-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
Rejestrowanie pobudzających potencjałów postsynaptycznych pola neuronalnego w ostrych wycinkach h...
Rejestrowanie pobudzających potencjałów postsynaptycznych pola neuronalnego w ostrych wycinkach h...
Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Encyclopedia of Experiments Neuroscience
Recording Neuronal Field Excitatory Postsynaptic Potentials in Acute Hippocampal Slices

Rejestrowanie pobudzających potencjałów postsynaptycznych pola neuronalnego w ostrych wycinkach hipokampa

Protocol
1,543 Views
05:26 min
July 8, 2025
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Transcript

Umieść wycinek hipokampa myszy w komorze zanurzeniowej wypełnionej sztucznym płynem mózgowo-rdzeniowym lub aCSF.

Zabezpiecz plasterek siatką przytrzymującą, aby zapobiec przemieszczaniu się.

Stale krąży natleniony aCSF, aby utrzymać żywotność neuronów.

Zainstaluj elektrody odniesienia, aby zapewnić stabilne napięcie odniesienia.

Umieść elektrody stymulacyjne i rejestrujące w jednej linii i równolegle do warstwy piramidalnej CA1 hipokampa.

Zastosuj impulsy elektryczne.

Impulsy te stymulują neurony, powodując otwarcie kanałów jonowych bramkowanych napięciem, umożliwiając przepływ jonów dodatnich i wyzwalając potencjały czynnościowe.

Te potencjały czynnościowe rozchodzą się wzdłuż neuronów i indukują uwalnianie neuroprzekaźników pobudzających do szczeliny synaptycznej.

Neuroprzekaźniki wiążą się ze specyficznymi receptorami na neuronach postsynaptycznych, umożliwiając napływ jonów dodatnich i powodując zmianę potencjału błonowego - pobudzającego potencjału postsynaptycznego lub EPSP.

Elektroda rejestrująca mierzy EPSP na podstawie populacji neuronów w regionie zapisu — polu EPSP.

Namocz na kilka minut mały kawałek papieru do czyszczenia soczewek i nylonową siatkę przymocowaną do platynowego drutu w kształcie litery U w komorze zanurzeniowej. Następnie usuń platynowy drut w kształcie litery U. Wyłącz recykling i połóż plasterek na papierze do czyszczenia obiektywów. Następnie natychmiast umieść siatkę przytrzymującą plasterki na wierzchu plasterka.

Włącz pompę i pozwól plasterkowi zrównoważyć się przez 30 minut bez zanurzania obiektywu w ACSF. W międzyczasie napełnij elektrodę rejestrującą ACSF i zamontuj ją w uchwycie na pipety.

Następnie umieść testowaną elektrodę stymulacji wolframowej z izolacją epoksydową w uchwycie manipulatora, a przewód odniesienia w komorze plastora. Dodaj drugą elektrodę odniesienia do komory i podłącz ją do gniazda odniesienia stopnia głowicy elektrody rejestrującej.

W oprogramowaniu sterującym wzmacniaczem kliknij pole Zero-clamp Mode, a następnie kliknij dwukrotnie pole Output Gain List (Lista wzmocnień wyjściowych). Wybierz przyrost równy 100. Kliknij dwukrotnie pole filtra górnoprzepustowego bessel. Wybierz 3 kiloherce i kliknij dwukrotnie pole listy filtrów dolnoprzepustowych AC, aby wybrać 0,1 herca.

W oprogramowaniu do nagrywania kliknij Acquire Open Protocol. Wybierz protokół, który ma ustawienia pozwalające na stymulację epizodyczną i digitalizację wzmocnionych potencjałów przy 10 do 20 kilohercach przez 50 do 100 milisekund, a który automatycznie uruchamia izolator bodźca 10 milisekund po rozpoczęciu nagrania epizodycznego.

Umieść elektrody stymulacyjne i rejestrujące w linii i równolegle do warstwy piramidalnej. Następnie kliknij Uzyskaj protokół edycji i wybierz kartę Wyzwalacz w wyskakującym okienku. Kliknij pole Trigger Source (Źródło wyzwalaczy) i wybierz Spację jako źródło wyzwalacza. Następnie kliknij przycisk OK i kliknij przycisk Nagraj, aby rozpocząć pobieranie.

W oprogramowaniu izolatora bodźców kliknij pole kontroli napięcia i wprowadź zero. Kliknij przycisk Pobierz. Następnie kliknij okno Oprogramowanie do nagrywania i naciśnij spację. Powtórz ten cykl, wprowadzając sekwencyjnie wartości od 1 000 do 8 000. Skoreluj siłę stymulacji z wartościami nachylenia FEPSP i określ siłę stymulacji wymaganą do uzyskania 40% maksymalnego nachylenia FEPSP. Kliknij pole Kontrola napięcia i wprowadź określoną wartość. Następnie kliknij przycisk Pobierz.

