Name: Synteza wolframianu sodu i mikrokapsułek molibdenianu sodu poprzez bakteryjne wydalanie minerałów (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-30T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 53 s
Description: Poznaj metodę syntezy mikrokapsułek wolframianu sodu z użyciem bakterii Gram-ujemnych. Ta ekologiczna technika umożliwia masową produkcję pustych struktur sferycznych z materiałów tlenkowych w badaniach bionanotechnologicznych.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ta praca jest wspierana przez Ministerstwo Nauki i Technologii, Tajwan, Republika Chińska, w ramach grantu o numerze MOST 105-2221-E-011-008, a także przez Advanced-Connectek Inc., Taipei, Taiwan, ROC pod numerem kontraktu RD Ref. No. 6749 i Dept. Ref. No. 011 przez Graduate Institute of Electro-Optical Engineering, National Taiwan University of Science and Technology.

Uwaga: Do przeprowadzenia eksperymentu używaj rękawiczek lateksowych, okularów ochronnych i fartucha laboratoryjnego. Za każdym razem, gdy korzystasz z szafy bezpieczeństwa biologicznego, włącz wentylator szafki i utrzymuj drzwi szafy do połowy zamknięte.
1. Przygotowanie szklanych koralików
<ol>
	<li>Umieść 100 szklanych koralików o średnicy 3 mm w butelce laboratoryjnej o pojemności 100 ml, a następnie szczelnie ją zakorkuj.</li>
	<li>Zawartość należy sterylizować w autoklawie w temperaturze 120 °C przez 10 min.</li>
	<li>Pozostaw butelkę do ostygnięcia do temperatury pokojowej, a następnie umieść ją w szafie bezpieczeństwa biologicznego.</li>
</ol>
2. Przygotowanie bulionu lizogenicznego (LB)
<ol>
	<li>Rozpuść 8 g proszku bulionu LB-Lennox w butelce laboratoryjnej o pojemności 500 ml z 400 ml wody.</li>
	<li>Mieszaj zawartość za pomocą mieszadła magnetycznego z PTFE przez 20 minut, a następnie szczelnie zakrępuj.</li>
	<li>Zawartość należy sterylizować w autoklawie w temperaturze 120 °C przez 10 min.</li>
	<li>Pozostaw roztwór do ostygnięcia do temperatury pokojowej i umieść go w komorze bezpieczeństwa biologicznego.</li>
	<li>Za pomocą pipety przelej bulion na osiem 15-mililitrowych probówek wirówkowych w komorze bezpieczeństwa biologicznego (każda po 12,5 ml).</li>
	<li>Pozostałą ilość bulionu rozmieścić w trzech butelkach laboratoryjnych o pojemności 100 ml w komorze bezpieczeństwa biologicznego (każda o pojemności 100 ml każda). Szczelnie zakręć trzy butelki. Przechowuj je w komorze bezpieczeństwa biologicznego.</li>
</ol>
3. Kultura glonów Shewanella
<ol>
	<li>Użyj głęboko zamrożonego szczepu kriokonserwowanego.</li>
	<li>W komorze bezpieczeństwa biologicznego za pomocą szpatułki ze stali nierdzewnej pobrać 1 ml zamrożonego materiału z zamrożonej probówki i umieścić go w probówce wirówkowej przygotowanej w kroku 3.5.</li>
	<li>Inkubować kultury przez 24 godziny w inkubatorze o temperaturze 37 °C.</li>
</ol>
4. Przygotowanie szalek Petriego LB-Lennox (rosół z agarem)
<ol>
	<li>Rozpuść dwie tabletki LB-Lennox (bulion z agarem) w 100 ml butelce laboratoryjnej ze 100 ml wody.</li>
	<li>Mieszaj zawartość za pomocą mieszadła magnetycznego z PTFE przez 20 minut, a następnie szczelnie przykryj.</li>
	<li>Zawartość należy sterylizować w autoklawie w temperaturze 120 °C przez 10 min.</li>
	<li>W komorze bezpieczeństwa biologicznego ręcznie rozatrakuj 100 ml roztworu na 4 szalki Petriego, upewniając się, że każda z nich otrzyma ~25 ml. Pozostaw roztwór do ostygnięcia do temperatury pokojowej.</li>
</ol>
5. Przygotowanie bakterii monoklonalnych
<ol>
	<li>W komorze bezpieczeństwa biologicznego oznacz trzy butelki przygotowane odpowiednio w kroku 2.6, #1, #2 i #3.</li>
