-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biochemistry
Różnicowa kalorymetria skaningowa – metoda oceny stabilności termicznej i konformacji antygenu bi...
Różnicowa kalorymetria skaningowa – metoda oceny stabilności termicznej i konformacji antygenu bi...
JoVE Journal
Biochemistry
This content is Free Access.
JoVE Journal Biochemistry
Differential Scanning Calorimetry — A Method for Assessing the Thermal Stability and Conformation of Protein Antigen

Różnicowa kalorymetria skaningowa – metoda oceny stabilności termicznej i konformacji antygenu białkowego

Full Text
40,567 Views
08:13 min
March 4, 2017

DOI: 10.3791/55262-v

Ibrahim B. Durowoju1, Kamaljit S. Bhandal1, Jian Hu1, Bruce Carpick1, Marina Kirkitadze1

1Analytical Research & Development,Sanofi Pasteur Limited

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article discusses the use of differential scanning calorimetry (DSC) to assess the thermal stability and structural conformation of proteins. The technique measures the thermal transition temperature and the energy required to denature proteins, which is crucial for evaluating vaccine formulations.

Key Study Components

Area of Science

  • Biophysics
  • Protein Chemistry
  • Vaccine Development

Background

  • Differential scanning calorimetry measures the molar heat capacity of samples as a function of temperature.
  • This method does not rely on structural helicity or intrinsic fluorophores.
  • It provides direct measurements of thermal transition temperatures and energy required for protein denaturation.
  • DSC can monitor lot-to-lot consistency in biologics manufacturing.

Purpose of Study

  • To assess the thermal stability of protein antigens in vaccine formulations.
  • To evaluate the structural conformation of proteins in an industrial setting.
  • To provide a visual demonstration of the DSC method for new users.

Methods Used

  • Preparation of protein samples and buffers.
  • Use of a differential scanning calorimeter to measure heat capacity.
  • Baseline subtraction during data analysis for accurate results.
  • Assessment of the reversibility of protein unfolding through multiple scans.

Main Results

  • The melting temperature and enthalpy values for native and detoxified states of a toxin were determined.
  • Detoxified toxins showed higher thermal stability compared to their native counterparts.
  • Structural changes in the tertiary structure of the toxin were indicated by the DSC results.

Conclusions

  • Differential scanning calorimetry is an effective method for assessing protein stability.
  • The technique can help ensure consistency in biologics manufacturing.
  • Visual demonstrations can enhance understanding of critical experimental steps.

Frequently Asked Questions

What is differential scanning calorimetry?
Differential scanning calorimetry is a technique used to measure the thermal properties of materials, particularly proteins, by assessing heat capacity as a function of temperature.
How does DSC help in vaccine formulation?
DSC helps in vaccine formulation by evaluating the thermal stability of protein antigens, ensuring their efficacy and safety.
What are the advantages of using DSC?
DSC provides direct measurements of thermal transitions without relying on structural features, making it a versatile tool for protein analysis.
What parameters are important in DSC experiments?
Key parameters include sample concentration, temperature settings, and scan rates, which can affect the accuracy of the results.
How can one ensure accurate results in DSC?
Accurate results can be ensured by proper sample preparation, baseline subtraction during analysis, and verifying instrument suitability before measurements.

Różnicowa kalorymetria skaningowa mierzy temperaturę(y) przemiany termicznej i całkowitą energię cieplną potrzebną do denaturacji białka. Uzyskane wyniki służą do oceny stabilności termicznej antygenów białkowych w formulacjach szczepionek.

Ogólnym celem tej procedury jest ocena stabilności termicznej i konformacji strukturalnej białek w warunkach przemysłowych przy użyciu różnicowej kalorymetrii skaningowej. Różnicowa kalorymetria skaningowa mierzy molową pojemność cieplną próbek w funkcji temperatury i jest z powodzeniem stosowana do oceny stabilności termicznej i konformacji strukturalnej białek. Ta stosunkowo prosta procedura nie zależy od helicity strukturalnej ani wewnętrznych fluoroforów, jak ma to miejsce w przypadku innych metod biofizycznych.

Kolejną zaletą tej techniki jest to, że bezpośrednio mierzy temperaturę przemiany termicznej i energię potrzebną do zakłócenia oddziaływania, stabilizując trzeciorzędową strukturę białek. W połączeniu z entuzjazmem rozkładania, temperatura przemiany termicznej może służyć jako użyteczny parametr do monitorowania spójności procesów produkcyjnych dla partii biologicznych. Wizualna demonstracja tej metody może służyć jako interaktywne medium, aby skutecznie pomóc nowym użytkownikom w krytycznych krokach.

Aby rozpocząć, włącz różnicowy kalorymetr skaningowy. Następnie doprowadź azot do systemu. Zwiększy to ciśnienie w komórkach, aby stłumić wrzenie próbek, a także zapobiec tworzeniu się pęcherzyków w podwyższonych temperaturach.

