Regeneracja aksonów w nerwie kulszowym myszy po urazie zmiażdżenia

0 wyświetleń2:40 min • August 29th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od nerwu kulszowego odizolowanego od myszy.

Neurony w nerwie zostały transfekowane w celu ekspresji fluorescencyjnych białek cytoplazmatycznych.

Nerw został zmiażdżony w celu wywołania urazu, który został oznaczony szwem.

Uszkodzone segmenty aksonów w tym miejscu ulegają degeneracji, a zrekrutowane makrofagi usuwają szczątki.

Komórki Schwanna namnażają się, tworząc ścieżki prowadzące i wydzielają czynniki neurotroficzne, które sprzyjają odrastaniu aksonów. Aksony rozciągają się wzdłuż tych ścieżek, regenerując nerw.

Napraw nerw, aby zachować struktury komórkowe, a następnie usuń wszelkie przyczepione tkanki nieneuronalne.

Przemyć buforem, aby usunąć resztki utrwalaczy.

Umieść nerw na szkiełku mikroskopowym, nałóż podłoże mocujące i umieść szkiełko nakrywkowe.

Spłaszcz nerw, aby ustawić aksony w tej samej płaszczyźnie ogniskowej do obrazowania.

Za pomocą mikroskopu epifluorescencyjnego prześledź aksony od miejsca zgniecenia do ich dystalnych końców, aby

zmierzyć długość regeneracji.

Oddziel DRG razem z korzeniami nerwowymi i nerwem kulszowym, ostrożnie za pomocą mikronożyczek i mikrokleszczyków pod mikroskopem preparacyjnym.

Następnie przenieś nerw kulszowy bezpośrednio w 4% PFA przez noc w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Aby zobrazować i zmierzyć znakowane fluorescencyjnie aksony czuciowe pod mikroskopem preparacyjnym, ostrożnie zdejmij przyczepioną tkankę i błonę na utrwalonym nerwie kulszowym za pomocą mikronożyczek i mikrokleszczyków. Następnie trzykrotnie przemyj nerw PBS.

Następnie umieść nerw kulszowy na szkiełku i trzymaj go prosto. Dodaj 80 mikrolitrów roztworu zapobiegającego blaknięciu wokół nerwu, a następnie połóż na nim szkiełko nakrywkowe. Spłaszcz całą zamontowaną tkankę pod naciskiem.

Następnie umieść spłaszczoną tkankę pod odwróconym mikroskopem epifluorescencyjnym, wyposażonym w akcesorium do akwizycji mozaiki i przetwarzania obrazu. Mierząc długość zregenerowanych aksonów, prześledź wszystkie możliwe do zidentyfikowania fluorescencyjnie znakowane aksony w nerwie kulszowym od miejsca zmiażdżenia do dystalnych końców aksonów.

09:55

Model uszkodzeń Drosophila in vivo do badania neuroregeneracji w obwodowym i ośrodkowym układzie nerwowym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:20

Analiza kinematyczna 3D do oceny funkcjonalnej w szczurzym modelu uszkodzenia nerwu kulszowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:43

Kontrolowane półautomatyczne urazy indukowane laserem do badania regeneracji rdzenia kręgowego u larw danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:39

Obrazowanie na żywo aksonów korzeni grzbietowych po ryzotomii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:49

Powtarzalny model zmiażdżenia nerwu kulszowego myszy i późniejsza ocena regeneracji poprzez analizę całego preparatu mięśnia

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:38

Modelowanie regeneracji aksonów czuciowych u szczura za pomocą iniekcji zwoju korzenia grzbietowego i uszkodzenia zmiażdżenia korzenia grzbietowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:56

Transfekcja zwojów korzenia grzbietowego myszy za pośrednictwem elektroporacji w celu wspomagania regeneracji aksonów czuciowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:46

Wykorzystanie chipów mikroprzepływowych do obrazowania na żywo i badania reakcji na urazy u larw Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:01

Metoda uszkodzenia nerwu strzałkowego: wiarygodny test do identyfikacji i testowania czynników naprawiających połączenia nerwowo-mięśniowe

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:48

Iniekcja zwoju korzenia grzbietowego i uraz zmiażdżenia korzenia grzbietowego jako model regeneracji aksonów czuciowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026