	<li>Odpipetować 0,1 ml powstałej zawiesiny bakteryjnej w kroku 3.3 do butelki #1. Zakręć butelkę i obracaj nią ręcznie przez 1 minutę, aby uzyskać jednorodny roztwór.</li>
	<li>Odpipetować 0,1 ml powstałego płynu bakteryjnego w kroku 5.2 do butelki #2. Zakręć butelkę i obracaj nią ręcznie przez 1 minutę, aby uzyskać jednorodny roztwór.</li>
	<li>Odpipetować 0,1 ml powstałego płynu bakteryjnego w kroku 5.3 do butelki #3. Zakręć butelkę i potrząsaj nią ręcznie przez 1 minutę, aby uzyskać jednorodny roztwór.</li>
	<li>Odpipetować płyn z butelki #3 do 4 szalek Petriego przygotowanych w kroku 4.4, używając objętości 0,02 ml każda.</li>
	<li>Umieść szklane koraliki przygotowane w kroku 1.3 do 4 używanych szalek Petriego, po 4 koraliki w każdym naczyniu.</li>
	<li>Zamknij pokrywki szalek Petriego i potrząsaj nimi ręcznie przez 1 minutę.</li>
	<li>Odwrócić szalki Petriego do góry nogami i inkubować w inkubatorze o temperaturze 37 °C przez 24 godziny.</li>
</ol>
6. Namnażanie bakterii monoklonalnych
<ol>
	<li>Pobierz 7 probówek przygotowanych w kroku 2.5.</li>
	<li>Za pomocą szpatułki ze stali nierdzewnej należy wybrać powstałe bakterie monoklonalne z 4 szalek Petriego przygotowanych w kroku 5.8 i umieścić je osobno w 7 probówkach.</li>
	<li>Pozostawić 7 probówek w inkubatorze o temperaturze 37 °C na 24 godziny.</li>
	<li>Wybierz ten z największym rozproszeniem światła za pomocą wizualnej metody kolorymetrycznej.</li>
</ol>
7. Przygotowanie bulionu LB-Lennox z glukozą i solą
<ol>
	<li>Wlej 10 g bulionu LB-Lennox, 10 g NaCl i 10 g glukozy do butelki laboratoryjnej o pojemności 500 ml. Dodaj wodę, aż objętość osiągnie 450 ml.</li>
	<li>Mieszaj zawartość za pomocą mieszadła magnetycznego z PTFE przez 20 minut.</li>
	<li>Zawartość należy sterylizować w autoklawie w temperaturze 120 °C przez 10 min.</li>
</ol>
8. Przygotowanie wolframianu sodu
<ol>
	<li>Umieść 16,5 g wolframianu sodu Na2WO4,2H 2O w 100 ml butelce laboratoryjnej za pomocą szpatułki ze stali nierdzewnej. Dodaj wodę, aż objętość osiągnie 50 ml.</li>
	<li>Mieszaj zawartość za pomocą mieszadła magnetycznego z PTFE przez 20 minut.</li>
	<li>Zawartość należy sterylizować w autoklawie w temperaturze 120 °C przez 10 min.</li>
	<li>W komorze bezpieczeństwa biologicznego należy pobrać filtrat przez próżniowy filtr z włókna szklanego o porach 1 μm.</li>
</ol>
9. Przygotowanie LB z glukozą, solą i wolframianem sodu
<ol>
	<li>W komorze bezpieczeństwa biologicznego wlać ręcznie filtrat uzyskany w kroku 8.4 do roztworu z glukozą i solą przygotowanego w kroku 7.3.</li>
	<li>W komorze bezpieczeństwa biologicznego porcjować pipetą 500 ml otrzymanego roztworu z kroku 9.1 do probówek wirówkowych o pojemności 10 x 50 ml.</li>
</ol>
10. Hodowla bakterii
<ol>
	<li>Do komory bezpieczeństwa biologicznego pobrać płyn przygotowany w kroku 6.4 i przelać go pipetą do 10 probówek przygotowanych w kroku 9.2, przy czym każda probówka otrzymuje 0,05 ml.</li>
	<li>Inkubować 10 probówek w inkubatorze o temperaturze 37 °C przez 120 godzin.</li>
</ol>
11. Zbiory minerałów BME
<ol>
	<li>Ultradźwięki każdej z 10 probówek w kroku 9.2 przy 20 kHz z mocą 150 W przez 1 godzinę.</li>
	<li>Odwirować probówki o masie 2,025 x g przez 1 godzinę.</li>
	<li>Usunąć klarowny płyn z probówek za pomocą pipety, dodać wodę, a następnie powtórzyć kroki 11.1 i 11.2 jeszcze raz.</li>
	<li>Usunąć klarowną ciecz z probówek za pomocą pipety, dodać alkohol, a następnie ultrasonizować je przy 20 KHz z 150 W przez 1 godzinę.</li>
	<li>Odwirować probówki o masie 2,025 x g przez 1 godzinę.</li>
	<li>Powtórz kroki 11.4 i 11.5 jeszcze raz</li>
	<li>Zbierz minerały BME, usuwając klarowny płyn z probówek za pomocą pipety, a następnie natychmiast zakryj probówki bez uruchamiania procesu suszenia.</li>
</ol>
