Name: Een efficiënte en High Yield methode voor het isoleren van de muis dendritische cel subsets (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-04-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 9 s
Description: Leer een efficiënte methode voor het isoleren van muis dendritische cel subsets met Flt-3 ligand en magnetische bead-separatie. Dit protocol levert hoge opbrengsten en zuiverheid voor immunologisch onderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd ondersteund door NIH / NIAID subsidie ​​AI45889 naar SAP Flowcytometrie studies met behulp van FACS kernfaciliteiten ondersteund door de Einstein Cancer Center (NIH / NCI CA013330) en het Center for AIDS Research (NIH / NIAID AI51519) werden uitgevoerd.

Dierproeven worden gedaan in overeenstemming met de goedgekeurde richtlijnen van de institutionele dierlijke zorg en gebruik commissie (IACUC). Alle procedures die de steriliteit worden uitgevoerd in een bioveiligheid kast. 1. Implantatie van B16.Flt3L Melanoma in Muizen <ol><li> Cultuur de Flt-3 expressie brengende B16 melanoma cellijn T25 weefselkweek flessen in een dichtheid van 0,5 x 10 6 cellen / ml in compleet DMEM medium met 10% CO2 bij 37 ° C. Opgroeien tot de cellen te bereiken ~ 90% confluentie (~ 20 uur). </li><li> Oogst de cellen door trypsine digestie. Zuig celcultuur media en was de hechtende cellen met PBS. Voeg 5 ml 0,05% trypsine en incubeer gedurende 5 minuten bij 37 ° C. Voeg 20 ml koud volledige DMEM medium (4 ° C) bevattende foetaal kalfsserum (FCS) voor de protease digestie blussen. Til de cellen uit door lichtjes op te tikken, gevolgd door voorzichtig en neer te pipetteren. </li><li> Verzamel de cellen door centrifugeren bij 300xg gedurende 10 min bij 4 ° C. Tel de cellen met een hemocytometer of geautomatiseerde cellevensvatbaarheid teller. Resuspendeer tot een dichtheid van 10 8 cellen / ml in PBS. </li><li> Implant muizen (C57BL / 6 of een andere histocompatibel stam) met tumorcellen subcutaan zoals beschreven door Machholz et al. 19 aan de basis van de hals met 100 ul celsuspensie (10 7 cellen). </li><li> Laat de tumor te groeien tot voelbare of zichtbare (2-10 mm in diameter, gewoonlijk 7-12 dagen) voor dieren opgeofferd oogstbare organen. </li></ol> 2. Voorbereiding van de milt enkele celsuspensie van Tumor-dragende muizen <ol><li> Verdoven muizen met een overdosis van isofluraan (pas stroomsnelheid van isofluraan&gt; 5% en verder exposure minstens 2 minuten na ademhaling stopt). Offer de Flt-3 melanoom tumor dragende muizen door cervicale dislocatie volgens de institutionele richtlijnen voor euthanasie. </li><li> disinfect de huid met 70% ethanol en de oogst milt met behulp van aseptische techniek met behulp van een steriele schaar 20. </li><li> Plaats de milt in een steriele petrischaal voor transport naar de bioveiligheid kast. Voer alle stappen vanaf nu onder steriele omstandigheden. </li><li> Transfer milt om een ​​nieuwe petrischaal en wassen met RPMI medium. Snijd de milt in kleine (~ 0,2 cm 2) delen met een scalpel. Incubeer gedurende 30 minuten bij 37 ° C met 10 ml collagenase / DNase oplossing. </li><li> Giet het gedeeltelijk gedigereerde suspensie van miltweefsel op een 70 um cel zeef. Comprimeer het resterende weefsel fragmenten door de mazen van de zeef met een 5 ml spuit zuiger. </li><li> Was het filter met 10 ml vers medium en gooi het filter. Centrifugeer de suspensie bij 300 xg gedurende 10 min bij 4 ° C om de cellen te pelleteren. </li><li> Zuig het supernatant en resuspendeer de celpellet in 2 ml RBC lysis buffer. Incubeer bij kamertemperatuur fof 10 min. Quench RBC lysisbuffer door toevoeging van 10 ml van volledig RPMI medium. </li><li> Pellet de cellen door centrifugatie bij 300 xg gedurende 5 minuten bij 4 ° C. Resuspendeer in geschikte volume celdichtheid van 10 8 cellen / ml bereiken celsortering buffer (bijv MACS) bevattende 20 ug / ml Fc-block antilichaam (2.4G2). </li></ol> 3. Zuivering van plasmacytoïde DCs, CD8a Pos DCs en CD8a Neg DC&#39;s van de milt enkele celsuspensie Opmerking: Isolatie van milt DC subsets van eencellige suspensie is een meerstaps werkwijze als geïllustreerd in figuur 1 Voer alle stappen met voorgekoelde buffer en een ijswaterbad op temperatuur houden 4 - 8 ° C.. Alle reagensvolumes in het volgende deel van het protocol worden berekend voor een eerste ingang van 200 pl milt celsuspensie bij 10 8 cellen / ml). Dit kan worden opgeschaald ofneer basis van uw probleem door het veranderen van het volume van celsuspensie (altijd in een dichtheid van 1 x 10 8 cellen / ml) en andere reagentia proportioneel in de eerste stap (3.1.1 en 3.2.1). Pas reagens volumes in alle latere stappen dienovereenkomstig. Als bijvoorbeeld beginnend met 100 pl milt celsuspensie bij 1 x 10 8 / ml, gebruikt helft vermelde reagensvolumes bij alle stappen. <ol><li> Isolatie van plasmacytoide DCs (PDC) <ol><li> Voeg 300 ul met biotine gemerkt antilichaam cocktail die in de plasmacytoide DC isolatie kit 200 gl celsuspensie milt. </li><li> Meng goed en incubeer in ijs waterbad gedurende 15 min. Tik op de buis om de 3 minuten om de cellen in suspensie te houden, en om antilichamen te maximaliseren bindend. </li><li> Voeg 12 ml celsortering buffer en pellet de cellen door centrifugeren bij 300 x g gedurende 5 min bij 4 ° C. Zuig supernatant om niet-gebonden gebiotinyleerde antilichamen te verwijderen. </li><li> Resuspendeer de celpellet in 500 pl buffer celsortering. Voeg 300 gl anti-biotine antilichaam-geconjugeerde kralen. Herhaal