3 października 2017
Zwierzęce modele miażdżycy są niezbędne do zrozumienia mechanizmu i zbadania nowszych metod zapobiegania rozwojowi lub pękaniu płytki nazębnej, głównej przyczynie zgonów w uprzemysłowionym świecie. Protokół ten wykorzystuje połączenie uszkodzenia balonu i diety bogatej w cholesterol w celu wywołania blaszek miażdżycowych w tętnicy biodrowej królika.
Ogólnym celem tej procedury jest wywołanie tworzenia się blaszek miażdżycowych u królików poprzez chirurgiczne uszkodzenie śródbłonka ich lewych tętnic biodrowych oraz podawanie im diety aterogennej. Samowystarczalne uszkodzenie u królików jest często przeprowadzane w aorcie w celu badania składu blaszki miażdżycowej. Jednakże tętnica biodrowa jest bardzo podobna do ludzkiej tętnicy wieńcowej, co czyni ją atrakcyjnym miejscem do modelowania blaszek miażdżycowych.
Jednorodność zmian w obrębie tkanki mięśniowej, aktywność czynników tkankowych oka oraz spójne wymiary naczyń w tętnicy biodrowej wewnętrznej królika są porównywalne z parametrami tętnicy wieńcowej człowieka. W konsekwencji umożliwia to ocenę komercyjnie produkowanych urządzeń pod kątem punktów końcowych morfometrycznych i angiograficznych. Procedurę zaprezentuje Aurelien Frobert, współpracownik z mojego laboratorium.
Należy upewnić się, że wszystkie narzędzia chirurgiczne zostały wysterylizowane, na przykład za pomocą sterylizatora koralikowego. Następnie należy przygotować i sprawdzić dwa zestawy cewników balonowych. Do każdego z nich należy przymocować strzykawkę 1 mL z końcówką Luer-lock wypełnioną solą fizjologiczną, a następnie sprawdzić obecność pęcherzyków powietrza za pomocą mechanizmu pompowania balonu.
Następnie ustaw temperaturę podkładki termicznej na platformie chirurgicznej na 37 °C. Potem zważ królika. Następnie podaj zastrzyk buprenorfiny i znieczul królika, stosując 5% isofluran z przepływem pięciu litrów na minutę przez 10 do 15 minut.
Teraz należy umieścić znieczulonego królika na macie grzewczej na platformie chirurgicznej. Należy podłączyć czujniki do monitorowania temperatury i oddychania królika oraz do rejestracji elektrokardiogramów. Następnie należy założyć maskę twarzową w celu podawania 4% isofluranu z przepływem 2,5 litrów na minutę.
Następnie potwierdź odpowiedni poziom znieczulenia, sprawdzając zanik odruchu wymiotnego i rogówkowego. Wskaźnikiem głębokiej anestezji jest również ogólne rozluźnienie napięcia mięśniowego. W kolejnym kroku nanieś maść antybiotykową do obu oczu.
Następnie, za pomocą maszynki do strzyżenia zwierząt, usuń owłosienie z obszaru brzusznego tuż poniżej stawów kolanowych. Po tym usuń luźną sierść i oczyść odsłoniętą skórę, wykonując naprzemiennie trzy przemycia 70% ethanol oraz betadyną, a następnie odizoluj zwierzę sterylnymi obłożeniami, pozostawiając odsłoniętą jedynie kończynę dolną. Aby rozpocząć zabieg chirurgiczny, zlokalizuj tętnicę odpiszczelową i wykonaj nacięcie o długości 1,5 centymetra.
Następnie, używając małych zakrzywionych pęsety, ostrożnie odsłoń niewielki odcinek tętnicy saphénous. Należy zachować ostrożność, aby nie uszkodzić żyły udowej ani nerwu udowego. Podczas tego odsłaniania bardzo ważne jest dokładne oczyszczenie tętnicy.
Następnie umieść dwie luźne pętle ligatury pod tętnicą odpiszczelową i zawiąż jedną pętlę ligatury w pobliżu dystalnego końca tętnicy. Następnie umieść mikro clamp naczyniowy wzdłuż tętnicy powyżej ligatury i zamknij clamp, aby zatrzymać przepływ krwi. Natychmiast nanieś kroplę papaweryny, aby rozszerzyć tętnicę i zapobiec skurczom naczyń.
Następnie, używając ligatury, unieś tętnicę odpiszczelową i wykonaj niewielkie nacięcie tętnicy (arteriotomię) za pomocą igły 24 G. Następnie unieś brzegi nacięcia i powoli wprowadź zgłębnik do żył lub igłę prowadzącą do światła tętnicy. Teraz ostrożnie wprowadź cewnik do embolektomii tętniczej do tętnicy odpiszczelowej.
Postępuj delikatnie, aby uniknąć powstania pęknięć. Następnie wyjmij zgłębnik do żyły i zwolnij zacisk mikronaczyniowy na tętnicy. Aby wywołać uraz, najpierw wprowadź cewnik balonowy do trzeciej kreski.
Powinno to umieścić cewnik około dwóch do pięciu centymetrów powyżej rozwidlenia tętnic biodrowych. Następnie należy napompować balon 0,1 mililitra soli fizjologicznej. Teraz należy zacisnąć cewnik i cofnąć go o sześć centymetrów, obracając go w celu uszkodzenia tkanki.
Po wycofaniu, spuść powietrze z balonu. Aby zapewnić całkowite rozszerzenie śródbłonka, powtórz ten proces jeszcze dwukrotnie. Następnie usuń cewnik i niezwłocznie zawiąż pętlę ligatury tuż powyżej miejsca arteriotomii, aby zatamować krwawienie.