W oprogramowaniu do nagrywania kliknij przycisk Zatrzymaj, a następnie menu Pobierz. Kliknij Edytuj protokół i wybierz zakładkę Wyzwalacz w wyskakującym okienku. Następnie kliknij pole Źródło wyzwalacza i wybierz Wewnętrzny zegar jako źródło wyzwalacza. Kliknij przycisk OK, a następnie przycisk Nagraj, który rozpoczyna automatyczne rejestrowanie potencjałów pola co 60 sekund. Kliknij przycisk Stop po 30 do 60 minutach.

W oprogramowaniu do nagrywania kliknij opcję Acquire Open Protocol (Uzyskaj otwarty protokół) i wybierz ten sam protokół, co nagranie bazowe. Kliknij przycisk OK, a następnie kliknij przycisk Nagraj. Kontynuuj automatyczne uruchamianie nagrań potencjału terenowego przez dwie do czterech godzin. Po zakończeniu kliknij przycisk Zatrzymaj, aby zakończyć nagrywanie.

Related Videos

Stymulacja prądem stałym i wieloelektrodowa rejestracja aktywności podobnej do napadów w przygotowaniu do wycinka mózgu myszy

09:39

Stymulacja prądem stałym i wieloelektrodowa rejestracja aktywności podobnej do napadów w przygotowaniu do wycinka mózgu myszy

Related Videos

11K Views

Rejestracja i modulacja aktywności padaczkowej w wycinkach mózgu gryzoni sprzężonych z układami mikroelektrod

10:24

Rejestracja i modulacja aktywności padaczkowej w wycinkach mózgu gryzoni sprzężonych z układami mikroelektrod

Related Videos

15.3K Views

Badanie długoterminowej plastyczności synaptycznej w międzypłytkowym hipokampie CA1 za pomocą zapisu pola elektrofizjologicznego

14:27

Badanie długoterminowej plastyczności synaptycznej w międzypłytkowym hipokampie CA1 za pomocą zapisu pola elektrofizjologicznego

Related Videos

13.3K Views

Przygotowanie ostrych wycinków hipokampa od szczurów i myszy transgenicznych do badania zmian synaptycznych podczas starzenia się i patologii amyloidu

14:57

Przygotowanie ostrych wycinków hipokampa od szczurów i myszy transgenicznych do badania zmian synaptycznych podczas starzenia się i patologii amyloidu

Related Videos

95.1K Views

Podwójne zapisy elektrofizjologiczne synaptycznych odpowiedzi astroglejowych i neuronalnych w ostrych wycinkach hipokampa

16:38

Podwójne zapisy elektrofizjologiczne synaptycznych odpowiedzi astroglejowych i neuronalnych w ostrych wycinkach hipokampa

Related Videos

27.9K Views

Rejestracja potencjału pola lokalnego w wycinkach kory hipokampowo-śródwęchowej myszy

02:44

Rejestracja potencjału pola lokalnego w wycinkach kory hipokampowo-śródwęchowej myszy

Related Videos

863 Views

Rejestrowanie odpowiedzi synaptycznych CA3-CA1 w wycinku hipokampa szczura

03:10

Rejestrowanie odpowiedzi synaptycznych CA3-CA1 w wycinku hipokampa szczura

Related Videos

715 Views

Ulepszone przygotowanie i konserwacja wycinków myszy z hipokampa w celu uzyskania bardzo stabilnego i powtarzalnego zapisu długotrwałego wzmocnienia

09:39

Ulepszone przygotowanie i konserwacja wycinków myszy z hipokampa w celu uzyskania bardzo stabilnego i powtarzalnego zapisu długotrwałego wzmocnienia

Related Videos

27.6K Views

Izolacja frakcji wzbogaconych jądrami CA1 z wycinków hipokampa w celu zbadania zależnego od aktywności importu jądrowego synaptojądrowych białek przekaźnikowych

10:03

Izolacja frakcji wzbogaconych jądrami CA1 z wycinków hipokampa w celu zbadania zależnego od aktywności importu jądrowego synaptojądrowych białek przekaźnikowych

Related Videos

12.5K Views

Badanie znakowania/przechwytywania synaptycznego i przechwytywania krzyżowego przy użyciu ostrych plastrów hipokampa od gryzoni

11:29

Badanie znakowania/przechwytywania synaptycznego i przechwytywania krzyżowego przy użyciu ostrych plastrów hipokampa od gryzoni

Related Videos

14.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code