W zależności od materiału, z którego wykonane jest ogniwo, należy dostosować ciśnienie dopływu azotu zgodnie z ciśnieniem zalecanym przez producenta, aby uniknąć uszkodzenia ogniwa. Upewnij się, że wszystkie zbiorniki środka czyszczącego są napełnione do wymaganej objętości. Wymagane środki czyszczące obejmują detergent do mycia celi i wodę do czyszczenia celi po każdym przebiegu próbki.

Ustawić temperaturę w komorze na próbkę na odpowiednią wartość, najlepiej pięć stopni Celsjusza, aby zachować integralność próbki przed eksperymentem. Ważne jest, aby zrównoważyć próbkę z buforem, aby upewnić się, że jedyną różnicą między roztworami jest białko. Dlatego zaobserwowaną różnicę w pojemności cieplnej można prawidłowo przypisać białku.

Oznaczyć stężenie próbki białka przy użyciu odpowiedniej metody oznaczania stężenia białka, takiej jak metoda Lowry'ego. W przypadku instrumentu używanego w tym protokole preferowany zakres roboczy wynosi od 0,5 do jednego miligrama białka na mililitr. Dializuj próbkę względem buforu, który będzie używany jako odniesienie w eksperymencie.

Odgazuj próbkę i bufor referencyjny w próżni, aby pozbyć się mikropęcherzyków, które mogą powodować nieścisłość objętości. Pracując w komorze hermetyzacji z przepływem laminarnym, użyj mikropipety i sterylnych końcówek, aby załadować próbki do odpowiedniego bufora parami do 96-dołkowych płytek. Napełnij pierwsze dwie pary studzienek buforem, aby wykonać skanowanie bufora buforowego w celu sprawdzenia przydatności przyrządu przed pomiarem próbki.

Napełnij dwie ostatnie pary studzienek wodą, aby skan wodny oczyścił komórki. Następnie przykryj płytkę 96-dołkową folią uszczelniającą. Upewnij się, że studzienki są odpowiednio uszczelnione przed wyjęciem płytki z szafy bezpieczeństwa biologicznego, aby uniknąć zanieczyszczenia próbki.

Na koniec umieścić płytkę w komorze na próbkę we właściwej orientacji. Korzystając z oprogramowania do akwizycji, wprowadź informacje o próbce w kolejności, w jakiej została załadowana płytka. Wprowadź stężenia białka, jeśli są dostępne.

W przeciwnym razie należy wprowadzić stężenie do oprogramowania analitycznego przed analizą danych. Wybierz opcję, która zapewnia czyszczenie celi detergentem przed każdym skanowaniem próbki. Po czyszczeniu należy wykonać wiele etapów płukania wodą, aby upewnić się, że w komórkach nie pozostały żadne pozostałości detergentu.

Ustaw temperaturę początkową eksperymentu na 20 stopni Celsjusza, która może się różnić w zależności od próbki. W przypadku znanych białek można zastosować z góry określoną temperaturę początkową, podczas gdy niższą temperaturę początkową można zastosować do nieznanych próbek. Następnie ustaw końcową temperaturę eksperymentu.

Temperatura końcowa może się również różnić w zależności od wcześniejszej wiedzy o próbce. Następnie ustaw szybkość skanowania eksperymentu. Zaleca się skanowanie nieznanych próbek z różnymi szybkościami skanowania, aby ocenić kinetykę rozwijania.

Skonfiguruj oprogramowanie do akwizycji, aby ponownie zeskanować próbki w celu zbadania odwracalności przemiany termicznej. Rozwijanie białka uważa się za odwracalne, jeśli entalpia uzyskana dla drugiego skanowania wynosi co najmniej 80% wartości entalpii z pierwszego skanowania. Ustaw termostat po eksperymencie na 10 stopni Celsjusza, aby zachować integralność celi kalorymetrycznej.

Przed jego wykonaniem sprawdź, czy parametry konfiguracji eksperymentu są poprawne. Jeśli wszystko jest na swoim miejscu, rozpocznij eksperyment. Po zakończeniu eksperymentu przeprowadź analizę danych zgodnie z opisem w protokole tekstowym.

Na potrzeby analizy odejmowanie linii bazowej jest wykonywane ręcznie. Konsekwencja na tym etapie ma kluczowe znaczenie dla uzyskania porównywalnych wyników. Pokazano tutaj reprezentatywne surowe dane z serii eksperymentalnej, w tym skany bufora i wody.

Analizowane próbki to toksyny w stanie naturalnym i detoksykowanym. Skany próbek są przetwarzane oddzielnie w celu wyprowadzenia temperatury topnienia i wartości entalpii dla każdej próbki. Dla stanu rodzimego temperatura topnienia wynosi 55,55 stopni Celsjusza, a entalpia toksyny wynosi 3,157 razy 10 do jednej piątej kalorii na mol.