12. Temperatura oscylacyjna z Pandoraea sp. i molibdenianem
<ol>
	<li>Hodowla Pandoraea sp. w taki sam sposób, jak w krokach 2, 3, 4, 5 i 6 dla glonów Shewanella. Wynik tego kroku odpowiada wynikowi kroku 6.4.</li>
	<li>Przygotuj bulion LB zarówno z glukozą, jak i solą w taki sam sposób, jak w krokach 7, 8 i 9, z wyjątkiem tego, że 16,5 g wolframianu sodu w kroku 7.1 zastępuje się 12 g molibdenianu sodu, Na2MoO4 · 2H2O. Wynik tego kroku odpowiada wynikowi kroku 9.2.</li>
	<li>Do komory bezpieczeństwa biologicznego pobrać płyn przygotowany w kroku 12.1 i przelać go pipetą do 10 probówek przygotowanych w kroku 12.2, przy czym każda probówka otrzymuje 0,05 ml.</li>
	<li>Inkubować 10 probówek w kroku 12.3 w oscylujących temperaturach przez 120 godzin w obustronnej łaźni wstrząsającej, oscylując temperaturę 5 razy między 25 °C a 37 °C, przy czym każda temperatura trwa 12 godzin.</li>
</ol>

<ol><li>Chertok, B., Moffat, B. A., David, A. E., Yu, F., Bergemann, C., Ross, B. D., Yang, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Iron+Oxide+Nanoparticles+as+a+Drug+Delivery+Vehicle+for+MRI+Monitored+Magnetic+Targeting+of+Brain+Tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Iron Oxide Nanoparticles as a Drug Delivery Vehicle for MRI Monitored Magnetic Targeting of Brain Tumors.</a> Biomaterials. 29 (4), 487(2008).</li>
<li>Mansur, C., Pope, M., Pascucci, M. R., Shivkumar, S. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0272884296000788">Zirconia-Calcium Phosphate Composites for Bone Replacement.</a> Ceramics Int. 24, 11(1998).</li>
<li>Wang, Y., Arandiyan, H., Jason Scott, J., Bagheri, A., Dai, H., Amal, R. <a target="_blank" href="http://pubs.rsc.org/-/content/articlelanding/2015/ta/c6ta10896b">Recent advances in ordered meso/macroporousmetal oxides for heterogeneous catalysis: a review.</a> J. Mater. Chem. A. 5, 8825(2017).</li>
<li>Kleshch, V. I., Rackauskas, S., Nasibulin, A. G., Kauppinen, E. I., Obraztsova, E. D., Obraztsov, A. N. <a target="_blank" href="http://www.ingentaconnect.com/contentone/asp/jno/2012/00000007/00000001/art00007">Field Emission Properties of Metal Oxide Nanowires.</a> J. of Nanoelectron. and Optoelectron. 7, 35(2012).</li>
<li>Ismagilov, R. R., Tuyakova, F. T., Kleshch, V. I., Obraztsova, E. A., Obraztsov, A. N. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/pssc.201510022/abstract">CVD nanographite films covered by ALD metal oxides: structural and field emission properties.</a> Phys. Status Solidi C. 12 (7), 1022(2015).</li>
<li>Mor, G. K., Shankar, K., Paulose, M., Varghese, O. K., Grimes, C. A. <a target="_blank" href="http://pubs.acs.org/doi/abs/10.1021/nl052099j">Use of Highly-Ordered TiO2 Nanotube Arrays in Dye-Sensitized Solar Cells.</a> NANO LETT. 6 (2), 215-218 (2006).</li>
<li>Lee, J. -H. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0925400509003499">Gas sensors using hierarchical and hollow oxide nanostructures: Overview.</a> Sensors and Actuators B. 140, 319(2009).</li>
<li>Poizot, P., Laruelle, S., Grugeon, S., Dupont, L., Tarascon Shankar, J. -M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nano-sized+transition-metal+oxides+as+negative-electrode+materials+for+lithium-ion+batteries%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Nano-sized transition-metal oxides as negative-electrode materials for lithium-ion batteries.</a> Nature. 407, 496(2000).</li>
<li>Jang, D., Meza, L. R., Greer, F., Greer, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+and+deformation+of+three-dimensional+hollow+ceramic+nanostructures%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Materials%22%5BJournal%5D)">Fabrication and deformation of three-dimensional hollow ceramic nanostructures.</a> Nature Materials. 12, 893(2013).</li>
