RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Umieść plasterek hipokampa szczura w konfiguracji do elektrofizjologii.
Umieść elektrody stymulujące w warstwie promieniowej regionu CA1 hipokampa, który odbiera projekcje aksonalne z neuronów CA3.
Umieść elektrodę rejestrującą w pobliżu dendrytów wierzchołkowych CA1.
Umieścić kolejną elektrodę rejestrującą w warstwie piramidalnej.
Po stymulacji projekcje aksonalne CA3 depolaryzują się i generują potencjały czynnościowe, uwalniając pobudzające neuroprzekaźniki.
Te neuroprzekaźniki wiążą się z postsynaptycznymi dendrytami wierzchołkowymi CA1, indukując napływ jonów dodatnich i depolaryzację błony, zwaną pobudzającym potencjałem postsynaptycznym lub EPSP.
Elektroda rejestrująca mierzy zsumowane EPSP z dendrytów wierzchołkowych — pola EPSP lub fEPSP. Po uzyskaniu stabilnych sygnałów fEPSP opuść elektrody i zrób krótką przerwę.
Zastosuj zakres intensywności stymulacji, aby określić zależność wejścia-wyjścia od nachylenia fEPSP, a następnie wybierz i zastosuj określoną intensywność w oparciu o nachylenie.
Druga elektroda rejestrująca mierzy połączone potencjały czynnościowe z ciał komórek neuronalnych CA1, generując skoki populacji.
W eksperymentach z tagowaniem i wychwytywaniem synapstycznym pod mikroskopem umieść dwie elektrody stymulujące w warstwie promienistej regionu CA1, aby stymulować włókna poboczne Schaffera i jedną elektrodę rejestrującą w wierzchołkowym regionie dendrytycznym CA1 w połowie drogi między elektrodami stymulującymi, aby zarejestrować odpowiedzi fEPSP.
Umieść kolejną elektrodę rejestrującą w warstwie piramidalnej, aby zarejestrować wzrost populacji. Gdy wszystkie elektrody dotkną warstwy, przeprowadź stymulację testową, aby upewnić się, że w obu wejściach można uzyskać odpowiedni sygnał EPSP w polu.
Po uzyskaniu odpowiedniego sygnału fEPSP ostrożnie opuść elektrody o około 200 mikronów dalej za pomocą precyzyjnych pokręteł ruchowych manipulatorów, a następnie odczekaj 20 minut, aż plasterek się zregeneruje. Następnie określ relację wejścia/wyjścia, mierząc nachylenie pola EPSP w zakresie natężeń prądu od 20 mikroamperów do 100 mikroamperów.
Następnie, dla każdego wejścia, ustaw intensywność stymulacji, która wywołuje 40% maksymalnego nachylenia pola EPSP jako stałe bodźce przez cały eksperyment. Po 15 do 20 minutach rozpocznij nagrywanie linii bazowej.
Zapisz stabilną linię bazową co najmniej 30 do 60 minut przed indukcją LTP/LTD.
Related Videos
09:51
Related Videos
11.9K Views
10:24
Related Videos
14.9K Views
10:52
Related Videos
13.3K Views