-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Ocena liczebności synaps za pomocą elektrofizjologii patch-clamp całkowych
Ocena liczebności synaps za pomocą elektrofizjologii patch-clamp całkowych
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Evaluation of Synaptic Multiplicity Using Whole-cell Patch-clamp Electrophysiology

Ocena liczebności synaps za pomocą elektrofizjologii patch-clamp całkowych

Full Text
13,773 Views
10:52 min
April 23, 2019

DOI: 10.3791/59461-v

Julia K. Sunstrum1, Wataru Inoue1,2,3

1Neuroscience Program, Schulich School of Medicine and Dentistry,University of Western Ontario, 2Robarts Research Institute, Schulich School of Medicine and Dentistry,University of Western Ontario, 3Department of Physiology and Pharmacology, Schulich School of Medicine and Dentistry,University of Western Ontario

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for evaluating functional synaptic multiplicity in neurons using whole-cell patch clamp electrophysiology on acute brain slices. The approach allows researchers to estimate synaptic multiplicity across various species and brain areas, emphasizing the importance of obtaining high-quality recordings.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Electrophysiology
  • Synaptic mechanisms

Background

  • Understanding synaptic multiplicity is essential for deciphering neuronal communication.
  • Previous experiments have highlighted the complexity of studying synaptic contacts.
  • A reliable method is needed for gross estimation of synaptic multiplicity in various models.
  • This protocol utilizes whole-cell patch clamp techniques to provide insight into synaptic dynamics.

Purpose of Study

  • To develop a straightforward protocol for estimating synaptic multiplicity.
  • To facilitate the understanding of neurotransmitter release mechanisms.
  • To provide a method adaptable to different brain areas and species.

Methods Used

  • Whole-cell patch clamp electrophysiology on acute brain slices.
  • The model includes neuronal pairs across various brain regions.
  • Experiments include blocking action potentials and calcium-dependent vesicular release to assess multiplicity.
  • Critical procedures include maintaining stable access resistance and temperature controls during recordings.
  • Data analysis involves statistical comparisons of excitatory postsynaptic currents (EPSCs) under varying conditions.

Main Results

  • Identified methods to estimate synaptic multiplicity through changes in EPSC amplitude.
  • Demonstrated that interference with vesicular release alters postsynaptic current responses, confirming synaptic multiplicity.
  • Addressed multivesicular release implications for synaptic effectiveness and neurotransmitter concentration.
  • Validated the protocol across different experimental conditions, providing robust data on synaptic dynamics.

Conclusions

  • The study establishes a reliable protocol for assessing synaptic multiplicity in neuron pairs.
  • Findings enhance the understanding of synaptic transmission and its underlying mechanisms.
  • This method can be utilized in various neurobiological contexts to study synaptic behavior and plasticity.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using whole-cell patch clamp electrophysiology?
Whole-cell patch clamp provides detailed insights into neuronal excitability and synaptic responses, allowing for high-resolution data collection.
How is synaptic multiplicity assessed in this study?
Synaptic multiplicity is estimated by analyzing changes in the amplitude of spontaneous EPSCs in response to pharmacological interventions.
What types of data outcomes does the method yield?
The method yields electrophysiological data, specifically measurements of excitatory postsynaptic currents and their amplitudes under various conditions.
Can the protocol be adapted for different species?
Yes, the protocol is designed for versatility and can be applied to various species and brain regions for investigating synaptic dynamics.
What are some limitations to consider when using this method?
Challenges may arise in achieving stable access resistance and ensuring the quality of cell recordings, which are critical for accurate data interpretation.
How does the study contribute to understanding synaptic mechanisms?
By establishing a protocol to investigate synaptic multiplicity, the study advances knowledge on synaptic transmission and neuronal communication.

Tutaj prezentujemy protokół oceny funkcjonalnej wielości synaps za pomocą elektrofizjologii klamrów całokomórkowych w ostrych wycinkach mózgu.

W mózgu para neuronów często tworzy wiele kontaktów synaptycznych, co nazywa się wielością synaptyczną. Jednak precyzyjne badanie wielości synaps wymaga trudnych technicznie eksperymentów. Protokół ten opisuje prostą metodę ogólnego szacowania liczebności synaps przy użyciu elektrofizjologii klamrów krosowych całych komórek.

Metodę tę można zastosować do dowolnego gatunku i obszaru mózgu w celu zbadania wielości synaptycznej. Metoda ta wymaga podstawowych umiejętności w zakresie elektrofizjologii klamrów krosowych całych komórek. Uzyskanie wysokiej jakości nagrań o niskiej i stabilnej rezystancji dostępu ma kluczowe znaczenie dla dokładnej interpretacji danych.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Mnogość synaptyczna Patch-clamp całokomórkowy Elektrofizjologia Kontakty neuronów Pipeta rejestrująca Rezystancja dostępu Zacisk napięciowy Błona komórkowa Uszczelnienie gigaomowe Potencjał czynnościowy Uwalnianie neuroprzekaźników Prąd postsynaptyczny ACSF o niskiej zawartości wapnia EPSC

Related Videos

Elektrofizjologia klamer krosowych całych komórek: metoda badania właściwości elektrycznych neuronów

03:42

Elektrofizjologia klamer krosowych całych komórek: metoda badania właściwości elektrycznych neuronów

Related Videos

6K Views

Badanie pobudliwości neuronów fluorescencyjnych za pomocą klamry krosowej dla całych komórek

03:06

Badanie pobudliwości neuronów fluorescencyjnych za pomocą klamry krosowej dla całych komórek

Related Videos

614 Views

Ustalenie konfiguracji cęgów napięciowych całej komórki dla zapisów elektrofizjologicznych w wycinkach mózgu

02:42

Ustalenie konfiguracji cęgów napięciowych całej komórki dla zapisów elektrofizjologicznych w wycinkach mózgu

Related Videos

801 Views

Zapis klamry krosowej całej komórki w neuronie istoty żelatynowej wycinka rdzenia kręgowego

03:45

Zapis klamry krosowej całej komórki w neuronie istoty żelatynowej wycinka rdzenia kręgowego

Related Videos

721 Views

Wspomagany komputerowo wieloelektrodowy system krosówek

11:01

Wspomagany komputerowo wieloelektrodowy system krosówek

Related Videos

14.6K Views

Nagrania całokomórkowych klamry krosowej z morfologicznie i neurochemicznie zidentyfikowanych interneuronów hipokampa

14:37

Nagrania całokomórkowych klamry krosowej z morfologicznie i neurochemicznie zidentyfikowanych interneuronów hipokampa

Related Videos

25.3K Views

Sparowane nagrania całych komórek w organotypowych wycinkach hipokampa

09:23

Sparowane nagrania całych komórek w organotypowych wycinkach hipokampa

Related Videos

15.5K Views

Elektrofizjologiczna i morfologiczna charakterystyka mikroobwodów neuronalnych w ostrych wycinkach mózgu przy użyciu sparowanych nagrań patch-clamp

10:24

Elektrofizjologiczna i morfologiczna charakterystyka mikroobwodów neuronalnych w ostrych wycinkach mózgu przy użyciu sparowanych nagrań patch-clamp

Related Videos

17.9K Views

Nagrania z użyciem zacisku krosowego całych komórek w wycinkach mózgu

07:23

Nagrania z użyciem zacisku krosowego całych komórek w wycinkach mózgu

Related Videos

62.5K Views

Technika Slice Patch Clamp do analizy plastyczności wywołanej uczeniem się

11:56

Technika Slice Patch Clamp do analizy plastyczności wywołanej uczeniem się

Related Videos

16.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code