-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
Wzorzysta fotostymulacja za pomocą cyfrowych urządzeń mikrolustrzanych do badania integracji dend...
Wzorzysta fotostymulacja za pomocą cyfrowych urządzeń mikrolustrzanych do badania integracji dend...
JoVE Journal
Bioengineering
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Bioengineering
Patterned Photostimulation with Digital Micromirror Devices to Investigate Dendritic Integration Across Branch Points

Wzorzysta fotostymulacja za pomocą cyfrowych urządzeń mikrolustrzanych do badania integracji dendrytycznej między punktami rozgałęzień

Full Text
16,197 Views
09:30 min
March 2, 2011

DOI: 10.3791/2003-v

Conrad W. Liang*1, Michael Mohammadi*1, M. Daniel Santos1, Cha-Min Tang1

1Department of Neurology, Baltimore VA Medical Center,University of Maryland School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Cyfrowe urządzenia mikrolustrzane (DMD) mogą generować złożone wzorce w czasie i przestrzeni, za pomocą których można kontrolować pobudliwość neuronów. Omówiono zagadnienia związane z projektowaniem, budową i eksploatacją systemów DMD. Taki system umożliwił zademonstrowanie nieliniowej integracji między dystalnymi punktami rozgałęzień dendrytycznych.

Ogólnym celem tej procedury jest kontrolowanie złożonych wzorów światła w czasie i przestrzeni, tak aby można je było wykorzystać do stymulacji neuronów. Osiąga się to poprzez uprzednie umieszczenie chipa DMD w odpowiedniej sprzężonej płaszczyźnie obrazu na ścieżce optycznej mikroskopu. Drugim krokiem zabiegu jest odpowiednie oświetlenie DMD intensywnym źródłem światła, takim jak laser.

Trzecim krokiem zabiegu jest wyeliminowanie efektu plamkowania spójnego oświetlenia. Ostatnim krokiem procedury jest zintegrowanie graficznego interfejsu użytkownika w celu manipulowania chipem DMD. Ostatecznie można uzyskać wyniki, które pokazują, że eksperymenty, które wcześniej były trudne do przeprowadzenia, można teraz stosunkowo łatwo przeprowadzić poprzez wielomiejscową lizę neuroprzekaźnika klatkowego z wykorzystaniem systemu DMD.

Cześć, nazywam się Michael Mohammed i pracuję w laboratorium dr Chamana Tanga na Wydziale Neurologii Uniwersytetu Maryland. Dzisiaj pokażemy Ci procedurę generowania złożonych wzorów eliminacji w mikroskopie optycznym. Używamy tej procedury w naszym laboratorium do badania integracji dendrytycznej.

Więc zacznijmy. Protokół ten zademonstruje działanie cyfrowego urządzenia z mikrolustrem lub systemu oświetlenia DMD dla eksperymentalnej neuronauki. DMD to optyczny układ półprzewodnikowy z kilkuset tysiącami mikroskopijnych ruchomych luster ułożonych w prostokątny układ Na jego powierzchni położenie każdego lustra odpowiada pikselowi obrazu.

Każde lustro może być indywidualnie sterowane, aby przechylać się między dwiema orientacjami. W orientacji wyłączonej światło jest kierowane z dala od osi optycznej oświetlenia próbki. W orientacji włączonej światło jest kierowane wzdłuż osi optycznej.

DMD dobrze nadaje się do lizy, ponieważ toleruje bardzo intensywne światło UV, generuje wysokie współczynniki kontrastu między pikselami włączania i wyłączania i może przełączać się między tymi dwoma stanami w ciągu kilkudziesięciu mikrosekund. Zastosowanie DMD w badaniach biomedycznych jest wspomagane przez szerokie zastosowanie oprogramowania i sprzętu do manipulacji obrazem oraz przez komercyjne zainteresowanie dziedziną wyświetlania obrazu. Komponenty modułowe są sprzedawane przez Texas Instruments jako zestawy do wykrywania DLP, które zapewniają pomocnicze sterowniki elektroniczne w celu dostosowania DMD do systemu mikroskopijnego.

Należy zrozumieć podstawowe pojęcia dotyczące optyki mikroskopii. Podstawowy nowoczesny mikroskop fluorescencyjny składa się ze ścieżki obrazowania i ścieżki oświetlenia. Składa się z obiektywu, sześcianu filtrującego i dwóch odrębnych soczewek tubusu dla ścieżki obrazowania i oświetlenia.

Mikroskop został zaprojektowany tak, aby miał pozycje, które są sprzężone z płaszczyzną obrazu próbki, gdzie obiekty wyostrzone na płaszczyźnie próbki będą również wyświetlane w ostrości na tych sprzężonych płaszczyznach obrazu. Konsekwencją tej koncepcji jest to, że każdy jasny obraz utworzony na płaszczyźnie obrazu sprzężonego byłby również ostro rzutowany na płaszczyznę obrazu próbki. Strategia ta służy do rzutowania wygenerowanego komputerowo wzoru oświetlenia na próbkę.

