RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Zacznij od nerwu kulszowego odizolowanego od myszy.
Neurony w nerwie zostały transfekowane w celu ekspresji fluorescencyjnych białek cytoplazmatycznych.
Nerw został zmiażdżony w celu wywołania urazu, który został oznaczony szwem.
Uszkodzone segmenty aksonów w tym miejscu ulegają degeneracji, a zrekrutowane makrofagi usuwają szczątki.
Komórki Schwanna namnażają się, tworząc ścieżki prowadzące i wydzielają czynniki neurotroficzne, które sprzyjają odrastaniu aksonów. Aksony rozciągają się wzdłuż tych ścieżek, regenerując nerw.
Napraw nerw, aby zachować struktury komórkowe, a następnie usuń wszelkie przyczepione tkanki nieneuronalne.
Przemyć buforem, aby usunąć resztki utrwalaczy.
Umieść nerw na szkiełku mikroskopowym, nałóż podłoże mocujące i umieść szkiełko nakrywkowe.
Spłaszcz nerw, aby ustawić aksony w tej samej płaszczyźnie ogniskowej do obrazowania.
Za pomocą mikroskopu epifluorescencyjnego prześledź aksony od miejsca zgniecenia do ich dystalnych końców, aby
zmierzyć długość regeneracji.
Oddziel DRG razem z korzeniami nerwowymi i nerwem kulszowym, ostrożnie za pomocą mikronożyczek i mikrokleszczyków pod mikroskopem preparacyjnym.
Następnie przenieś nerw kulszowy bezpośrednio w 4% PFA przez noc w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Aby zobrazować i zmierzyć znakowane fluorescencyjnie aksony czuciowe pod mikroskopem preparacyjnym, ostrożnie zdejmij przyczepioną tkankę i błonę na utrwalonym nerwie kulszowym za pomocą mikronożyczek i mikrokleszczyków. Następnie trzykrotnie przemyj nerw PBS.
Następnie umieść nerw kulszowy na szkiełku i trzymaj go prosto. Dodaj 80 mikrolitrów roztworu zapobiegającego blaknięciu wokół nerwu, a następnie połóż na nim szkiełko nakrywkowe. Spłaszcz całą zamontowaną tkankę pod naciskiem.
Następnie umieść spłaszczoną tkankę pod odwróconym mikroskopem epifluorescencyjnym, wyposażonym w akcesorium do akwizycji mozaiki i przetwarzania obrazu. Mierząc długość zregenerowanych aksonów, prześledź wszystkie możliwe do zidentyfikowania fluorescencyjnie znakowane aksony w nerwie kulszowym od miejsca zmiażdżenia do dystalnych końców aksonów.
Related Videos
09:55
Related Videos
10K Views
08:20
Related Videos
9K Views
09:43
Related Videos
2.6K Views
06:39
Related Videos
14K Views
08:49
Related Videos
34.4K Views
04:38
Related Videos
378 Views
11:46
Related Videos
15.7K Views
10:56
Related Videos
13.3K Views
08:43
Related Videos
11.7K Views
06:01
Related Videos
16.2K Views