Rejestrowanie odpowiedzi synaptycznych CA3-CA1 w wycinku hipokampa szczura

0 wyświetleń3:10 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Umieść plasterek hipokampa szczura w konfiguracji do elektrofizjologii.

Umieść elektrody stymulujące w warstwie promieniowej regionu CA1 hipokampa, który odbiera projekcje aksonalne z neuronów CA3.

Umieść elektrodę rejestrującą w pobliżu dendrytów wierzchołkowych CA1.

Umieścić kolejną elektrodę rejestrującą w warstwie piramidalnej.

Po stymulacji projekcje aksonalne CA3 depolaryzują się i generują potencjały czynnościowe, uwalniając pobudzające neuroprzekaźniki.

Te neuroprzekaźniki wiążą się z postsynaptycznymi dendrytami wierzchołkowymi CA1, indukując napływ jonów dodatnich i depolaryzację błony, zwaną pobudzającym potencjałem postsynaptycznym lub EPSP.

Elektroda rejestrująca mierzy zsumowane EPSP z dendrytów wierzchołkowych — pola EPSP lub fEPSP. Po uzyskaniu stabilnych sygnałów fEPSP opuść elektrody i zrób krótką przerwę.

Zastosuj zakres intensywności stymulacji, aby określić zależność wejścia-wyjścia od nachylenia fEPSP, a następnie wybierz i zastosuj określoną intensywność w oparciu o nachylenie.

Druga elektroda rejestrująca mierzy połączone potencjały czynnościowe z ciał komórek neuronalnych CA1, generując skoki populacji.

W eksperymentach z tagowaniem i wychwytywaniem synapstycznym pod mikroskopem umieść dwie elektrody stymulujące w warstwie promienistej regionu CA1, aby stymulować włókna poboczne Schaffera i jedną elektrodę rejestrującą w wierzchołkowym regionie dendrytycznym CA1 w połowie drogi między elektrodami stymulującymi, aby zarejestrować odpowiedzi fEPSP.

Umieść kolejną elektrodę rejestrującą w warstwie piramidalnej, aby zarejestrować wzrost populacji. Gdy wszystkie elektrody dotkną warstwy, przeprowadź stymulację testową, aby upewnić się, że w obu wejściach można uzyskać odpowiedni sygnał EPSP w polu.

Po uzyskaniu odpowiedniego sygnału fEPSP ostrożnie opuść elektrody o około 200 mikronów dalej za pomocą precyzyjnych pokręteł ruchowych manipulatorów, a następnie odczekaj 20 minut, aż plasterek się zregeneruje. Następnie określ relację wejścia/wyjścia, mierząc nachylenie pola EPSP w zakresie natężeń prądu od 20 mikroamperów do 100 mikroamperów.

Następnie, dla każdego wejścia, ustaw intensywność stymulacji, która wywołuje 40% maksymalnego nachylenia pola EPSP jako stałe bodźce przez cały eksperyment. Po 15 do 20 minutach rozpocznij nagrywanie linii bazowej.

Zapisz stabilną linię bazową co najmniej 30 do 60 minut przed indukcją LTP/LTD.

09:51

Rejestrowanie plastyczności synaptycznej w ostrych wycinkach hipokampa utrzymywanych w systemie komór do recyklingu, perfuzji i zanurzenia o małej objętości

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:24

Rejestracja i modulacja aktywności padaczkowej w wycinkach mózgu gryzoni sprzężonych z układami mikroelektrod

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:52

Ocena liczebności synaps za pomocą elektrofizjologii patch-clamp całkowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:57

Przygotowanie ostrych skrawków hipokampa szczurów i myszy transgenicznych do badania zmian synaptycznych podczas starzenia się i patologii amyloidowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

16:38

Podwójne rejestracje elektrofizjologiczne synaptycznie wywołanych odpowiedzi astroglialnych i neuronalnych w ostrych skrawkach hipokampa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:26

Rejestrowanie pobudzających potencjałów postsynaptycznych pola neuronalnego w ostrych wycinkach hipokampa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:58

Generowanie lokalnych oscylacji gamma Cornu Ammonis 1 (CA1) za pomocą stymulacji tężcowej w wycinku mózgu hipokampa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:39

Ulepszone przygotowanie i konserwacja wycinków myszy z hipokampa w celu uzyskania bardzo stabilnego i powtarzalnego zapisu długotrwałego wzmocnienia

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:03

Izolacja frakcji wzbogaconych jądrami CA1 z wycinków hipokampa w celu zbadania zależnego od aktywności importu jądrowego synaptojądrowych białek przekaźnikowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:29

Badanie znakowania/przechwytywania synaptycznego i przechwytywania krzyżowego przy użyciu ostrych plastrów hipokampa od gryzoni

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026