<li>Lazarus, A., Florijn, H. C. B., Reis, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Geometry-Induced+Rigidity+in+Nonspherical+Pressurized+Elastic+Shells%5BTitle%5D)+AND+%22PRL%22%5BJournal%5D)">Geometry-Induced Rigidity in Nonspherical Pressurized Elastic Shells.</a> PRL. 109, 144301(2012).</li>
<li>Vella, D., Ajdari, A., Vaziri, A., Boudaoud, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Indentation+of+Ellipsoidal+and+Cylindrical+Elastic+Shells%5BTitle%5D)+AND+%22PRL%22%5BJournal%5D)">Indentation of Ellipsoidal and Cylindrical Elastic Shells.</a> PRL. 109, 144302(2012).</li>
<li>Xu, H., Wang, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Template+Synthesis+of+Multishelled+Cu2O+Hollow+Spheres+with+a+Single-Crystalline+Shell+Wall%5BTitle%5D)+AND+%22Angew.+Chem.+Int.+Ed%22%5BJournal%5D)">Template Synthesis of Multishelled Cu2O Hollow Spheres with a Single-Crystalline Shell Wall.</a> Angew. Chem. Int. Ed. 46, 1489(2007).</li>
<li>Li, B., Shao, X., Hao, Y., Zhao, Y. <a target="_blank" href="http://pubs.rsc.org/en/Content/ArticleLanding/RA/2015/C5RA14910J">Ultrasonic-spray-assisted synthesis of metal oxide hollow/mesoporous microspheres for catalytic CO oxidations.</a> RSC Adv. 5, 85640(2015).</li>
<li>Yu, J., Wang, G. Hydrothermal Synthesis and Photocatalytic Activity of Mesoporous Titania Hollow Microspheres. Powder Tech. 301, 96(2016).</li>
<li>Xu, G., Zhang, X., Cui, H., Zhang, Z., Ding, J., Wu, J. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S003259101630328X">Facile synthesis of mesoporous SnO2 microspheres using bioactive yeast cell.</a> Powder Tech. 301, 96(2016).</li>
<li>Nomura, T., Tanii, S., Ishikawa, M., Tokumoto, H., Konishi, Y. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0921883113000368">Synthesis of hollow zirconia particles using wet bacterial templates.</a> Adv. Powder Tech. 24, 1013(2013).</li>
<li>Frankel, R. B., Bazylinski, D. A. <a target="_blank" href="https://s3.amazonaws.com/academia.edu.documents/40721315/Frankel___Bazylinski_BIM__Rev._Mineral..pdf?AWSAccessKeyId=AKIAIWOWYYGZ2Y53UL3A&Expires=1510268529&Signature=S2Kabbvg3CFuRi%2FQJJWrX2IUVew%3D&response-content-disposition=inline%3B%20filename%3DBiologically_Induced_Mineralization_by_B.pdf">Biologically Induced Mineralization by Bacteria.</a> Rev. in Mineralogy and Geochem. 54 (1), 95(2003).</li>
<li>Bazylinski, D. A., Frankel, R. B. <a target="_blank" href="http://rimg.geoscienceworld.org/content/54/1/217">Biologically Controlled Mineralization in Prokaryotes.</a> Rev. in Mineralogy and Geochem. 54 (1), 217(2003).</li>
<li>Lin, P. -H., Huang, Y. -T., Lin, F. -W. <a target="_blank" href="http://jss.ecsdl.org/content/6/3/N3113.full">Sodium Tungstate and Sodium Molybdate Hollow Microspheres Biologically Controlled Mineralization in Prokaryotes.</a> ECS J. of Solid State Sci. and Tech. 6 (3), N3113(2017).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Jeśli chodzi o samospójność wyników eksperymentalnych, kluczowe znaczenie ma przygotowanie i namnażanie bakterii monoklonalnych. W tym eksperymencie, różniącym się od eksperymentów z syntezą matryc15,16, wykorzystano bioaktywne bakterie Gram-ujemne. Aby uzyskać pojedynczą ścianę, wybraliśmy bakterie prokariotyczne zamiast bakterii eukariotycznych, takich jak drożdże15. Aby uzyskać kulisty kształt ze stosunkiem długości do średnicy 1:1, zamiast większego stosunku długości do średnicy16, karmiliśmy bakterie znacznie wyższym stężeniem oksyanionów, aby manipulować nimi, aby skurczyły się do kulistego kształtu, tworząc mikrokapsułki o pojedynczej, okrągłej i cienkiej ściance (<30 nm).