stap 3.1.2 en 3.1.3. </li><li> Verwijder het supernatant en resuspendeer de celpellet in 2 ml buffer celsortering. Voer alle stappen van dit punt bij KT met behulp van pre-gekoelde buffers. </li><li> Plaats een nieuw magnetisch geactiveerde celsortering LS kolom in de magnetische stand. Was en equilibreren kolom met 5 ml buffer celsortering. </li><li> Pipetteer de celsuspensie op de kolom, de toepassing voorzichtig naar het midden van het oppervlak van het kolombed. Verzamel de doorstroming. </li><li> Was de kolom met 10 ml buffer celsortering. Verzamelen deze stroom door combineren met doorstroming uit stap 3.1.7. De pDCs zijn verrijkt in deze kolom doorstroom (FT1). </li><li> Pellet de cellen van FT1 door centrifugatie bij 300 xg gedurende 5 minuten bij 4 ° C, resuspendeer in 2 ml celsortering buffer en laat de cellen door een nieuw LS columndoor herhalen van de stappen 3.1.6 - 3.1.8. Dit gebruik van twee opeenvolgende kolommen levert verbeterde zuiverheid van geïsoleerde cellen. </li><li> Pellet cellen door centrifugatie bij 300 xg gedurende 5 minuten bij 4 ° C en resuspendeer met 2 ml compleet RPMI. Plaats op ijs totdat het nodig is. </li></ol></li><li> Isolatie van CD8a Pos en CD8a Neg DCs Opmerking: De eerste stap in deze procedure depletie van B pDC, T- en NK-cellen. <ol><li> Beginnend met het volledige milt celsuspensie (1 ml 10 8 cellen / ml verkregen in stap 2,8), voeg 100 ul met biotine geconjugeerd antilichaam cocktail die in de CD8a Pos DC isolatiekit. </li><li> Meng goed en incubeer in ijs waterbad gedurende 15 min. Tik de buis voorzichtig elke 3 min binding van biotine-gelabelde antilichamen maximaliseren hun doelcellen. </li><li> Voeg 12 ml celsortering buffer en pellet van de cellen door centrifugatie bij 300 xg gedurende 5 minuten bij 4 ° C. aspireren supernatant om niet-gebonden gebiotinyleerde antilichamen te verwijderen. </li><li> Voeg 150 ul van celsortering buffer en 100 pl anti-biotine korrels die in de CD8a Pos DC isolatiekit. Meng goed en incubeer in ijs waterbad gedurende 15 min. </li><li> Voeg 10 ml celsortering buffer en pellet van de cellen door centrifugatie bij 300 xg gedurende 5 minuten bij 4 ° C. </li><li> Resuspendeer cellen in 1 ml celsortering buffer en gaat over een nieuwe LS kolom volgens de procedure in de stappen 3.1.6 tot 3.1.8. </li><li> Verzamel de ongelabelde stroom door 2 (FT2) en gooi de kolom retentaat. Dit ongelabelde fractie wordt verrijkt CD8a Pos en CD8a Neg DCs. </li><li> Pellet de cellen in FT2 door centrifugatie bij 300 xg gedurende 5 minuten bij 4 ° C. </li><li> Resuspendeer de cellen in 1 ml celsortering buffer en voeg 200 pl anti-CD8a geconjugeerde magnetische korrels die in de CD8a Pos DC isolatiekit. </li><li> Repeet stappen 3.2.2 tot 3.2.6. De doorstroom van de kolom wordt verrijkt CD8a Neg DCs en verarmd voor CD8a Pos DCs. Dit wordt aangeduid stroming door 3 (FT3). </li><li> Elueerde het CD8a Pos DCs vastgehouden in de kolom, verwijder de kolom uit de magneet, voeg 5 ml celsortering buffer en zuiveren de kolommatrix met de plunjer voorzien van de LS kolom. </li><li> Pellet de cellen door centrifugatie bij 300 xg gedurende 5 minuten bij 4 ° C. Zuig supernatant en resuspendeer in 1 ml celsortering buffer. Om de zuiverheid te verhogen, voert de geëlueerde cellen opnieuw door een nieuwe LS column van herhalen van de stappen 3.1.6 tot 3.1.8, met uitzondering gooi de stroom door en verzamel vastgehouden cellen als in 3.2.11. </li><li> De CD8a Neg DCs zuivert van de FT3 suspensie pellet de FT3 door centrifugatie bij 300 xg gedurende 5 minuten bij 4 ° C en resuspendeer in 300 ul buffer celsortering. </li><li> Voeg 100 ul van anti-CD 11 c magmagnetische kralen. Meng goed en incubeer in ijs waterbad gedurende 15 min. </li><li> Voeg 10 ml celsortering buffer en pellet cellen door centrifugeren bij 300 g gedurende 5 min bij 4 ° C. </li><li> Herhaal de stappen 3.1.5 tot 3.1.8. De CD8a Neg DCs positief geselecteerd met CD11c kralen en zijn gebonden aan de kolom. De doorstroming kan worden weggegooid. </li><li> Elueer de cellen in de kolom vastgehouden zoals beschreven in stap 3.2.11 de gezuiverde CD8a Neg DCs verzamelen. </li></ol></li></ol> 4. Pulsing APC&#39;s met antigenen en Cell Transfer <ol><li> Tel de levende cellen na zuivering met behulp van trypan blauw uitsluiting 21 tot levende en dode cellen te onderscheiden. </li><li> Incubeer de cellen met het antigeen gekozen. Gebruik analogen glycolipide antigeen alfa-galactosyl ceramide (αGalCer) en 100 nM concentratie 13. Typisch, plaat 10 6 levensvatbare cellen / putje in compleet RPMI-medium met behulp van ultra-low Attachment U-bodem 96 wells platen op celhechting minimaliseren. Incubeer de cellen in een 5% CO2 atmosfeer bij 37 ° C gedurende 1-4 uur. </li><li> Oogst cellen door enkele malen zachtjes pipetteren. Gebruik wijde boring pipet tips om celbeschadiging van dwarskrachten een minimum te beperken. Was de putjes met PBS en bundelen deze wasbeurten naar cel oogst te maximaliseren. </li><li> Pellet de cellen bij 300 g gedurende 5 min bij 4 ° C en resuspendeer de gewenste dichtheid in PBS. Gewoonlijk Injecteer 1 miljoen cellen in 200 gl per ontvanger dier. Houd de cellen op ijs om de levensvatbaarheid voor de toediening te maximaliseren in gastheer dieren. </li><li> Injecteren cellen intraveneus in muizen hetzij via de laterale staart ijdel en de retro-orbitale veneuze plexus 19. Gebruik een 27 G naald op een 1 ml injectiespuit, en injecteer een maximaal volume van 0,1 ml per muis. </li></ol>