Wiązka laserowa służy jako bardzo jasne źródło światła, które oświetli wzór realizowany przez mikrolustra na chipach DMD umieszczonych na sprzężonej płaszczyźnie obrazu. Konstrukcja systemu oświetlenia DMD zależy od świateł wzbudzających używanych w eksperymentach optogenetycznych, które wykorzystują światło w widzialnej długości fali. Podświetlony wzór można przeprowadzić przez ścieżkę kamery.

Dlatego układ DMD można po prostu zamontować na jednym z dwóch portów kamery w module z dwoma portami kamery. I odwrotnie, w przypadku eksperymentów wykorzystujących światło w zakresie UV, takich jak liza związków w klatkach, światło musi zostać doprowadzone przez ścieżkę oświetlenia epi i należy utworzyć bardziej dostępną sprzężoną płaszczyznę obrazu. Dzieje się tak, ponieważ soczewka rurki obrazowej nie jest przystosowana do transmisji promieniowania UV.

Zamiast tego soczewka rurki oświetleniowej jest wykorzystywana do transmisji UV i wykonuje odpowiednią pracę w tworzeniu obrazu. Każde mikrolustro na DMD może przełączać się między dodatnim i ujemnym nachyleniem 12 stopni w stosunku do płaszczyzny chipa. W zależności od wejścia cyfrowego, które otrzymuje z komputera, oś obrotu przebiega wzdłuż ukośnych rogów każdego lustra, 45 stopni do prostokątnych boków chipa.

Orientacja nachylenia lustra jest oznaczona złotym trójkątem w jednym rogu na przedniej powierzchni chipa. Nachylenie mikrolustra decyduje o ustawieniu wysokości i azymutu wpadającej wiązki świetlnej. Aby oświetlić DMD, najpierw skonfiguruj skok wiązki świetlnej na 24 stopnie od prostopadłej osi chipa DMD i ustaw azymut tak, aby był prostopadły do osi obrotu lustra.

Precyzyjne wyrównanie wiązki ma kluczowe znaczenie dla wydajnej pracy. Do eksperymentów z lizą. Użyj źródła laserowego, aby wygenerować wiązkę o wysokiej intensywności, która jest niezbędna do szybkiego rozpakowania.

W tym przypadku stosuje się quasi-ciągły laser półprzewodnikowy pompowany diodą o potrojonej częstotliwości ND, użyj lasera o stosunkowo dużej mocy, ponieważ tylko niewielka część mocy wyjściowej lasera jest faktycznie dostarczana do próbki. Korzystając z systemu DMD, uruchom wyjście lasera do światłowodu wielomodowego, aby można go było łatwo ustawić i zorientować wzdłuż właściwej osi w celu oświetlenia DMD, aby zapewnić rozwiązanie plamki. Problem generowany przez koherentne oświetlenie przepuszcza światło przez światłowód.

Włókno jest nawinięte wokół naciągów z włókna elektrycznego pazo, które są napędzane do oscylacji około 40 kiloherców. Mikroskopijne rozciągnięcie włókna jest wystarczające, aby wielokrotnie przesunąć wzór plamki w ciągu milisekundy każdego impulsu fotostymulacji, skutecznie eliminując w ten sposób plamki. Na koniec wyjście światłowodu jest zestawiane z obiektywem mikroskopu UV w celu oświetlenia DMD w celu współzarejestrowania piksela CCD z oprogramowaniem do obrazu DMD, które koreluje poszczególne lustra DMD z określonymi pikselami obrazowania kamery CCD.

Graficzny interfejs użytkownika w oprogramowaniu umożliwia użytkownikowi przypisanie orientacji lustra DMD, która odpowiada regionowi na obrazie CCD za pomocą myszy komputerowej za pomocą graficznego interfejsu użytkownika. Oznacz lokalizację do stymulacji fotograficznej, przesuwając kursor nad obrazem wyświetlanym na ekranie komputera i kliknij oznaczony obszar zainteresowania, aby zaprogramować sklep z wzorcami dostarczania światła. Wzór oznaczony na ekranie komputera jako seria oddzielnych obrazów programuje w oprogramowaniu czas impulsów laserowych dla każdego wzoru przestrzennego.

Spowoduje to integrację z programem do akwizycji danych P clamp. Na koniec użyj programu do akwizycji danych, aby skoordynować czas elektroniki DMD, bramkowanie lasera i akwizycję sygnału elektrycznego z neuronem docelowym. W tym miejscu pokazana jest kalibracja rozdzielczości układu optycznego.

Minimalny rozmiar plamki jest pokazany jako mierzony od tarczy fluorescencyjnej. Efektywna rozdzielczość fizjologiczna jest mierzona amplitudą przepływu prądu w funkcji fotostymulacji. Pozycja punktowa tutaj, glutaminian w klatce został sfotografowany w sąsiedztwie gałęzi dendrytycznej o średnicy dwóch mikrometrów.

Gdy miejsce zostało przeniesione. Przedstawiono prostopadle w poprzek dite reakcje elektryczne na fotostymulację o różnej intensywności. Pokazane są odpowiedzi zaciśnięte napięciem w funkcji intensywności lizy.