Ponieważ BME opiera się głównie na dostosowaniu stężenia oksyanionów w celu kontrolowania metabolizmu bakterii, ma dwa ograniczenia. Po pierwsze, stężenie oksyanionów jest ograniczone przez rozpuszczalność, chociaż stężenie powinno być jak najwyższe. Po drugie, metabolizm większości bakterii zatrzyma się w temperaturze powyżej 45 °C lub poniżej 5 °C, odpowiednio górnej i dolnej granicy naszego eksperymentu.
Pomimo tych dwóch ograniczeń, BME ma ogromny potencjał w zakresie wytwarzania materiałów z tlenków metali o znaczeniu praktycznym. Aby uzasadnić to twierdzenie, wypróbujemy tę metodę do wytwarzania mikrokapsułek cyrkonowych i mikrokapsułek żelaza - te pierwsze są dobrym materiałem kandydującym na sztuczne kości, a drugie do dostarczania leków.

Nanocząsteczki tlenku metalu są wykorzystywane do dostarczania leków1, sztuczne kości konstrukcyjne2, kataliza heterogeniczna3, emisja w terenie4,5, ogniwa słoneczne6, czujniki gazu7, oraz baterie litowe8. W praktycznych zastosowaniach kluczowa jest wytrzymałość mechaniczna zarówno nanokryształów, jak i ich mikrostruktura. Wśród mikrostruktur, puste struktury skorupowe mogą być używane do tworzenia lekkich, wytrzymałych mechanicznie materiałów9. Wśród pustych struktur skorupowych kształt kulisty jest znany z tego, że jest sztywniejszy niż kształt elipsoidalny; Ten drugi ma większy stosunek długości do średnicy niż pierwszy10,11. W pracy opisano protokół syntezy sferycznych mikrokapsułek za pomocą bakterii metodą nietoksyczną w warunkach otoczenia, który kontrastuje z metodami alternatywnymi, w tym metodą syntezy matrycowej12, metodą syntezy wspomaganej rozpylaniem ultradźwiękowym13 i metodą hydrotermalną14. Niektóre z alternatywnych metod wymagają szablonów12, niektóre temperatury sięgającej 500 °C13, a niektóre wysokiego ciśnienia14. Jeśli chodzi o wynikową strukturę, metoda syntezy matrycy wykorzystująca matrycę drożdży prowadzi do struktury rdzeń-powłoka15, zamiast jednej z pojedynczą ścianką, a ta wykorzystująca matrycę E. coli tworzy strukturę o stosunku długości do średnicy 1,7:0,8 i nie jest kulista. 16.
W tej pracy stworzyliśmy mikrokapsułki z tlenku metalu o pojedynczej ściance i kulistym kształcie w warunkach otoczenia, wykorzystując metabolizm bakterii. W glikolizie bakteryjnej, procesie chemicznym, który metabolizuje źródła węgla, takie jak glukoza i laktoza, źródła węgla są uważane za źródło wytwarzanej w nich mocy redukującej. Manipulowaliśmy metabolizmem bakterii, dostosowując stężenie źródeł węgla, aby osiągnąć pożądane cele. Ta metoda jest przyjazna dla środowiska, wykorzystuje nietoksyczne środki i zużywa znacznie mniej energii elektrycznej. Wreszcie, metoda ta pozwala na masową produkcję mikrokapsułek po prostu poprzez zwiększenie objętości bulionu.
