7 grudnia 2014
Prezentujemy metodę zastosowania fizjologicznego pola elektrycznego do migrujących, unieśmiertelnionych komórek prostaty w specjalnie wykonanej komorze galwanotaksji. Za pomocą tej metody wykazujemy, że 2 linie nienowotworowych komórek prostaty wykazują różne stopnie kierunkowości migracji w terenie.
Ogólnym celem tej procedury jest wykonanie Galvan Axxis, testu do oceny kierunkowej migracji komórek w przyłożonym polu elektrycznym. Osiąga się to poprzez najpierw zmontowanie, a następnie zasianie w komorze Galvan axxis interesujących nas komórek. W drugim etapie komora jest uszczelniana i przykładane jest pole elektryczne do obrazowania poklatkowego.
W ostatnim kroku śledzona jest prędkość migracji poszczególnych komórek oraz kąt nachylenia względem pola elektrycznego. Ostatecznie podpisz się. Można go użyć do pokazania, jak ogniwa reagują na pole elektryczne i czy migrują kierunkowo do katody.
Główną zaletą tej techniki jest łatwe pobieranie komórek po podaniu Teksasu do analizy wtórnej oraz łatwość, z jaką migracja może być filmowana w dużym powiększeniu i z komórkami znakowanymi fluorescencyjnie. Wizualizacja tej metody ma kluczowe znaczenie, ponieważ etapy montażu komory są trudne do nauczenia się bez demonstracji Aby zmontować dolne komory. Zacznij od przetarcia plastikowej komory galvana axxis dwoma propanolem.
Następnie za pomocą strzykawki nałożyć uszczelniacz silikonowy klasy morskiej wokół okrągłych otworów w dolnej części komory. Ułóż dużą szklankę nakrywkową na szczeliwie i dociśnij ją na miejsce końcem bawełnianego aplikatora, wycierając nadmiar kleju wacikiem. Następnie użyj markera diamentowego, aby wyciąć małą szklankę nakrywkową, aby uzyskać odstępy o wymiarach sześć na 25 milimetrów i odwróć komorę.
Następnie za pomocą strzykawki nałóż dwa paski silikonu, tworząc powierzchnię kanału o wymiarach 10 na 25 milimetrów do mocowania komórek między dwoma okrągłymi otworami w dolnej szybie. Następnie przyklej dwie szklane przestrzenie między okrągłymi otworami, dociskając je nowym bawełnianym aplikatorem i wycierając nadmiar kleju, jak pokazano powyżej. Wypróbuj komorę przez 24 godziny, aż klej silikonowy się utwardzi.
Następnego dnia namocz komorę w wodzie destylowanej na noc, aby usunąć pozostałości kwasu octowego z kleju przed wysiewem komórek do komory. Osuszyć i wytrzeć komory dwoma propanolami, jak właśnie pokazano. Umyj je sterylnym PB S3 razy, a następnie sprawdź przepływ cieczy między dwoma okrągłymi otworami w komorach.
Po upewnieniu się, że komory są w dobrym stanie technicznym, zamknij je w sterylnych naczyniach hodowlanych i umieść komory w temperaturze 37 stopni Celsjusza na 15 minut. Podczas gdy komory są w równowadze, odłącz komórki prostaty od ich naczynia hodowlanego za pomocą pięciu mililitrów trypsyny EDTA w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Po pięciu minutach zneutralizuj reakcję pięcioma mililitrami 10% FBS.
W PBS przenieś oderwane komórki do 15-mililitrowych probówek, a następnie odwiruj przez pięć minut. Przy 200 razy, G, odessać pożywkę, a następnie ponownie zawiesić osad w jednym mililitrze pożywki. Następnie po policzeniu komórek dostosuj stężenie komórek do ośmiu na 10 do czterech komórek na mililitr za pomocą pożywki hodowlanej i nasion.
350 mikrolitrów zawiesiny komórek na każdą komorę. Inkubuj komórki w komorze przez noc w naczyniu hodowlanym z mokrą chusteczką Kim o temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla. Następnego dnia rozpocznij montaż górnych komór, najpierw podgrzewając 10 mililitrów kultury, średnio do 37 stopni Celsjusza dla każdej komory galwanowej AXS.
Podczas nagrzewania się pożywki przenieś komorę Galvan axxis z inkubatora na płytkę grzewczą o temperaturze 37 stopni Celsjusza i przepłucz komorę pożywką hodowlaną. Aby usunąć nieprzyłączone komórki, pozostaw 400 mikrolitrów pożywki w komorze, a następnie użyj strzykawki, aby nałożyć smar wysokopróżniowy na obie szklane przestrzenie. Uszczelnij komorę szkłem nakrywkowym i bawełnianym aplikatorem, a następnie osusz powierzchnię szkła.
Następnie nałóż smar wysokopróżniowy za pomocą strzykawki, aby uszczelnić szczelinę między szkłem nakrywkowym a komorą. A następnie dodaj pożywkę hodowlaną do wewnętrznych zbiorników. Usuń bąbelki i sprawdź przepływ cieczy między zbiornikami.