Rozproszona stymulacja dendrytyczna może być łatwo zrealizowana za pomocą systemu opartego na DMD. W tym przypadku intensywność wejściowa została zróżnicowana poprzez zwiększenie liczby punktów stymulacji zdjęć oznaczonych jako okręgi na dwóch gałęziach dendrytycznych. Sumowanie przestrzenne może być nieliniowe w punktach rozgałęzień.

Staje się coraz bardziej liniowy wraz ze wzrostem amplitud wejściowych docierających do dwóch drzwi do gałęzi. Wyniki te wyraźnie ilustrują nieliniowy sposób sumowania punktów rozgałęzień dendrytycznych. Nadliniowość jest w dużej mierze pośredniczona przez receptory NMDA, a nie przez kanały bramkowane napięciem.

Można to wykazać, ponieważ zastosowanie dwóch antagonistów NMDA, A, PV i MK 8, 0, 1, w dużej mierze eliminuje zachowanie nieliniowe. Właśnie pokazaliśmy Ci podstawową konstrukcję i działanie systemu opartego na DMD do fotostymulacji wzorców tkanki nerwowej. System może być przystosowany do stymulacji światłem widzialnym, np. wykorzystywanym do eksperymentów optogenetycznych.

Może być również adaptacyjny do świateł bliskich UV, takich jak używany do lizy pojedynczych fotonów. Wykonując tę procedurę, należy pamiętać, że jeśli ma być używane światło o długości fali mniejszej niż 400 nanometrów i większość ludzi przechodzi przez ścieżkę oświetlenia epi, to precyzyjne ustawienie wiązki świetlnej w zakresie kilku stopni ma kluczowe znaczenie, a jeśli stosuje się spójne światło, plamki muszą być skutecznie wyeliminowane. Więc to wszystko.

Dziękujemy za oglądanie i życzymy powodzenia w eksperymentach.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Fotostymulacja wzorzysta cyfrowe urządzenia mikrolustrzane integracja dendrytyczna pobudliwość neuronów efektory światłoczułe rodopsyna kanałowa neuroprzekaźniki w klatce neuronauka eksperymentalna mikroskopia konfokalna mikroskopia 2-fotonowa dyfrakcja punktowa skanowanie fotostymulacja obrazowanie wzór przestrzenny projekcja celu komponenty sprzętowe mikroskopy pionowe fotoliza UV system światła widzialnego eksperymenty optogenetyczne

Related Videos

Mapowanie hamujących obwodów neuronalnych za pomocą fotostymulacji skaningowej laserowej

09:50

Mapowanie hamujących obwodów neuronalnych za pomocą fotostymulacji skaningowej laserowej

Related Videos

17.7K Views

Wspomagany komputerowo wieloelektrodowy system krosówek

11:01

Wspomagany komputerowo wieloelektrodowy system krosówek

Related Videos

14.5K Views

Fotostymulacja optogenetycznie ukierunkowana obwodów przodomózgowia ze skaningiem laserowym

07:43

Fotostymulacja optogenetycznie ukierunkowana obwodów przodomózgowia ze skaningiem laserowym

Related Videos

9.6K Views

Dwufotonowe obrazowanie in vivo kolców dendrytycznych w korze myszy przy użyciu preparatu z rozrzedzoną czaszką

09:53

Dwufotonowe obrazowanie in vivo kolców dendrytycznych w korze myszy przy użyciu preparatu z rozrzedzoną czaszką

Related Videos

18.7K Views

Jednoczesne dwufotonowe obrazowanie in vivo wejść synaptycznych i celów postsynaptycznych w korze zaśledzinowej myszy

16:45

Jednoczesne dwufotonowe obrazowanie in vivo wejść synaptycznych i celów postsynaptycznych w korze zaśledzinowej myszy

Related Videos

12K Views

Wykorzystanie połączonych metodologii w celu zdefiniowania roli dostarczania błony plazmatycznej podczas rozgałęziania aksonów i morfogenezy neuronów

14:28

Wykorzystanie połączonych metodologii w celu zdefiniowania roli dostarczania błony plazmatycznej podczas rozgałęziania aksonów i morfogenezy neuronów

Related Videos

6.6K Views

Analiza morfologii dendrytycznej w kolumnach i warstwach

08:41

Analiza morfologii dendrytycznej w kolumnach i warstwach

Related Videos

9.8K Views

Dwufotonowe obrazowanie wapnia w dendrytach neuronalnych w wycinkach mózgu

10:35

Dwufotonowe obrazowanie wapnia w dendrytach neuronalnych w wycinkach mózgu

Related Videos

11.5K Views

Obrazowanie na żywo w trybie poklatkowym i kwantyfikacja dynamiki szybkich gałęzi dendrytycznych w rozwoju neuronów Drosophila

08:23

Obrazowanie na żywo w trybie poklatkowym i kwantyfikacja dynamiki szybkich gałęzi dendrytycznych w rozwoju neuronów Drosophila

Related Videos

6.6K Views

Automatyczna identyfikacja gałęzi dendrytycznych i ich orientacji

06:08

Automatyczna identyfikacja gałęzi dendrytycznych i ich orientacji

Related Videos

2.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code