Przed tą metodą, istniały dwie inne metody wykorzystujące metabolizm bakterii do wytwarzania minerałów: biologicznie indukowana mineralizacja (BIM)17 i biologicznie kontrolowana mineralizacja (BCM)18. Ani BIM, ani BCM nie mogą być używane do wytwarzania mikrokapsułek wolframianu sodu i molibdenianu, takich jak nasz proces, który jest oznaczony jako bakteryjne wydzielanie minerałów (BME)19. W tym eksperymencie kształt mikrokapsułek można kontrolować tak, aby miał stosunek długości do średnicy od 10:1 do 1:1, a wielkość ziaren nanocząstek, które tworzą otoczki, można regulować w zakresie od 15 nm do 110 nm.

<table><tbody><tr><td>LB(Lennox)bulion z tabletkami agarowymi</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L7075</td><td>1 tabletka na 50 ml bulionu z agarem</td></tr><tr><td>Bulion LB (Lennox)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L3022-1KG</td><td>LB (Lennox) w proszku 1 kg</td></tr><tr><td>Dekstroza bezwodna</td><td>Odczynnik Nihon Shiyaku</td><td>PL 78695</td><td>glukoza</td></tr><tr><td>Odczynnik do butelizacji wolframianu sodu</td><td>Nihon Shiyaku</td><td>PL 76050</td><td>Na2WO4 &middot; 2H2O</td></tr><tr><td>Odczynnik do Molibdenianu Sodu</td><td>Nihon Shiyaku</td><td>PL103564</td><td>Na2MoO4 &middot; 2H2O</td></tr><tr><td>Odczynnik do chlorku sodu</td><td>Nihon Shiyaku</td><td>PL 68131</td><td></td></tr><tr><td>NaCl Etanol 99,5%</td> <td>Acros organiczne</td><td>AC615090040</td><td>CH3CH2OH</td></tr><tr><td>Woda</td><td>Wyprodukowana na naszym uniwersytecie</td><td></td> autoklaw <td>wody dejonizowanej</td></tr><tr><td></td><td>Tomin Medical Equipmenco, Ltd., Tajpej, Tajwan, ROC</td><td>TM-329</td><td>ciepło do 120 stopni C przez 10 minut</td></tr><tr>System laboratoryjny<td>systemu cyfrowego wirówki</td><td>, Nowe Tajpej, Tajwan, wirówka DSC302SD ROC</td><td></td><td>przy 2025 x</td></tr> <tr><td>g-80 &deg; C Lodówka</td><td>Panasonic</td><td>MDF-U3386S</td><td>Służy do głębokiego zamrażania szczepu kriokonserwacyjnego</td></tr><tr><td>Homogenizator ultradźwiękowy Sonikator Procesor Zakłócacz komórek</td><td>Lenox</td><td>UPS-150</td><td>częstotliwość 20 KHz moc 150 W</td></tr><tr><td>Inkubator</td> wykonany przez <td>klienta</td> na <td>zamówienie</td><td>ciepło do 40 & stopni; C lub schłodzić do 18 & deg; C z czasem cotrol</td></tr><tr><td>Wzajemne kąpiele wstrząsowe</td><td>Kingtech Scientific Co., Ltd</td><td>WBS-L</td><td></td></tr><tr><td>Cyfrowa płyta grzejna do mieszania</td><td>Corning</td><td>#6797-620D</td><td>używać z mieszadłem magnetycznym PTFE</td></tr><tr><td>Szafa bezpieczeństwa biologicznego</td><td>Zong Yen co., LTD</td><td>ZYBH-420</td><td>Wszystkie procesy związane z bakteriami są wykonywane tutaj</td></tr><tr><td>Skaningowy mikroskop elektronowy</td><td>JEOL</td><td>JSM-6500F</td><td>Obrazy SEM</td></tr><tr><td>Probówka wirówkowa 50 ml</td><td>Falcon</td><td>14-432-22</td><td></td></tr><tr><td>15 ml probówka wirówkowa</td><td>Falcon</td><td>14-959-53A Butelka laboratoryjna</td><td></td></tr><tr><td>100 ml</td><td>Duran</td><td>21 801 24 5</td><td></td></tr><tr><td>Butelka laboratoryjna 500 ml</td><td>Duran</td><td>21 801 44 5</td><td></td></tr><tr><td>Szpatułka ze stali nierdzewnej</td><td>Chemglass</td><td>CG-1981-10</td><td></td></tr><tr><td>Jednorazowe mieszadła z PTFE</td><td>Fisher</td><td>S68066</td><td></td></tr><tr><td>Plastikowe szalki Petriego</td><td>Fisher</td><td>S33580A</td><td></td></tr><tr><td>Algi Shewanella</td><td>Dzięki uprzejmości autora #3</td><td>Dzięki uprzejmości autora #3</td><td></td></tr><tr><td>Pandoraea sp.</td><td>Dzięki uprzejmości autora #3</td><td>Dzięki uprzejmości autora #3</td><td></td></tr></tbody></table>