Następnie należy zastosować odpowiedni środek antyseptyczny wokół otworu rany i usunąć skrzepy krwi za pomocą gazika. Na koniec zamknąć nacięcie skóry i zdezynfekować miejsce operacyjne roztworem powidonu z jodem. Następnie powtórzyć całą procedurę chirurgiczną na przeciwległej tętnicy biodrowej, używając drugiego cewnika.
Po zabiegu w pierwszej kolejności należy oczyścić boki królika z maści abtonicznej. Następnie należy podać sulfadoksynę i trimetoprim. Po tym królika wraz z podkładką pod głowę należy przenieść do czystej klatki pooperacyjnej, zakładając plaster monitorujący i klipsy.
Gdy zwierzę odzyska zdolność do pionizacji i zacznie się poruszać, należy przenieść je z powrotem do klatki macierzystej. W celu uśmierzenia bólu należy podać buprenorfinę. Następnie należy rozpocząć karmienie zwierzęcia dietą aterogenną przez wymagany czas.
Aby pobrać wczesny cienki len, od dwóch do czterech tygodni po zabiegu, należy najpierw zznieczulić królika, a następnie poddać go eutanazji poprzez nacięcie międzysercowe. Następnie należy otworzyć jamę brzuszną i odsłonić przestrzeń zaotrzewnową. Potem należy odnaleźć aortę w kierunku rozwidlenia biodrowego i podwiązać ją powyżej rozwidlenia.
Następnie należy ostrożnie usunąć otaczające tkanki i wyizolować obie tętnice biodrowe. Teraz należy wypreparować obie tętnice i zanurzyć je w lodowatym PBS. Następnie, używając pęsety, należy usunąć skrzepy i podzielić każdą tętnicę na 46 segmentów.
Następnie niezwłocznie osadź segmenty w formie zawierającej związek OCT i zamroź tkanki gwałtownie w ciekłym azocie. Przechowuj tkanki w temperaturze -80 °C, a następnie zabarw przekroje o grubości 5 µm zgodnie ze standardową metodologią. Uszkodzenie balonowe tętnic biodrowych zostało przeprowadzone pomyślnie i bez powikłań w czasie krótszym niż godzina.
Króliki powróciły do pełnej sprawności w ciągu jednej godziny i/lub wydawały się zdrowe, bez znaczącej utraty masy ciała. Nie wystąpiły żadne powikłania pooperacyjne. Po czterech tygodniach diety aterogennej u wszystkich królików stwierdzono hipercholesterolemię.
Połączenie urazu balonowego i diety cholesterolowej doprowadziło do zmian strukturalnych w ścianie naczynia, co w ciągu dwóch tygodni skutkowało rozwojem blaszek miażdżycowych. Porównano tętnice biodrowe nieuszkodzone i uszkodzone balonowo, wyizolowane z tego samego zwierzęcia. Blaszki charakteryzowały się infiltracją lipidów, a także migracją i proliferacją komórek mięśni gładkich.
Len terus xuyên rosnąć w uszkodzonych naczyniach, podczas gdy rozmiar światła naczynia nadal się zmniejszał. Wynikowe zmiany były bardzo wyraźne po czterech tygodniach. Po dwóch i czterech tygodniach kwantyfikacja morfometryczna wykazała zwiększoną grubość kompleksu intima-media, zwiększoną powierzchnię blaszki miażdżycowej, zmniejszoną powierzchnię światła naczynia, a ostatecznie zwiększoną akumulację lipidów.
Barwienie przeciwciałem przeciwko alfa-aktynie mięśni gładkich reaguje z aktyną mięśniową, identyfikując w ten sposób komórki mięśni gładkich naczyń. Z kolei barwienie przeciwciałem monoklonalnym CD11 ujawnia cytoplazmę makrofagów. Razem oba barwienia pokazują stopień, w jakim komórki mięśni gładkich oraz makrofagi proliferują w blaszkę miażdżycową w uszkodzonych naczyniach.
Po obejrzeniu tego filmu powinni Państwo posiadać odpowiednią wiedzę z zakresu bezpieczeństwa oraz być w stanie bez trudności przeprowadzić wywołanie urazu gwałtownego w tętnicach biodrowych królika. Uraz ten, w połączeniu z dietą aterogenną, prowadzi do jednorodnego w czasie rozwoju blaszek miażdżycowych w tętnicach biodrowych.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół opisuje metodę indukowania blaszek miażdżycowych u królików poprzez chirurgiczne uszkodzenie śródbłonka ich lewej tętnicy biodrowej oraz podawanie diety aterogennej. Wybór tętnicy biodrowej wynika z jej podobieństwa do ludzkiej tętnicy wieńcowej, co czyni ją odpowiednim modelem do badania rozwoju blaszek miażdżycowych.
Model uszkodzenia balonowego tętnicy żylnej królika przyspiesza rozwój blaszki miażdżycowej, umożliwiając szybką ocenę interwencji terapeutycznych w ciągu dwóch tygodni. Podejście to wspiera walidację celów i ograniczanie ryzyka mechanistycznego w procesie odkrywania leków sercowo-naczyniowych, zapewniając powtarzalny, istotny chorobowo system, który naśladuje ludzką patologię tętnic wieńcowych. Model ten zwiększa pewność prognostyczną w badaniach przedklinicznych, dostarczając mierzalnych punktów końcowych morfometrycznych i angiograficznych do oceny skuteczności i bezpieczeństwa leków.
Model ten wpisuje się w kontinuum odkryć w dziedzinie układu sercowo-naczyniowego, wspierając proces od wczesnej walidacji celu po przedkliniczną ocenę skuteczności, dzięki zapewnieniu szybkiego i mierzalnego modelu miażdżycy.