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커뮤니티 표현형을 조사하기 위한 낭포성 섬유증 관련 다미생물 생물막 성장
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JoVE Journal Biology
Growing a Cystic Fibrosis-Relevant Polymicrobial Biofilm to Probe Community Phenotypes

커뮤니티 표현형을 조사하기 위한 낭포성 섬유증 관련 다미생물 생물막 성장

Full Text
1,064 Views
03:53 min
April 19, 2024

DOI: 10.3791/66785-v

Sarah Poirier1, Fabrice Jean-Pierre1

1Département de Biologie,Université de Sherbrooke

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a novel four-species polymicrobial biofilm model relevant to cystic fibrosis (CF) lung environments, aimed at understanding microbial interactions in multi-species settings. The research highlights the mechanisms behind the phenotypic changes in Pseudomonas aeruginosa, a significant pathogen in CF airway infections, when grown alongside other species in a controlled system.

Key Study Components

Research Area

  • Cystic fibrosis microbiome interactions
  • Pathogen behavior in biofilms
  • Antimicrobial susceptibility changes

Background

  • The complexity of microbial communities in CF lungs
  • Importance of studying interspecies interactions
  • Impact on treatment strategies for airway infections

Methods Used

  • In vitro polymicrobial biofilm cultivation
  • Pseudomonas aeruginosa and other species
  • Use of 96-well plates and optical density measurements

Main Results

  • Reduction in viable cell counts of Pseudomonas aeruginosa and Staphylococcus aureus in mixed cultures compared to monocultures
  • Increased growth of Streptococcus sanguinis and Prevotella melaninogenica in polymicrobial conditions
  • Insights into antimicrobial susceptibility across different microbiome interactions

Conclusions

  • The study provides a valuable tool for examining microbial dynamics in CF research.
  • It bridges laboratory findings with clinical observations, enhancing understanding of lung infections.

Frequently Asked Questions

What is the significance of studying polymicrobial biofilms in cystic fibrosis?
Polymicrobial biofilms can reveal how different bacteria interact, influencing infection severity and treatment outcomes in cystic fibrosis.
How does the model mimic the lung environment?
The model creates conditions similar to those found in the CF lung, allowing for realistic microbial growth and interaction studies.
What were the main experimental conditions used?
Bacteria were cultured in a 96-well plate format with artificial sputum medium, simulating anoxic lung conditions.
What are the implications of reduced cell viability in mixed cultures?
Reduced cell viability may suggest competitive interactions that affect pathogen persistence and treatment efficacy in CF.
What technologies were utilized in the study?
The study employed optical density measurements, multi-channel pipetting, and serial dilution plating techniques.
How does this research contribute to clinical applications?
By understanding microbial dynamics, this research can inform better treatment strategies for CF-related infections.
Are the findings relevant to other infectious diseases?
Yes, insights from polymicrobial interactions can be applicable to various infectious diseases affected by complex microbial communities.

이 프로토콜은 박테리아 종간 상호 작용의 영향을 탐구하는 데 사용할 수 있는 낭포성 섬유증(CF) 폐 관련 4종 다미생물 생물막 모델을 설명합니다.

우리는 미생물이 실제 생활 조건을 모방한 조건에서 자랄 때 어떻게 행동하는지 이해하려고 노력하고 있으며, 단일 재배 성장과 비교하여 다종 군집에서 표현형 변화를 주도하는 메커니즘을 결정하는 것을 목표로 합니다. 이 in vitro 시스템의 활용을 통해 우리는 낭포성 섬유증 기도 감염의 맥락에서 악명 높은 병원체인 녹농균의 난치성을 유발하는 분자 경로를 특성화했습니다. 96웰 플레이트 형태와 낭포성 섬유증 폐에서 관찰된 것을 반영하는 성장 조건으로 인해 광범위한 마이크로바이옴 상호 작용을 쉽게 탐색할 수 있습니다.

우리는 완전한 마이크로바이옴 맥락에서 미생물이 항균제에 대한 감수성을 변경하는 메커니즘에 대한 통찰력을 얻었습니다. 당사의 모델은 낭포성 섬유증 연구에서 임상 관찰과 개별 실험실 작업 사이의 다리 역할을 하며, 다양한 마이크로바이옴 상호 작용을 연구하기 위한 귀중한 도구를 제공합니다. 시작하려면 필요한 모든 시약과 배지를 준비합니다.

공동 배양 실험의 경우 박테리아 야간 배양액을 원심분리하고 멸균 PBS로 세포를 세척합니다. 원심분리 후 상층액을 조심스럽게 버리고 각 펠릿을 1X 물에 희석된 인공 가래 배지 또는 ASM 베이스 1밀리리터에 재현탁시킵니다. 1 - 10개의 희석된 샘플의 광학 밀도를 600 나노미터에서 분광 광도계 또는 플레이트 리더에서 측정합니다.

각 박테리아 샘플을 0.01의 600나노미터에서 최종 광학 밀도로 희석하고 5초 동안 소용돌이를 완전히 제거합니다. 100 마이크로리터의 단일 배양 및 공동 배양 현탁액을 멸균 플라스틱 평면 바닥 96웰 플레이트의 3개의 개별 웰에 추가하고 무산소 조건에서 섭씨 37도에서 24시간 동안 플레이트를 배양합니다. 그런 다음 다중 채널 피펫을 사용하여 부착되지 않은 플랑크톤 세포를 제거하고 100마이크로리터의 신선한 ASM 또는 원하는 처리 시약으로 미리 형성된 생물막을 보충합니다.

플랑크톤 세포를 흡인한 후 125마이크로리터의 멸균 PBS로 생물막을 두 번 부드럽게 세척하고 세척 용액을 버립니다. 50마이크로리터의 멸균 PBS를 추가합니다. 그리고 96핀 리플리케이터를 사용하여 플레이트에서 셀을 부드럽게 긁어냈습니다.

재현탁된 생물막 세포를 새로운 멸균 96웰 플레이트의 A열로 옮기고 10X 연속 희석을 수행합니다. 각 희석 샘플의 3-5 마이크로리터를 한천 플레이트에 플레이트합니다. 접종 부위가 건조된 후 플레이트를 적절하게 배양합니다.

단일 배양과 비교하여 혼합 플랑크톤 군집에서 성장할 때 생존 가능한 Pseudomonas aeruginosa 및 Staphylococcus aureus 세포 수의 감소를 포함하여 여러 표현형이 관찰되었습니다. 연쇄상구균 상귀니스(Streptococcus sanguinis)의 다미생물 성장의 증가와 프레보텔라 멜라니노제니카(Prevotella melaninogenica)의 혼합 군집 성장이 관찰되었습니다.

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