$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Fizyczna interakcja między dwoma partnerami białkowymi moduluje dalsze mechanizmy biologiczne.
Aby wykryć interakcje białko-białko za pomocą testu immunoenzymatycznego ELISA, należy pobrać wielodołkową płytkę do testu immunologicznego. Dodać bufor otoczkowy zawierający jedno z oddziałujących białek ― białko przynęty ― i inkubować. Białka przynęty są adsorbowane na powierzchni studni poprzez niespecyficzne oddziaływania hydrofobowe.
Wyrzucić zużyty roztwór i umyć płytkę buforem w celu usunięcia niezwiązanych białek. Dodaj roztwór blokujący i inkubuj, pozwalając cząsteczkom środka blokującego roztworu zablokować niespecyficzne miejsca wiązania na powierzchni studzienki.
Dodaj oddziałującego partnera białkowego - białko ofiary - oznaczone resztami histydyny w celu łatwej kwantyfikacji. Inkubuj, pozwalając białku ofiary na specyficzne związanie się ze swoim interaktywnym partnerem - przynętą. Dodaj roztwór przeciwciał antyhistydynowych sprzężonych z enzymami peroksydazy chrzanowej, które wiążą się z ofiarą, tworząc kompleks przynęta-ofiara-przeciwciało.
Odpipetować roztwór zawierający substrat enzymu i nadtlenek wodoru i rozpocząć inkubację.
Enzym peroksydazy chrzanowej wykorzystuje nadtlenek wodoru do katalitycznego utleniania swojego substratu ― tworząc produkt o niebieskim zabarwieniu. Dodaj kwaśny roztwór, który denaturuje enzym, aby zatrzymać reakcję, tworząc żółty produkt reakcji.
Za pomocą czytnika mikropłytek zmierz intensywność koloru produktu, która jest proporcjonalna do ilości związanego białka ofiary i wskazuje na udaną interakcję białko-białko.
Aby przygotować się do testu ELISA, należy dozować 100 mikrolitrów roztworu białkowego do każdego dołka płytki do mikromiareczkowania Polysorp. Zamknij płytki pokrywką i przechowuj w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez noc, aby ułatwić unieruchomienie białka na dołkach na płytkach do mikromiareczkowania. Wylej roztwór z płytki do mikromiareczkowania, przechylając ją do góry nogami nad zlewem. Następnie umyj studzienki trzykrotnie 300 mikrolitrami PBS na studzienkę.
Zablokuj powlekane studzienki na 1 godzinę w temperaturze pokojowej za pomocą PBS, zawierającego 2,5 procenta objętości masy. Po usunięciu roztworu blokującego umyć studzienki trzykrotnie 300 mikrolitrami PBST na studzienkę. Teraz dodaj 100 mikrolitrów 50 nanomolowych rekombinowanych PH oznaczonych Hisem do każdej próbki. W studzienkach kontrolnych dodaj tylko 100 mikrolitrów PBS-BSA. Inkubować płytkę przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej.
Po inkubacji wyrzucić roztwór białkowy i usunąć niezwiązane białka, przemłukując studzienki trzykrotnie 300 mikrolitrami PBST na studzienkę. Następnie dodaj 100 mikrolitrów PBS-BSA, zawierającego przeciwciała poliklonalne anty-He sprzężone z peroksydazą chrzanową.
Po inkubacji przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej umyć studzienki trzykrotnie 300 mikrolitrami PBST na studzienkę. Wykryj kompleksy antygen-przeciwciało, dodając 100 mikrolitrów odczynnika wykrywającego ELISA do każdej studzienki. Następnie dodaj 50 mikrolitrów 1 molowego kwasu siarkowego na studzienkę, aby zatrzymać reakcję. Zmierz gęstość optyczną studzienek przy 450 nanometrach za pomocą czytnika mikropłytek.