<ol><li>Steinman, R. M., Cohn, Z. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+novel+cell+type+in+peripheral+lymphoid+organs+of+mice.+I.+Morphology%2C+quantitation%2C+tissue+distribution%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Identification of a novel cell type in peripheral lymphoid organs of mice. I. Morphology, quantitation, tissue distribution.</a> J Exp Med. 137 (5), 1142-1162 (1973).</li>
<li>Banchereau, J., Steinman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+cells+and+the+control+of+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Dendritic cells and the control of immunity.</a> Nature. 392 (6673), 245-252 (1998).</li>
<li>Dudziak, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+antigen+processing+by+dendritic+cell+subsets+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Differential antigen processing by dendritic cell subsets in vivo.</a> Science. 315 (5808), 107-111 (2007).</li>
<li>Belz, G. T., Nutt, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptional+programming+of+the+dendritic+cell+network%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Transcriptional programming of the dendritic cell network.</a> Nat Rev Immunol. 12 (2), 101-113 (2012).</li>
<li>den Haan, J. M., Bevan, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Constitutive+versus+activation-dependent+cross-presentation+of+immune+complexes+by+CD8%28%2B%29+and+CD8%28-%29+dendritic+cells+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Constitutive versus activation-dependent cross-presentation of immune complexes by CD8(+) and CD8(-) dendritic cells in vivo.</a> J Exp Med. 196 (6), 817-827 (2002).</li>
<li>Carbone, F. R., Kurts, C., Bennett, S. R., Miller, J. F., Heath, W. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cross-presentation%3A+a+general+mechanism+for+CTL+immunity+and+tolerance%5BTitle%5D)+AND+%22Immunol+Today%22%5BJournal%5D)">Cross-presentation: a general mechanism for CTL immunity and tolerance.</a> Immunol Today. 19 (8), 368-373 (1998).</li>
<li>Yamazaki, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD8%2B+CD205%2B+splenic+dendritic+cells+are+specialized+to+induce+Foxp3%2B+regulatory+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">CD8+ CD205+ splenic dendritic cells are specialized to induce Foxp3+ regulatory T cells.</a> J Immunol. 181 (10), 6923-6933 (2008).</li>
<li>Mukherjee, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DEC-205-mediated+antigen+targeting+to+steady-state+dendritic+cells+induces+deletion+of+diabetogenic+CD8%28%2B%29+T+cells+independently+of+PD-1+and+PD-L1%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Immunol%22%5BJournal%5D)">DEC-205-mediated antigen targeting to steady-state dendritic cells induces deletion of diabetogenic CD8(+) T cells independently of PD-1 and PD-L1.</a> Int Immunol. 25 (11), 651-660 (2013).</li>
<li>Melief, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mini-review%3A+Regulation+of+cytotoxic+T+lymphocyte+responses+by+dendritic+cells%3A+peaceful+coexistence+of+cross-priming+and+direct+priming%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Mini-review: Regulation of cytotoxic T lymphocyte responses by dendritic cells: peaceful coexistence of cross-priming and direct priming.</a> Eur J Immunol. 33 (10), 2645-2654 (2003).</li>
<li>Bendelac, A., Savage, P. B., Teyton, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+biology+of+NKT+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">The biology of NKT cells.</a> Annu Rev Immunol. 25, 297-336 (2007).</li>
<li>Benlagha, K., Bendelac, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD1d-restricted+mouse+V+alpha+14+and+human+V+alpha+24+T+cells%3A+lymphocytes+of+innate+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Immunol%22%5BJournal%5D)">CD1d-restricted mouse V alpha 14 and human V alpha 24 T cells: lymphocytes of innate immunity.</a> Semin Immunol. 12 (6), 537-542 (2000).</li>
<li>Brennan, P. J., Brigl, M., Brenner, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Invariant+natural+killer+T+cells%3A+an+innate+activation+scheme+linked+to+diverse+effector+functions%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews.+Immunology%22%5BJournal%5D)">Invariant natural killer T cells: an innate activation scheme linked to diverse effector functions.</a> Nature reviews. Immunology. 13 (2), 101-117 (2013).</li>
<li>Arora, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+single+subset+of+dendritic+cells+controls+the+cytokine+bias+of+natural+killer+T+cell+responses+to+diverse+glycolipid+antigens%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">A single subset of dendritic cells controls the cytokine bias of natural killer T cell responses to diverse glycolipid antigens.</a> Immunity. 40 (1), 105-116 (2014).</li>
<li>Semmling, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alternative+cross-priming+through+CCL17-CCR4-mediated+attraction+of+CTLs+toward+NKT+cell-licensed+DCs%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">Alternative cross-priming through CCL17-CCR4-mediated attraction of CTLs toward NKT cell-licensed DCs.</a> Nat Immunol. 11 (4), 313-320 (2010).</li>
<li>Duriancik, D. M., Hoag, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+identification+and+enumeration+of+dendritic+cell+populations+from+individual+mouse+spleen+and+Peyer%27s+patches+using+flow+cytometric+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">The identification and enumeration of dendritic cell populations from individual mouse spleen and Peyer's patches using flow cytometric analysis.</a> Cytometry A. 75 (11), 951-959 (2009).</li>
<li>Karsunky, H., Merad, M., Cozzio, A., Weissman, I. L., Manz, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flt3+ligand+regulates+dendritic+cell+development+from+Flt3%2B+lymphoid+and+myeloid-committed+progenitors+to+Flt3%2B+dendritic+cells+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Flt3 ligand regulates dendritic cell development from Flt3+ lymphoid and myeloid-committed progenitors to Flt3+ dendritic cells in vivo.</a> J Exp Med. 198 (2), 305-313 (2003).</li>
<li>Mach, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differences+in+dendritic+cells+stimulated+in+vivo+by+tumors+engineered+to+secrete+granulocyte-macrophage+colony-stimulating+factor+or+Flt3-ligand%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Differences in dendritic cells stimulated in vivo by tumors engineered to secrete granulocyte-macrophage colony-stimulating factor or Flt3-ligand.</a> Cancer Res. 60 (12), 3239-3246 (2000).</li>
<li>Vremec, D., Segura, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+purification+of+large+numbers+of+antigen+presenting+dendritic+cells+from+mouse+spleen%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">The purification of large numbers of antigen presenting dendritic cells from mouse spleen.</a> Methods Mol Biol. 960, 327-350 (2013).</li>
<li>Machholz, E., Mulder, G., Ruiz, C., Corning, B. F., Pritchett-Corning, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Manual+restraint+and+common+compound+administration+routes+in+mice+and+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Manual restraint and common compound administration routes in mice and rats.</a> J Vis Exp. (67), (2012).</li>
<li>Reeves, J. P., Reeves, P. A. Unit 1.9, Removal of lymphoid organs. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aReeves%2C+JP+%22Curr+Protoc+Immunol%22">Curr Protoc Immunol</a>. , (2001).</li>
<li>Strober, W. Appendix 3B, Trypan blue exclusion test of cell viability. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aStrober%2C+W+%22Curr+Protoc+Immunol%22">Curr Protoc Immunol</a>. , (2001).</li>
<li>Vremec, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maintaining+dendritic+cell+viability+in+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Immunol%22%5BJournal%5D)">Maintaining dendritic cell viability in culture.</a> Mol Immunol. 63 (2), 264-267 (2015).</li>
</ol>