synteza wolframianu sodu i mikrokapsułek molibdenianu sodu poprzez bakteryjne wydalanie minerałów

Synthesizing Sodium Tungstate and Sodium Molybdate Microcapsules via Bacterial Mineral Excretion

Prezentujemy metodę, bakteryjne wydzielanie minerałów (BME), do syntezy dwóch rodzajów mikrokapsułek, wolframianu sodu i molibdenianu sodu, oraz odpowiadających im nanocząsteczek dwóch tlenków metali - pierwsza z nich jest tak mała jak 22 nm, a druga 15 nm. Karmiliśmy dwa szczepy bakterii, algi Shewanella i Pandoraea sp., różnymi stężeniami jonów wolframu lub molibdenianu. Stężenia wolframu i molibdenianu dostosowano tak, aby uzyskać mikrokapsułki o różnych proporcjach długości do średnicy. Odkryliśmy, że im wyższe stężenie, tym mniejsze były nanocząstki. Nanocząstki uzyskano w trzech proporcjach długości do średnicy: 10:1, 3:1 i 1:1, które osiągnięto poprzez karmienie bakterii odpowiednio niskim stężeniem, średnim stężeniem i wysokim stężeniem. Obrazy pustych mikrokapsułek zostały wykonane za pomocą skaningowej mikrosfery elektronowej (SEM). Ich struktury krystaliczne zweryfikowano za pomocą dyfrakcji rentgenowskiej (XRD) - struktura krystaliczna mikrokapsułek molibdenianu wynosi Na2MoO4, a mikrokapsułek wolframianowych to Na2WO4 z Na2W2O7. Wszystkie te syntezy zostały przeprowadzone w warunkach zbliżonych do warunków otoczenia.

Rysunek 1 przedstawia rzeczywiste mikrokapsułki sferyczne. Oba szczepy bakterii, Shewanella algae i Pandoraea sp., mają pierwotnie stosunek długości do średnicy wynoszący 3:1. Aby uzyskać stosunek długości do średnicy 1:1, wymagane jest wysokie stężenie (&gt;10 mM) oksyanionów metali. Niskie stężenie (&lt;5 mM) oksyanionów może prowadzić do stosunku długości do średnicy 10:1, jak na Rysunku 2, co może wynikać z napływu oksyanionów blokującego podział binarny bakterii. Wreszcie, aby uzyskać stosunek długości do średnicy 3:1, taki jak na Rysunku 3, potrzebne jest średnie stężenie (~20 mM) oksyanionów. Formowanie się sferycznych powłok o stosunku długości do średnicy 1:1 może być wywołane przez mechanizmy bakteryjne dążące do zmniejszenia powierzchni w celu zrównoważenia poboru oksyanionów podczas ich dyfuzji przez błonę komórkową. Trzy powyższe rysunki wspólnie wskazują, że stosunek długości do średnicy można regulować w zakresie od 10:1 do 1:1 poprzez prostą zmianę stężenia oksyanionów.
Rycina 4 oraz Rycina 5 przedstawiają ziarna nanocząsteczek molibdenianu sodu o różnych rozmiarach: mniejsze o wielkości 15 nm i większe o wielkości 10 nm. Należy zauważyć, że na Rycynie 5, na niezniszczonych powłokach, cząstki o rozmiarze 10 nm wciąż mogą tworzyć łańcuchy, formując powłoki porowate. Większe ziarna uzyskano poprzez 5-krotne oscylowanie temperatury pożywki hodowlanej między 25 °C a 37 °C, przy czym każda temperatura była utrzymywana przez 12 h. Podczas oscylacji temperatury możliwe jest nie tylko otrzymanie ziaren o różnych rozmiarach, ale także zachowanie struktury mikrosferycznej, co oznacza, że poprzez samą kontrolę temperatury pożywki możemy wytwarzać mikrokapsułki o różnej wielkości ziaren, od 15 nm do 10 nm.
