RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
- Eksperymentalne modele przerzutów pomagają ocenić potencjał komórek nowotworowych do wynaczynienia i proliferacji w określonych miejscach po wstrzyknięciu donaczyniowym. Na początek należy przygotować jednokomórkową zawiesinę komórek czerniaka w pożądanym stężeniu przy użyciu odpowiedniej pożywki. Zawiesinę należy załadować do strzykawki.
Następnie unieruchom, unieruchamiaj mysz w komorze i zabezpiecz ją tak, aby jej ogon był dostępny. Obróć mysz o 90 stopni, aby wyświetlić jej żyłę boczną. Użyj lampy grzewczej, aby zwiększyć temperaturę otoczenia, aby rozszerzyć żyłę ogonową. Teraz wbij igłę w kierunku dystalnego końca ogona i wstrzyknij przygotowaną zawiesinę komórek czerniaka do rozszerzonej żyły.
Wstrzyknięte przerzutowe komórki nowotworowe migrują przez układ krążenia. W końcu niektóre z tych komórek wynaczyniają się z krążenia do odległych narządów, takich jak płuca. Te komórki nowotworowe przystosowują się do nowego mikrośrodowiska, aby namnażać się i tworzyć eksperymentalne ogniska przerzutowe.
W poniższym protokole zademonstrujemy wstrzyknięcie komórek czerniaka B16-BL6 do żyły ogonowej do modelu mysiego w celu zbadania ich potencjału przerzutowego.
- Po przygotowaniu wszystkich zawiesin komórek B16-BL6 wybierz mysz. Trzymając go za ogon, poprowadź zwierzę tyłem do przodu, do krępowania. Gdy tułów myszy znajdzie się w komorze głównej, a jej ogon na zewnątrz aparatu, przystąp do ciągnięcia zwierzęcia w kierunku końca krępowania.
Następnie włóż tłok ograniczający i kontynuuj naciskanie tłoka, aż mysz zostanie zabezpieczona. Gdy zwierzę znajdzie się na miejscu, obróć mysz o 90 stopni tak, aby jedna z bocznych żył ogonowych była skierowana do góry. Następnie użyj wacika nasączonego alkoholem, aby energicznie oczyścić stronę ogona myszy, w której żyła jest najbardziej widoczna.
Aby przygotować się do wstrzyknięcia, najpierw należy zebrać 300 mikrolitrów z 0,5 miliona komórek na mililitr zawiesiny do strzykawki. Następnie wysuń bąbelki ze strzykawki, odwracając ją, przesuwając na bok i naciskając tłok. Po usunięciu pęcherzyków należy wyrzucić hodowlę komórkową, aby uzyskać ostateczną objętość 250 mikrolitrów w strzykawce.
Kontynuuj rozciąganie ogona myszy ręką niedominującą. Przytrzymaj go tak, aby palec wskazujący uniósł bliższy koniec ogona, a kciuk wcisnął dystalną część. Ręką dominującą wbij igłę do żyły w kierunku dystalnego końca ogona, pod niewielkim kątem w dół. Następnie włóż igłę dalej, dostosowując ją tak, aby pasowała do kąta żyły ogonowej.
Po wprowadzeniu igły, około 1 centymetr do żyły ogonowej, rozpocząć naciskanie tłoka, trzymając strzykawkę stabilnie. Zatamować krwawienie, przytrzymując gazę przy miejscu wejścia. Po wyrzuceniu zawiesiny komórkowej należy wyjąć igłę z żyły i wyrzucić ją. Następnie wyjmij tłok z ogranicznika i umieść mysz w klatce odbiorczej.
Related Videos
11:19
Related Videos
12.7K Views
07:44
Related Videos
10.3K Views
05:59
Related Videos
12K Views