De auteurs verklaren dat ze geen concurrerende financiële belangen hebben.

Dendritische cellen worden toegelaten tot de grootste professionele antigenpresenterende cellen betrokken bij het priming van T-cel responsen zijn. Hun belangrijkste functie is om het weefsel micro onderzoek van opnemen en verwerken van antigenen voor presentatie aan T-cellen. Om de functie van specifieke DC subsets bestuderen, moeten deze in voldoende aantallen te isoleren Daarbij moet misschien hun normale fenotype en functie handhaaft. De meeste protocollen vertrouwen op de isolatie van specifieke subgroep van DC naï...

Dendritische cellen (DC) werden ontdekt bijna veertig jaar geleden als &quot;grote stervormige (Griekse dendron) cel&quot; in lymfoïde organen 1. Vele studies hebben aangetoond dat DCs de enige antigeen presenterende cellen die effectief naïeve T-cellen 2 kunnen stimuleren. Een belangrijke functie van deze cellen is de opname en presentatie van antigenen en de efficiënte verwerking en het laden van deze op antigeen presenterende moleculen. In muis milt, kan DC worden gescheiden in plasmacytoide en conventionele subsets. De plasmacytoide DCs worden gekenmerkt door lage expressie van CD 11 c en een hoog niveau van de B220 en Gr-1. Ze zijn ook positief voor de oppervlakte marker mPDCA1 en scheiden type I interferon in reactie op toll-like receptor 9 (TLR9) liganden. De conventionele DC&#39;s zijn hoog voor CD11c en MHC klasse II expressie. Zij kunnen worden verdeeld in drie subgroepen op basis van de oppervlakte-expressie van fenotypische merkers zoals CD4, CD8a, DEC205, CD11b en dendritische celtherapie remmende receptor 2 (DCIR2, erkend door de 33D1-antilichaam) eiwitten 3,4. De CD8a Pos DCs worden ook wel CDC1, zijn positief voor DEC205, maar negatief voor myeloïde merkers zoals CD11b en 33D1. De CD8a Neg DC&#39;s, ook wel cdc2, zijn positief voor 33D1, CD11b en CD4, maar gebrek aan DEC205. De dubbele negatieve subgroep (dwz negatief voor zowel CD4 en CD8a) is relatief zeldzaam, en is negatief voor DEC205 en 33D1. Het de minst gekarakteriseerde subgroep en kunnen minder gedifferentieerde vorm van CD8a Neg gelijkstroom. Fenotypische verschillen in de verschillende DC subsets worden uitgebreid tot de in vivo functies. De CD8a Neg DCs sterk fagocytische en men denkt dat exogeen antigen zetten vooral via MHC klasse II aan CD4 T-cellen 3. In tegenstelling, de CD8a Pos DCs zijn gespecialiseerd voor het aanbrengen van oplosbaar eiwit antigeen op MHC klasse Ieen mechanisme genaamd cross-presentatie. Het resultaat van cross-presentatie is afhankelijk van de activeringsstatus van deze DCs 5, en kan zowel leiden tot uitbreiding van cytotoxische T-cellen (CTL&#39;s) of de ontwikkeling van regulerende T-cellen 6 2,7. Targeting van antigeen aan CD8a Pos DCs met behulp van anti-DEC205-antilichaam-gemedieerde levering resultaten grotendeels in de verwijdering van T-cellen 8, terwijl de presentatie van de antigenen afkomstig van geïnfecteerde apoptotische cellen een sterke CTL-respons 9 induceert. Naast herkenning van peptide-antigenen is het immuunsysteem van zoogdieren ontwikkeld om lipide en glycolipide antigenen herkennen. Deze antigenen worden door CD1 moleculen, die MHC klasse I-achtige celoppervlakte-eiwitten die bestaan ​​in verschillende verwante vormen in diverse zoogdieren. In muizen, één soort sterk geconserveerde CD1 molecuul genaamd CD1d is verantwoordelijk voor de presentatie glycolipide antigenen 10. De burgemeester<html> populatie van T-cellen die CD1d / glycolipide complexen herkennen heet invariante NKT cellen (iNKT cellen). Deze cellen brengen een semi-invariante T-celreceptor (TCR), bestaande uit een invariant TCRα keten die is gekoppeld aan TcR ketens met een beperkte diversiteit 11. In tegenstelling tot conventionele T-cellen die moeten groeien en te differentiëren tot geactiveerde effector-T-cellen, iNKT cellen bestaan ​​als een effector bevolking en begint snel te reageren na glycolipide toediening 12. Identificatie van fysiologisch relevante lipide antigeenpresenterende cellen is een actief gebied van onderzoek en een aantal verschillende celtypes zoals B-cellen, macrofagen en DC&#39;s zijn voorgesteld voor deze functie. Er werd aangetoond dat de CD8a Pos subset van DC is de primaire cel medieert opname en presentatie van lipide antigenen muizen- iNKT cellen 13 en glycolipide gemedieerde cross-priming van CD8 T-cellen 14. ove_content &quot;&gt; Om de efficiëntie van antigeenpresentatie vergelijken met andere antigeenpresenterende cellen, een eenvoudige aanpak is om verschillende gezuiverde APCs gepulst met equivalente hoeveelheden van antigeen in naïeve gastheer. celoverdracht experimenten van dit type worden vaak uitgevoerd voor immunologische studies te dragen. echter, het uitvoeren van overdracht studies ex vivo antigeen behandelde DCs uitdaging, aangezien deze cellen bestaan ​​zeldzame populaties in lymfoïde organen, waar ze minder dan 2% van de totale cellen 15 vormen. daarom moet de ontwikkeling van deze cellen in donordieren verbeteren de efficiëntie van isolatie protocollen te verhogen. Het is bekend dat de gemeenschappelijke lymfoïde en myeloïde voorlopercellen gemeenschappelijke, die nodig zijn voor het genereren van pDC, CD8 en CD8 Pos Neg DC subsets, express fms-gerelateerde tyrosine kinase receptor 3 (Flt-3). Bij het ​​in vivo Flt-3-ligand (Flt-3L) administratie, emigration van Flt-3 tot expressie stamcellen uit beenmerg wordt verhoogd, leidt tot een toegenomen zaaien van perifere lymfoïde organen en de uitbreiding van de rijpe DC 16 nageslacht. Expressie van Flt-3 is verloren tijdens betrokkenheid bij de B, T of NK-celdifferentiatie paden. Daarom worden slechts minimale veranderingen waargenomen in deze cellen op Flt-3L administratie. Vertaald expansie DC populaties waargenomen in muizen die tumoren opgewekt door implantatie van B16-melanoom cellijn afscheidende muis Flt-3L, welke een eenvoudige en economische methode voor het verschaffen van langdurige systemische niveaus van Flt-3L 17,18 bepaalt. Met deze benadering hebben we een protocol gebaseerd op de implantatie van B16-melanoom cellen die Flt-3L de uitbreiding van alle normale DC subsets in muismilt stimuleren, waardoor aanzienlijke verhoging van de opbrengst van deze cellen kunnen worden geïsoleerd voor verdere experimenten ontwikkeld . We consequent vinden dat binnen 10 - 14 dagen na subcutane implantage van de Flt-3 afscheidende tumor, muizen ontwikkelen splenomegalie met duidelijke verrijking van DC tot 40 vormen - 60% van de totale miltcellen. Uit deze milt kunnen verschillende DC subsets worden geïsoleerd met hoge zuiverheid met behulp van standaard in de handel verkrijgbare cel zuivering kits die subgroep-specifieke fenotypische markers in dienst.

