Wizualizacja stresu oksydacyjnego wywołanego przez patogeny u C. elegans za pomocą SKN-1 oznaczonego GFP

0 views • 3:12 min • March 31st, 2026

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od dwóch płytek zawierających robaki C. elegans , które wyrażają zielone fluorescencyjne białko oznaczone SKN-1, czynnikiem transkrypcyjnym zlokalizowanym w cytoplazmie jelitowej. Te robaki zawierają także granulki lipofucyny jelitowej, które wykazują autofluorescencję.

Jedna płytka jest zasiewana bakteriami niepatogennymi jako grupą kontrolną, druga z bakteriami patogennymi jako grupą testową.

W grupie testowej nadtlenek wodoru produkowany przez patogen wywołuje stres oksydacyjny, wywołując translokację SKN-1 do jąder jelit.

W grupie kontrolnej większość SKN-1 pozostaje rozproszona w cytoplazmie.

Każdą płytkę przemyj buforem i przełóż robaki do rurek.

Wirówkuj, aby oddzielić robaki i usunąć bufor.

Dodaj podłoże zawierające azyd sodu, aby je znieczulić.

Zamontuj robaki na agarozowych podkładkach, załóż pokrywki i obserwuj pod mikroskopem fluorescencyjnym. Użyj autofluorescencji, aby zwizualizować granice jądrowe.

Silny sygnał jądrowy SKN-1 w teście, w porównaniu do rozproszonego sygnału cytoplazmatycznego w kontroli, wskazuje na relokalizację jądra i potwierdza stres oksydacyjny wywołany przez patogen.

Za pomocą pipety dodaj około 100 larw L4 do każdej płytki THY z nasieniem streptococcus oraz NGM E. coli . Używaj trzech płytek na szczep bakterii.

Inkubuj płytki przez 2 do 3 godzin w temperaturze 25 stopni Celsjusza. Następnie wyjmij płytki z inkubatora. Przemyj je M9W i zbierz robaki do stożkowych rurek o masie 15 mililitrów.

Przemyj robaki trzy razy, tak jak wcześniej w fazie odśrodkowej. Usuń większość M9W przez aspirację. Do pelletu robaka dodaj 500 mikrolitrów M9W zawierającego 2 milimolarne azydy sodu lub chlorowodorek tetramilu do pelletu robaków do znieczulenia.

Inkubuj rurkę z pelletami dżdżownicami w temperaturze pokojowej przez 15 minut. Następnie wrzuć 15 mikrolitrów zawiesiny z robaków na przygotowaną agarozową podkładkę. Pod mikroskopem fluorescencyjnym wizualizuj lokalizację SKN-1 za pomocą filtrów FITC i DAPI.

Robaki obrazują się przy 10 razach i 20 powiększeniach. Oceniaj robaki na podstawie trzech poziomów lokalizacji; niskie lokalizacje, gdzie nie obserwuje się lokalizacji jądrowej, średnia lokalizacja, z SKN-1 BCGFP w przedniej lub tylnej części robaka, oraz wysoka lokalizacja, gdzie lokalizacja jądrowa SKN-1 BCGFP jest obserwowana we wszystkich komórkach jelitowych.

08:10

Pomiar odporności Caenorhabditis elegans na stres oksydacyjny w 96-dołkowych płytkach mikromiareczkowych

Related Videos

0 Views

10:36

Pomiary fizjologicznych reakcji na stres u C. elegans

Related Videos

0 Views

06:01

Znormalizowane metody pomiaru indukcji reakcji na szok cieplny u Caenorhabditis elegans

Related Videos

0 Views

14:53

Wysokoprzepustowe badania przesiewowe i biodetekcja z fluorescencyjnymi szczepami C. elegans

Related Videos

0 Views

12:57

Badanie rozprzestrzeniania się i toksyczności białek priopodobnych przy użyciu metazoańskiego organizmu modelowego C. elegans

Related Videos

0 Views

09:33

Obrazowe podejścia do oceny toksykologicznego stresu oksydacyjnego przy użyciu genetycznie kodowanych czujników fluorogennych

Related Videos

0 Views

09:00

Platforma mikroprzepływowa do obrazowania podłużnego u Caenorhabditis elegans

Related Videos

0 Views

07:46

Kwantyfikacja obfitości lipidów i ocena rozmieszczenia lipidów w Caenorhabditis elegans za pomocą barwienia czerwienią nilową i czerwienią olejową O

Related Videos

0 Views

09:36

Wykrywanie lokalizacji subkomórkowej białka poprzez znakowanie białek zielonej fluorescencji i barwienie 4',6-diamidino-2-fenyloindolem w Caenorhabditis elegans

Related Videos

0 Views

09:44

Wysokoprzepustowy, o wysokiej zawartości, płynny system patologiczny C. elegans

Related Videos

0 Views

Last updated: 11 July 2026