I odwrotnie, temperatura topnienia toksyny w stanie detoksykacji wynosi 81,21 stopni Celsjusza, a entalpia wynosi 3,656 razy 10 do piątej kalorii na mol. Nałożenie przetworzonych danych toksyny w jej stanie natywnym i detoksykacji pokazuje, że odtruta próbka jest bardziej stabilna termicznie niż jej stan natywny zgodnie z wartościami temperatury topnienia. Wskazuje również, że proces detoksykacji wprowadza zmiany strukturalne w trzeciorzędowej strukturze toksyny.

Podczas wykonywania tej procedury należy pamiętać o zapewnieniu odpowiedniego zapasu detergentu i wody, aby zapobiec zanieczyszczeniu krzyżowemu ogniwa i strzykawki, ponieważ ich przejrzystość ma kluczowe znaczenie dla dokładnych wyników. Po obejrzeniu tego filmu będziesz miał dobrą wiedzę na temat różnicowej kalorymetrii skaningowej jako metody oceny stabilności termicznej i konformacji białek. Będziesz również w stanie dokonać znaczących odliczeń z wynikowych przebiegów termicznych.

Zgodnie z tą procedurą można wykonać inne metody, takie jak dichroizm kołowy, aby odpowiedzieć na dodatkowe pytania dotyczące zmian w strukturach drugorzędowych podczas rozwijania. Dane zebrane dla szeregu partii tego samego produktu wykorzystano do stworzenia empirycznych punktów odniesienia w celu zbadania wpływu zmian w procesie, recepturze i warunkach przechowywania na konformację strukturalną antygenów białkowych do produkcji szczepionek.

Explore More Videos

Słowa kluczowe: Różnicowa kalorymetria skaningowa stabilność termiczna antygen białkowy konformacja strukturalna molowa pojemność cieplna temperatura przemiany termicznej entalpia rozkładania spójność między partiami biologiki stężenie białka metoda Lowry'ego równowaga buforowa

Related Videos

Różnicowa kalorymetria skaningowa do badania interakcji DNA aptamer-termolabilny ligand

07:16

Różnicowa kalorymetria skaningowa do badania interakcji DNA aptamer-termolabilny ligand

Related Videos

650 Views

Projektowanie materiałów ze stopów białek jedwabiu i jedwabiu do zastosowań biomedycznych

11:14

Projektowanie materiałów ze stopów białek jedwabiu i jedwabiu do zastosowań biomedycznych

Related Videos

19K Views

Oznaczanie oddziaływań białko-ligand za pomocą różnicowej fluorymetrii skaningowej

13:26

Oznaczanie oddziaływań białko-ligand za pomocą różnicowej fluorymetrii skaningowej

Related Videos

63K Views

Pomiar biomolekularnych profili DSC za pomocą termolabilnych ligandów w celu szybkiego scharakteryzowania interakcji fałdowania i wiązania

09:15

Pomiar biomolekularnych profili DSC za pomocą termolabilnych ligandów w celu szybkiego scharakteryzowania interakcji fałdowania i wiązania

Related Videos

8.8K Views

Jak ustabilizować białko: badania przesiewowe stabilności do testów przesunięcia termicznego i nanoróżnicowej fluorymetrii skaningowej w projekcie Virus-X

07:22

Jak ustabilizować białko: badania przesiewowe stabilności do testów przesunięcia termicznego i nanoróżnicowej fluorymetrii skaningowej w projekcie Virus-X

Related Videos

29.4K Views

Nanoróżnicowa fluorymetria skaningowa do badań przesiewowych w wykrywaniu odprowadzeń na podstawie fragmentów

06:26

Nanoróżnicowa fluorymetria skaningowa do badań przesiewowych w wykrywaniu odprowadzeń na podstawie fragmentów

Related Videos

5.6K Views

Wykrywanie interakcji białko-baldaszek CD40 za pomocą różnicowej fluorescencji skaningowej

05:30

Wykrywanie interakcji białko-baldaszek CD40 za pomocą różnicowej fluorescencji skaningowej

Related Videos

935 Views

Wykorzystanie testu przesunięcia termicznego do badania wiązania substratu z selenoproteiną O

03:09

Wykorzystanie testu przesunięcia termicznego do badania wiązania substratu z selenoproteiną O

Related Videos

1.5K Views

Metoda identyfikacji małocząsteczkowych inhibitorów oddziaływania białko-białko między HCN1 i TRIP8b

10:20

Metoda identyfikacji małocząsteczkowych inhibitorów oddziaływania białko-białko między HCN1 i TRIP8b

Related Videos

9K Views

Szybka metoda sondowania laserowego umożliwia nieinwazyjne i bezdotykowe określanie właściwości termicznych liści

08:41

Szybka metoda sondowania laserowego umożliwia nieinwazyjne i bezdotykowe określanie właściwości termicznych liści

Related Videos

7.7K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code