 달성하기 위해서는 사용되는 플라스미드의 고순도를 보장해야 하며, 잔류물 배양 매체는 플라스미드 전기포기 혼합물에 존재하지 않는다. 이 프로토콜은 뉴런과 인간이 유발한 만능 줄기 세포를 포함하여 트랜스펙트하기 어려운 1 차 배양 및 세포 유형에 대한 체외 유전자 변형 실험에 직접적으로 적용되고 유익해야 합니다.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
이 연구는 1차 소뇌 세포 전구체(GCP)의 유전자 조작을 위해 설계된 재현 가능한 체외 전기 투과 프로토콜을 제시합니다. 이는 1차 섬모에 의존하는 Hedgehog 신호 전달 경로를 연구하기 위한 비용 효율적이고 효율적인 방법에 초점을 맞추고 있습니다.
Efficient genetic manipulation of primary granule cell precursors (GCPs) is essential for elucidating cilium-dependent signaling mechanisms that underpin neurodevelopmental and disease pathways. This electroporation protocol delivers high transfection efficiency and cell viability, enabling robust interrogation of Hedgehog pathway dynamics in disease-relevant systems. The method supports predictive confidence in early discovery and target validation for signaling pathway modulators.
This protocol integrates at the early discovery and target validation stages, bridging genetic manipulation with quantitative pathway analysis in primary neuronal systems.