12 lipca 2011
Wstrzykiwanie do ściany pęcherza moczowego myszy jest przydatnym podejściem do ortotopowych badań nad biologią komórek macierzystych pęcherza oraz biologią nowotworów. Tę precyzyjną metodę mikrochirurgiczną można opanować dzięki starannej technice i praktyce.
Ogólnym celem niniejszej procedury jest wprowadzenie komórek do określonych obszarów ściany pęcherza moczowego. Osiąga się to poprzez wykonanie nacięcia brzusznego w celu odsłonięcia pęcherza. Kolejnym krokiem procedury jest wprowadzenie ściętego końca igły wewnątrzściennie.
Ostatnim etapem procedury jest naciśnięcie tłoka strzykawki w celu wstrzyknięcia badanych komórek do ściany pęcherza. Prawidłową implantację komórek świadczy obecność dobrze zlokalizowanego pęcherzyka, który nie przecieka i zachowuje stabilną wielkość. Główną zaletą tej techniki w porównaniu z istniejącymi metodami, takimi jak przezcewkowe wprowadzanie komórek u myszy, jest możliwość precyzyjnego określenia miejsca implantacji komórek w obrębie pęcherza.
Wizualna demonstracja wstrzykiwania domięśniowego jest kluczowa, ponieważ opanowanie techniki iniekcji jest trudne. Znajomość prawidłowego kąta oraz miejsca wprowadzenia igły do pęcherza jest niezbędna dla powodzenia procedury. Wybierz wiek, płeć i szczep myszy w zależności od potrzeb przeprowadzanego eksperymentu.
Do doświadczenia wykorzystuje się myszy w wieku od 8 do 12 tygodni. Należy rozpocząć od oczyszczenia powierzchni stołu operacyjnego za pomocą mydła i wody. Następnie powierzchnię stołu operacyjnego należy przetrzeć chusteczkami dezynfekującymi lub antyseptycznymi. Narzędzia chirurgiczne powinny zostać wysterylizowane w autoklawie przed rozpoczęciem zabiegu.
Przed użyciem przetrzeć instrumenty 70% etanolem, a pomiędzy poszczególnymi zabiegami chirurgicznymi wysterylizować je ponownie w sterylizatorze koralikowym. Oczyścić strzykawkę Hamiltona o pojemności 100 µL z dołączoną igłą 30G poprzez wielokrotne zasysanie alkoholu absolutnego, a następnie sterylnego soli fizjologicznej w buforze fosforanowym. Umieścić znieczulone zwierzę w pozycji grzbietnej na ogrzewanej podkładce, aby pomóc w utrzymaniu prawidłowej temperatury ciała.
Utrzymuj odpowiedni poziom znieczulenia, umieszczając pysk zwierzęcia w dyszy z odparowanym izofluranem. Następnie usuń sierść ze skóry brzucha za pomocą strzygarki. Użyj jednorazowej sterylnej draperii chirurgicznej do zakrycia odbytu, aby zapobiec zanieczyszczeniu kałem podczas operacji.
Na dolną część brzucha nałóż drugą sterylną draperię chirurgiczną i wyznacz okno operacyjne. Miejsce operacyjne wysterylizuj, wielokrotnie aplikując Betadynę oraz alkohol, używając mikroskopu sekcyjnego w celu powiększenia obrazu. Nożyczkami wykonaj nacięcie w dolnej linii środkowej brzucha.
Należy delikatnie uciskać brzuch, aby odsłonić pęcherz moczowy. Ponieważ pęcherz jest zazwyczaj częściowo lub całkowicie pełny, ucisk brzucha spowoduje przesunięcie innych organów, co pozwoli na wysunięcie się pęcherza przez nacięcie. Jeśli pęcherz jest pełny, należy delikatnie nacisnąć go w okolicy kopuły, aby go częściowo opróżnić.
Napełnij sterylną strzykawkę Hamiltona 50 µL roztworu próbki. Wprowadź końcówkę igły ściętą stroną do góry w ścianę pęcherza i wstrzyknij roztwór próbki. Prawidłowe wstrzyknięcie objawia się powstaniem dobrze zlokalizowanego pęcherzyka, z którego nie wycieka płyn i który utrzymuje stałą wielkość.
Po wstrzyknięciu zamknąć nacięcie za pomocą klipsów chirurgicznych. Pozostawić zwierzę do dojścia do siebie na podgrzewaczką. Technika ta, przy prawidłowym wykonaniu, zajmuje od 10 do 15 minut.
Sukces można potwierdzić poprzez analizę histologiczną pęcherza w kolejnych punktach czasowych po wstrzyknięciu.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł omawia mikrosurgicalną technikę wstrzykiwania komórek do ściany pęcherza moczowego myszy, co ułatwia badanie komórek macierzystych pęcherza oraz biologii nowotworów. Metoda ta pozwala na precyzyjną lokalizację implantacji komórek, co stanowi istotną zaletę w porównaniu z tradycyjnymi technikami.
Iniekcja w ścianę pęcherza moczowego myszy umożliwia precyzyjne modelowanie ortotopowe biologii pęcherza, wspierając badania mechanistyczne w zakresie komórek macierzystych, mięśni gładkich oraz nowotworów. Technika ta zwiększa wiarygodność prognostyczną systemów istotnych dla przebiegu chorób, pozwalając na celowane dostarczenie komórek i lokalną analizę tkanek. Jej powtarzalność i specyficzność anatomiczna sprawiają, że stanowi ona kluczowe narzędzie w wczesnym etapie odkryć i rozwoju modeli przedklinicznych w badaniach nad chorobami urologicznymi.
Ta mikrosurgicalna metoda iniekcji wpisuje się w ciąg procesu od odkrycia do badań przedklinicznych, umożliwiając prowadzenie badań in vivo opartych na hipotezach oraz wspierając identyfikację wiodących cząsteczek w badaniach nad chorobami pęcherza moczowego.