<table><tbody><tr><td>0,05% Trypsin-EDTA&nbsp;</td><td>Life Technologies, Gibco</td><td>25300-054</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>CDS019936-250MG</td><td></td></tr><tr><td>Collagenase D&nbsp;</td><td>Roche Diagnostics</td><td>11088858001</td><td></td></tr><tr><td>DNase I (droge poeder)</td><td>QIAGEN</td><td>79254</td><td></td></tr><tr><td>200 proof ethanol&nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>9-6705-004-220</td><td>Wordt gebruikt om 70% ethanol te bereiden</td></tr><tr><td>RBC lysis buffer</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>R7757</td><td></td></tr><tr><td>RPMI-1640 medium met L-glutamine&nbsp;</td><td>Life Technologies, Gibco</td><td>11875-119</td><td></td></tr><tr><td>DMEM medium met L-glutamine&nbsp;</td><td>Life Technologies, Gibco</td><td>11995-073</td><td></td></tr><tr><td>200 mM L-glutamine&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>25030081</td><td></td></tr><tr><td>MEM niet-essentiële aminozuren&nbsp;</td><td>Life Technologies, Gibco</td><td>11140-050</td><td></td></tr><tr><td>MEM essentiële aminozuren&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>11130-051&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>&beta;-mercaptoethanol&nbsp;</td><td>Life Technologies, Invitrogen</td><td>21985-023</td><td></td></tr><tr><td>Natriumpyruvaat&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>11360-070</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Life Technologies, Invitrogen</td><td>15630</td><td></td></tr><tr><td>Fosfaatbuffer oplossing (PBS Ca2+ en Mg2+ vrij pH 7,2)</td><td>Life Technologies, Invitrogen</td><td>20012-050</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco&rsquo;s PBS (DPBS met Ca2+ en Mg2+)</td><td>Life Technologies, Gibco</td><td>14040-182</td><td></td></tr><tr><td>0,5 M Ethyleendiaminetetraacetaat (EDTA) oplossing&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>15575-020</td><td></td></tr><tr><td>Bovien serum albumine (BSA)&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2153</td><td></td></tr><tr><td>Foetaal kalfs serum</td><td>Atlanta Biologicals</td><td>S11050&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Penicilline/streptomycine&nbsp;</td><td>Life Technologies, Invitrogen</td><td>15140-163</td><td></td></tr><tr><td>Trypanblauw (droge poeder)&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T6146-5G&nbsp;</td><td>Bereid 0,08% met PBS</td></tr><tr><td>Plasmacytoid Dendritische Cel Isolatiekit II, muis</td><td>Miltenyi Biotech</td><td>130-092-786</td><td></td></tr><tr><td>Magnetische kralen geconjugeerd met anti-muis CD11c&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotech</td><td>130-152-001</td><td></td></tr><tr><td>CD8&alpha;Pos muis DC isolatiekit&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotech</td><td>130-091-169</td><td></td></tr><tr><td>Fc-gamma receptor blokkerende antilichaam (Clone 2.4G2)</td><td>BD Biosciences</td><td>553141</td><td></td></tr><tr><td>Anti-muis CD11c-FITC&nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td>553801</td><td></td></tr><tr><td>Anti-muis CD8&alpha;-PerCP&nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td>553036</td><td></td></tr><tr><td>Anti-muis B220-PE&nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td>553090</td><td></td></tr><tr><td>1 ml spuiten&nbsp;</td><td>BD</td><td>26048</td><td></td></tr><tr><td>23 G1 naald&nbsp;</td><td>BD</td><td>305145</td><td></td></tr><tr><td>100 mm Petri schotels&nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>875712</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische instrumenten&nbsp;</td><td>Kent Scientific</td><td>INSMOUSEKIT</td><td></td></tr><tr><td>Celstrainer (70 &micro;m)</td><td>BD</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>Grote Petri schotels&nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>FB0875712</td><td></td></tr><tr><td>Vacuum filtratie systeem (500 ml (0,22 &micro;m))</td><td>Corning</td><td>431097</td><td></td></tr><tr><td>LS