5 april 2024
Dit manuscript beschrijft een gedetailleerd protocol voor het genereren en zuiveren van adeno-geassocieerde virale vectoren met behulp van een geoptimaliseerde op heparine gebaseerde affiniteitschromatografiemethode. Het biedt een eenvoudige, schaalbare en kosteneffectieve aanpak, waardoor ultracentrifugatie niet nodig is. De resulterende vectoren vertonen een hoge zuiverheid en biologische activiteit, wat hun waarde bewijst in preklinische studies.
In dit werk zijn we van plan een verbeterd protocol te ontwikkelen voor de productie, zuivering en karakterisering van mozaïekadeno-geassocieerde virale vectoren die hun waarde zouden kunnen bewijzen in preklinische studies. Ondanks inspanningen om stabiele productiecellijnen op te zetten, is voorbijgaande transfectie in zoogdiercellen nog steeds de overheersende workflow voor AAV-productie. Vervolgens worden de AAV's gezuiverd door centrifugatie met ultrahoge snelheid van dichtheidsgradiënt, of door chromatografietechnieken die afhankelijk zijn van de biochemische eigenschappen van virale deeltjes.
De veelgebruikte methoden om AAV's te zuiveren maken gebruik van cesiumchloride of jodixanol dichtheidsgradiënt ultracentrifugatie. Ondanks hun voordelen hebben ze enkele beperkingen. Ze zijn tijdrovend, ze hebben een beperkte schaalbaarheid en ze geven vaak resultaten aan sommige vectoren met een lage zuiverheid.
Om deze beperkingen te overwinnen, hebben verschillende onderzoekers hun aandacht gericht op chromatografietechnieken. We beschrijven een stapsgewijs protocol voor het genereren van mozaïek rAAV's op basis van het heparinebindende vermogen van AAV2. Deze methode maakt zeer zuivere en biologisch actieve rAAV's klaar voor gebruik in zes dagen, en presenteert zichzelf als een semi-geautomatiseerde, schaalbare en kosteneffectieve strategie om rAAV's te genereren voor preklinische studies.
Na het aantonen van de toepasbaarheid van deze methode voor het genereren van mozaïek rAAV's, kan het productiesysteem nu worden verfijnd om een betere schaalbaarheid en kosteneffectiviteit te bereiken door het opzetten van een productiecellijn. Daarnaast streven we ernaar om lege deeltjes te verwijderen door een tweede polijstzuiveringsstap op te nemen.
Dit manuscript beschrijft een gedetailleerd protocol voor de generatie en zuivering van adeno-geassocieerde virale vectoren met behulp van een geoptimaliseerde affiniteitschromatografiemethode op basis van heparine. De resulterende vectoren vertonen een hoge zuiverheid en biologische activiteit, wat hun waarde in preklinische studies bewijst.
Schaalbare productie van adeno-geassocieerde virale (AAV) vectoren met een hoge zuiverheid is een kritiek knelpunt voor R&D in gentherapie en de ontwikkeling van preklinische modellen. Hetstapsgewijze, semi-geautomatiseerde protocol voor heparine-affiniteitschromatografie pakt de beperkingen van methoden op basis van ultracentrifugatie direct aan, waardoor een snellere en meer reproduceerbare vectorpreparatie mogelijk wordt. Deze aanpak ondersteunt robuuste translationele workflows en standaardisatie van vectoren over de gehele portfolio.
Dit protocol is geïntegreerd in het continuüm van vectorproductie, van vroege ontdekking tot preklinisch onderzoek, en vervangt arbeidsintensieve ultracentrifugatiestappen.