Aby mostki agarowe przecięły parę dwucalowych rurek PVC, odwróć je, a następnie umieść kawałki w 100-mililitrowej zlewce. Następnie dodaj 200 miligramów agaru Bact Toe do 50-mililitrowej kolby z 10 mililitrami pożywki hodowlanej, aby uzyskać 2% żel agarowy. Po podgrzaniu w kuchence mikrofalowej przez 30 sekund użyj pipety transferowej, aby załadować żel agarowy do plastikowej rurki i pozostaw mostki agarowe w temperaturze pokojowej na 10 minut, aby zestalić agar.
Następnie dodaj dwa mililitry pożywki hodowlanej do zewnętrznych zbiorników komory gal i włóż mostki agarowe do wewnętrznych i zewnętrznych zbiorników pożywki, aby przewodzić prąd w celu wykonania poklatkowego obrazowania migracji. Zacznij od przeniesienia komory Galvana do komory środowiskowej o temperaturze 37 stopni Celsjusza na stoliku mikroskopu, zabezpieczając komorę taśmą i skupiając się na komórkach pod obiektywem 10x. Następnie włóż elektrody Galvan Axxis do zewnętrznych zbiorników z katodą po prawej stronie, zabezpieczając drut i elektrody taśmą.
Następnie włącz skrzynkę zasilającą, aby przyłożyć pole elektryczne do komory i użyj miernika napięcia do pomiaru napięcia wyjściowego w komorze, aby osiągnąć 2,5 V dla komory o długości 25 milimetrów. Teraz wybierz 10 punktów w komorze, aby wygenerować 10 filmów poklatkowych i ustaw warunki akwizycji na 10-minutowe interwały przez dwie godziny. Następnie rozpocznij filmowanie i dostosuj prąd wyjściowy zgodnie z potrzebami, aby utrzymać natężenie pola podczas eksperymentu.
Pod koniec eksperymentu wyjmij komorę ze sceny i utrwal komórki w 95% alkoholu. Następnie otwórz komorę. Szkiełko nakrywkowe można zachować na później.
Barwienie i obrazowanie. Oczyść komorę na przyszłe lata. Aby określić ilościowo Galvan Axxis, obróć filmy poklatkowe, aby zorientować katodę na górze obrazów.
Eksportuj filmy do oprogramowania do śledzenia komórek i ręcznie śledź pozycję XY od 10 do 20 komórek w każdym punkcie czasowym z każdego filmu, odległości migracji i kąty względem kierunku północ-południe, ta sama orientacja pola elektrycznego zostanie obliczona w oprogramowaniu do śledzenia komórek. Na koniec zapisz pomiary i zaimportuj dane do aplikacji bazy danych, aby obliczyć połączone wyniki. W tym reprezentatywnym eksperymencie Galvan Axxis do linii komórek prostaty określono migrację z podobnymi prędkościami w ciągu dwóch godzin.
Jednak kierunkowość pola elektrycznego wynosiła 0,7 plus minus 0,3 dla PRNS jednej jednej linii i 0,2 plus minus 0,8 dla dwóch linii PNT, co wskazuje na istotną różnicę w osi Galvana tych dwóch linii komórkowych, co sugeruje, że ich mechanizmy sygnalizacji komórkowej kierują zróżnicowane odpowiedzi migracyjne na pole elektryczne Po opracowaniu metody Govan Texas. Technika ta pomaga naukowcom w badaniu mechanizmów kierunkowej migracji komórek w polu elektromagnetycznym.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie przedstawia metodę przykładania fizjologicznego pola elektrycznego do migrujących, unieśmielonych komórek prostaty przy użyciu specjalnie skonstruowanej komory do galwanotaksji. Wyniki wskazują, że dwie linie nietwórczych nowotworowo komórek prostaty wykazują różny stopień kierunkowości migracji w odpowiedzi na pole elektryczne.
Ta metoda umożliwia mechanistyczną redukcję ryzyka w analizie fenotypów migracji komórek prostaty poprzez ilościowe określanie odpowiedzi kierunkowych na fizjologiczne pola elektryczne, co wspiera walidację celów w wczesnej fazie odkrywania leków. Specjalistyczna komora do galwanotaksji zapewnia powtarzalny, istotny chorobowo system oceny wewnętrznego zachowania migracyjnego, który może wspomagać strategie identyfikacji związków wiodących poprzez podkreślenie różnic funkcjonalnych między modelami komórkowymi. Takie profilowanie elektrofizjologiczne zwiększa pewność prognostyczną modeli przedklinicznych, łącząc mechanizmy sygnalizacji komórkowej z wynikiem funkcjonalnym pod wpływem kontrolowanych bodźców.
Test galwanotaksji integruje się z kontinuum badawczym – od weryfikacji hipotez po identyfikację związków wiodących – dostarczając odczytów elektrofizjologicznych, które uzupełniają biochemiczne oraz obrazowe kaskady przesiewowe.