kolommen&nbsp;</td><td>Miltenyi</td><td>130-042-401</td><td></td></tr><tr><td>Magneetstand MACS separator&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-302</td><td></td></tr><tr><td>Brede 200 &mu;l pipetpunten&nbsp;</td><td>PerkinElmer</td><td>111623</td><td></td></tr><tr><td>Corning ultra-lage binding 96-well platen&nbsp;</td><td>Corning</td><td>CLS3474-24EA</td><td></td></tr><tr><td>6-8 weken oude vrouwelijke C57BL/6 muizen&nbsp;</td><td>Jackson Research Laboratories, Jax</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Muis B16.Flt3L melanoomcel lijn</td><td></td><td></td><td>beschreef door Mach et al., 2000</td></tr><tr><td>Serum vrij DMEM en RPMI media 500 ml DMEM met L-glutamine, of 500 ml RPMI-1640 met L-glutamine 5 ml MEM niet-essentiële aminozuren (100x, 10&nbsp;mM) 5 ml HEPES Buffer (1 M) 5 ml L-glutamine (200&nbsp;mM) 0,5 ml 2-mercaptoethanol (5,5 x 10-2 M)</td><td></td><td></td><td>Meng alle ingrediënten in een bioveiligheidskast met ofwel DMEM of RPMI media, afhankelijk van uw behoefte. Filter steriliseer de media door het door een 0,22 &micro;m vacuümfiltratie systeem te laten lopen.</td></tr><tr><td>Complete RPMI en DMEM media</td><td></td><td></td><td>Voeg 50 ml verhit inactieve foetaal kalfs serum toe aan serumvrij RPMI of DMEM media om compleet media te verkrijgen.</td></tr><tr><td>MACS buffer</td><td></td><td></td><td>Voeg 2 ml van 0,5 M EDTA en 10 ml van verhit inactieve foetaal kalfs serum toe aan 500 ml van fosfaat-gebufferde oplossing (PBS, Ca2+ en Mg2+ Vrij, pH 7,2) en 2&nbsp;&micro;g/ml 2.4G2 (Fc-Block antilichaam).</td></tr><tr><td>FACS kleuring buffer</td><td></td><td></td><td>Los natrium azide op tot 0,05% (0,25 g per 500 ml) in MACS buffer om FACS kleuring buffer te verkrijgen</td></tr><tr><td>10x Collagenase D en DNase 1 stock oplossing 
Los 1 g

een efficiënte en high yield methode voor het isoleren van de muis dendritische cel subsets

An Efficient and High Yield Method for Isolation of Mouse Dendritic Cell Subsets

Dendritische cellen (DCs) zijn professionele antigeen presenterende cellen hoofdzakelijk verantwoordelijk voor het verkrijgen, verwerken en presenteren van antigenen op antigeenpresenterende moleculen aan T-cellen gemedieerde immuniteit te initiëren. Dendritische cellen kunnen worden gescheiden in verschillende fenotypisch en functioneel heterogene subgroepen. Drie belangrijke subsets van milt dendritische cellen zijn plasmacytoide, CD8a Pos en CD8a Neg cellen. De plasmacytoïde DCs natuurlijke producenten van type I interferon en zijn belangrijk voor antivirale T cel immuniteit. De CD8a Neg DC deelverzameling is gespecialiseerd voor MHC klasse II antigeen presentatie en is centraal betrokken in priming CD4 T-cellen. De CD8a Pos DCs zijn primair verantwoordelijk voor cross-presentatie van exogene antigenen en CD8 T-cel priming. De CD8a Pos DC aangetoond efficiënt bij de presentatie glycolipide antigenen door CD1d moleculen om een specifieke T cell bevolking bekend als onveranderlijk natural killer T (iNKT) cellen. Toediening van Flt-3-ligand verhoogt de frequentie van migratie van dendritische cellen uit beenmerg progenitoren uiteindelijk resulteert in het vergroten van dendritische cellen in perifere lymfoïde organen in muizenmodellen. We hebben dit model aangepast aan grote aantallen functionele dendritische cellen te zuiveren voor gebruik in celoverdracht experimenten ter vergelijking in vivo vaardigheid van verschillende DC subsets.

Het resultaat van deze procedure is gebaseerd op de groei van DC subsets van murine Flt-3L door de geïmplanteerde melanoomcellen expressie. De B16.Flt3L tumor werd afgeleid van een C57BL / 6 muis en worden geïmplanteerd in dieren die stamachtergrond om falen van de tumor te vestigen door afstoting te voorkomen. In sommige gevallen kan het gewenst zijn genetisch gemodificeerde muizen om DCs met bekende defecten leiden in signaalwegen of receptoren van belang. Het is belangrijk om in gedac...

Er bestaan verschillende zeldzame populaties van dendritische celsubpopulaties in lymfoïde organen en daarom zijn ze lastig te isoleren in voldoende aantallen en zuiverheid voor immunologische experimenten. Hier beschrijven we een methode met hoge efficiëntie en hoog rendement voor het isoleren van alle momenteel bekende belangrijke subpopulaties van dendritische cellen in de milt van muizen.

Een efficiënte en High Yield methode voor het isoleren van de muis dendritische cel subsets

Dendritic cells (DCs) are professional antigen-presenting cells primarily responsible for acquiring, processing and presenting antigens on antigen ...

Het algemene doel van dit protocol is om een methode met hoge efficiëntie en hoge opbrengst te ontwikkelen voor het genereren van dendritische cellen of DC's, die hun in-vivo fenotypische en functionele divergentie fataal weerspiegelen. Dendritische cellen bestaan in grote populaties in lymfoïde organen. Daarom gebruiken we filterliganden om de frequentie van deze essentiële cellen in donorweefsels te verhogen om de isolatie te vergemakkelijken.Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat het de generatie van alle DC-subsets verwijdert in geschikte aantallen voor analyse met behulp van alleen de commercieel verkrijgbare agentia. Om flt-3-liganden tot expressie brengende B16-melanoomcellen uit een 90% confluente cultuur te oogsten, was de cellen eerst met PBS en incubeer de cultuur met 05% trypsine bij 37 graden Celsius. Na 5 minuten, doof de protease-activiteit met 20 milliliter 4 graden Celsius compleet dima-medium en los de aangehechte celmodellaag los met licht tikken en voorzichtig pipetteren.Verzamel de cellen door centrifugatie en tel ze. Spuit vervolgens de enkele celsuspensie opnieuw op tot een 1 keer tot 8 cellen per milliliter concentratie in PBS voor hun subcutane injectie in C57 zwarte 6 ontvangende muizen. Wanneer de tumor twee tot tien milliliter in diameter bereikt, oogst de milten van de tumordragende dieren en plaats de milten in een petrischaal met vers RPMI-medium.Snij de weefsels met een scalpel in stukken van 0,2 vierkante centimeter en incubeer vervolgens de fragmenten in tien milliliter collagenase en Dnase bij 37 graden Celsius. Giet na 30 minuten de gedeeltelijk gedigesteerde weefselslurry op een 70 micron celsifter en gebruik een vijf milliliter spuitplunger om de resterende weefselfragmenten door het gaas van de zeef te persen. Spoel de filter met 10 milliliter vers medium, verzamel het wasmiddel met de rest van de enkele celsuspensie en pellet de cellen.We suspenderen de celpellet in 2 milliliter rode bloedcellysebuffer bij kamertemperatuur gedurende 10 minuten. Was vervolgens de cellen in 10 milliliter vers RPMI-medium en suspendeer ze opnieuw in 1 keer 10 tot 8 cellen per milliliter in celsorteerbuffer die FC-blok bevat. Om de plasmacytode DC's te isoleren, meng 300 microliters biotin-gelabelde antilichaamcocktail uit een plasmacytode DC isolatiekit grondig met 200 microliters van de splenische enkele celsuspensie.Plaats de cellen gedurende 15 minuten in een ijswaterbad, met elke drie minuten voorzichtig tikken. Was vervolgens de cellen met 12 milliliter celsorteerbuffer en suspendeer het pellet in 500 microliters verse sorteerbuffer. Incubeer vervolgens de cellen in 300 microliters anti-biotine, antilichaam-geconjugeerde kralen gedurende nog eens 15 minuten in het ijswater met regelmatig tikken.Na het wassen van de cellen in verse sorteerbuffer, suspendeer de pallet opnieuw in 2 milliliter celsorteerbuffer en laad een geschikt gedimensioneerde magnetische kolom op zijn overeenkomstige magneet. Equilibreer de kolom met vijf milliliter verse 4 graden Celsius celsorteerbuffer. Wanneer al het buffer van de bovenkant van de kolom is gedraind, voeg de cellen voorzichtig toe aan het centrum van het oppervlak van de kolomkop en verzamel het flow-through.Was vervolgens de kolom met 10 milliliter vers, 4 graden Celsius sorteerbuffer en verzamel het flow-through in dezelfde buis. Na passage door een tweede magnetische kolom kan een plasmacytode dendritische celpopulatie met een zuiverheid van meer dan 94% worden verwacht. Om de CD8aplha+ en CD8alpha-DC's te isoleren, meng de rest van de splenische celsuspensie met 100 microliters biotion-geconjugeerd antilichaamcocktail uit een CD8alpha+ dendritische celisolatiekit gedurende 15 minuten op ijs met voorzichtig tikken, zoals zojuist gedemonstreerd.Aan het einde van de incubatie, was de cellen in 12 milliliter 4 graden Celsius celsorteerbuffer en suspendeer het pellet in 150 microliters verse 4 graden Celsius celsorteerbuffer. Meng vervolgens de cellen met 100 microliters van de CD8alpha+ dendritische celisolatiekit anti-biotinekralen. Was de cellen na 15 minuten op ijs met voorzichtig tikken in 10 milliliter 4 graden Celsius celsorteerbuffer en suspendeer het pellet in 1 milliliter verse 4 graden Celsius sorteerbuffer.Aan het einde van de incubatie, sorteer de cellen door magnetische kralenscheiding, zoals zojuist gedemonstreerd, en verzamel het flow-through en de eerste was. Draai vervolgens de cellen omlaag en suspendeer het pellet in één milliliter verse 4 graden Celsius celsorteerbuffer. Label nu de cellen met 200 microliters anti-CD8aplha geconjugeerde magnetische kralen uit de kit en laat de cellen door een nieuwe kolom gaan, waarbij het CD8alpha-dendritische cel flow-through wordt verzameld.Om de CD8alpha+DC's te verzamelen, breng de kolom over in een 15 milliliter conische buis en dompel 5 milliliter verse 4 graden Celsius celsorteerbuffer door de kolom. Na het doorlopen van de cellen door een tweede kolom, kan een CD8alpha+ dendritische celpopulatie van meer dan 96% worden verwacht. Om de CD8alpha-cellen te isoleren, draai de CD8alpha-flow-through celsuspensie.Label vervolgens de cellen met 100 microliters anti-CD11 c-magnetische kralen en verzamel de magnetische kralenpositieve celpopulatie, zoals zojuist gedemonstreerd, om een CD8alpha-dendritische celsubsetpopulatie van meer dan 97% te verkrijgen. Bepaal ten slotte het aantal levende cellen door trypanblauwe uitsluiting. Zodra de tumor voelbaar wordt, vertonen de B16 flt-3-ligandentumordragende muizen consequent een dramatische toename van de splenische cellulariteit die correleert met de expansie van de splenische dendritische celsubsets.Interessant is dat terwijl een 15 tot 20-voudige toename in de absolute celgetallen wordt waargenomen voor de conventionele DC's bij deze dieren, slechts een ongeveer 4-voudige toename wordt waargenomen voor de plasmacytode DC-subset. De verschillende dendritische celsubsets worden gekenmerkt volgens hun B220, CD11b, CD11c en CD8alpha-expressie. De celpopulaties vertonen ook andere unieke subsetmarkers, maar met mPDCA1 exclusief op de plasma

an-efficient-high-yield-method-for-isolation-mouse-dendritic-cell

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie en Infectie

Isolatie van lymfocyten met behulp van de Miltenyi MAC-kit is een betrouwbare manier om cellen van hele lymfeweefsel homogenaten te zuiveren. Cellen gezuiverd met behulp van de Miltenyi systeem zijn meestal ≥ 96% zuiver. Hier tonen we de stappen die zijn genomen om CD4 + T-cellen, een van de vele kits worden aangeboden door Miltenyi isoleren.

Isolatie van CD4 + T-cellen van de muis lymfeknopen Met behulp van Miltenyi MACS Zuivering

Een sterk gezuiverde bereiding van de muis long dendritische cellen wordt beschreven. Specifieke aandacht wordt gegeven aan de isolatie van de conventionele dendritische cel subset.

Isolatie van Mouse Lung dendritische cellen

Hier hebben we details van een methodologie voor de snelle isolatie van de muis intestinale dendritische cellen (DC's) en macrofagen. Fenotypische karakterisering van intestinale DCs en macrofagen wordt uitgevoerd met behulp van multi-kleuren flowcytometrische analyse, terwijl magnetische kraal verrijking gevolgd door celsortering wordt gebruikt om zeer zuivere populaties voor functionele studies opleveren.

Isolatie en karakterisering van dendritische cellen en macrofagen van de muis Darm

This video describes a protocol for the generation of dendritic cells--key antigen-presenting cells that activate T cells--from the bone marrow of an adult mouse.

Bone Marrow-Derived Dendritic Cells Generation: A Method to Generate Dendritic Cells from Mouse Bone Marrow

This video demonstrates a procedure for the adoptive transfer of high salt-treated antigen-presenting dendritic cells (DCs) into mice. Murine CD11c+ dendritic cells (DCs) are exposed to a medium containing high amounts of sodium, forming isolevuglandin (IsoLG)-protein adducts in the cells. These adducts serve as neoantigens and are presented on the surface of DCs. The high salt-treated cells are injected into mice through adoptive cell transfer.

A Method for the High Salt Treatment of Dendritic Cells and their Adoptive Transfer into Mice

Dit protocol detailleert een methode voor het isoleren van antigen-presenterende cellen uit humane thymus via verschillende stappen enzymatische afbraak van het weefsel, gevolgd door centrifugatie van de enkele celsuspensie en tenslotte magnetische en / of FACS sorteren van celpopulaties plaats.

Isolatie van myeloïde dendritische cellen en epitheelcellen van Human Thymus

Hier beschrijven we een methode om te isoleren en te zuiveren van dendritische cellen uit verschillende anatomische compartimenten in de menselijke vrouwelijke voortplantingssysteem voor de evaluatie van hun phenotypical en functionele kenmerken. Deze methode kan worden aangepast aan het isoleren van andere immune cellen of van dendritische cellen uit andere mucosal weefsels.

Isolatie van dendritische cellen uit de menselijke vrouwelijke voortplantingssysteem voor Phenotypical en functionele Studies

Monocyt-afgeleide DC (MoDC) kleine hoeveelheden gevaar-geassocieerde moleculen kunnen voelen en zijn daarom gemakkelijk primer. Wij bieden een gedetailleerd protocol voor de isolatie van de MoDC uit bloed, tumoren en hun activering met immuuncomplexen terwijl het benadrukken van belangrijke voorzorgsmaatregelen die moeten worden overwogen om te voorkomen dat hun voortijdige activering.

Protocol van de isolatie van muis monocyt-afgeleide dendritische cellen en hun latere In Vitro activatie met Tumor immuuncomplexen

Hier presenteren we een protocol te ontwikkelen en karakteriseren van tolerogenic dendritische cellen (TolDCs) en evalueren van hun immunotherapeutische nut.

Ontwikkeling en functionele karakterisering van lymfkliertest Tolerogenic dendritische cellen

Hier presenteren we een protocol om te isoleren van dendritische cellen uit lymfkliertest milt door magnetische cel Sorteren en latere adoptief overdracht naïef muizen. Het model van hoge-zout geactiveerde dendritische cellen werd gekozen om de stapsgewijze procedures voor de overdracht van de geadopteerde en stroom cytometry uitleggen.

Isolatie en adoptief overdracht van hoge zout behandeld antigeen-presenteren dendritische cellen

Hier presenteren we een economische en efficiënte methode om zeer zuivere beenmerg-afgeleide dendritische cellen van muizen te isoleren en te genereren na 7 dagen cultuur met 10 ng / ml GM-CSF / IL-4.

Economisch en efficiënt protocol voor het isoleren en kweken van beenmerg-afgeleide dendritische cellen van muizen

Leer een efficiënte methode voor het isoleren van muis dendritische cel subsets met Flt-3 ligand en magnetische bead-separatie. Dit protocol levert hoge opbrengsten en zuiverheid voor immunologisch onderzoek.

Een efficiënte en High Yield methode voor het isoleren van de muis dendritische cel subsets

Meer video's verkennen