Rysunek 6 przedstawia uszkodzoną ścianę z większymi ziarnami pozostającymi obok otworu w ścianie. Grubość ściany wynosi około 2 nm, a większe ziarno ma około 40-60 nm. Różnica w wielkości może wynikać z odmiennych procesów metabolicznych, które nie zostały jeszcze zidentyfikowane.
<img alt="Obraz SEM nanocząstek, mikroskopia elektronowa, analiza morfologii powierzchni, duże powiększenie." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57022/57022fig1.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rycina 1"> 
Rysunek 1: Obraz SEM pustych sferycznych powłok o stosunku długości do średnicy wynoszącym 1:1. Struktura ta była zbudowana z wolframianu sodu wydzielanego przez Shewanella algae z glukozą jako źródłem węgla. Przedrukowano za zgodą ECS J. of Solid State Sci. and Tech., 6(3), N313 (2017). Copyright 2017, The Electrochemical Society. <a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57022/57022fig1large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej figury.</a>
<img alt="Obraz SEM komórek bakteryjnych; stosowany w mikrobiologii do analizy struktury komórkowej." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57022/57022fig2.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rysunek 2"> 
Rysunek 2: Obraz SEM pustych powłok długich filamentów o stosunku długości do średnicy 10:1. Struktura ta była zbudowana z molibdanu sodu wydzielanego przez Pandoraea sp. z glukozą jako źródłem węgla. Przedrukowano za zgodą ECS J. of Solid State Sci. and Tech., 6(3), N313 (2017). Copyright 2017, The Electrochemical Society. <a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57022/57022fig2large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<img alt="Obraz z transmisyjnego mikroskopu elektronowego, morfologia powierzchni nanocząstek, badania w dziedzinie inżynierii materiałowej." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57022/57022fig3.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rycina 3"> 
Rysunek 3: Obraz SEM uszkodzonych pustych powłok w kształcie prętów o stosunku długości do średnicy wynoszącym 3:1. Struktura ta była zbudowana z tungstenu sodu wydzielanego przez Shewanella algae z glukozą jako źródłem węgla. Przedrukowano za zgodą ECS J. of Solid State Sci. and Tech., 6(3), N313 (2017). Copyright 2017, The Electrochemical Society. <a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57022/57022fig3large.jpg" target="_blank">Prosimy kliknąć tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej figury.</a>
<img alt="Obraz z transmisyjnego mikroskopu elektronowego przedstawiający strukturę powierzchni nanocząstek przy dużym powiększeniu." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57022/57022fig4.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rysunek 4"> 
Rysunek 4: Obraz SEM rozbitych powłok molibdenianu sodu o rozmiarze ziarna 15 nm. <a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57022/57022fig4large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<img alt="Mikrografia SEM struktury powierzchni nanomateriału przy powiększeniu 25 0x do analizy materiałowej." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57022/57022fig5.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rysunek 5"> 
Rysunek 5: Obraz SEM rozbitych i nierozbitych powłok molibdenianu sodu o rozmiarze ziarna 10 nm. <a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57022/57022fig5large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej figury.</a>
<img alt="Obraz z transmisyjnego mikroskopu elektronowego powierzchni nanorurki, powiększenie 150 0x, przedstawiający nanostruktury." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57022/57022fig6.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rysunek 6"> 
Rycina 6: Obraz SEM pękniętych pustych powłok o stosunku długości do średnicy wynoszącym 1:1. Struktura ta była zbudowana z wolframianu sodu wydzielanego przez Shewanella algae z glukozą jako źródłem węgla. Ziarna o rozmiarze około 40-60 nm znajdują się na zewnątrz otoczki, bezpośrednio obok dużego otworu, podczas gdy sama otoczka składa się z ziaren o rozmiarze około 2 nm. Przedrukowano za zgodą ECS J. of Solid State Sci. and Tech., 6(3), N313 (2017). Copyright 2017, The Electrochemical Society. <a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57022/57022fig6large.jpg" target="_blank">Prosimy kliknąć tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>

Ta praca przedstawia protokół wytwarzania mikrokapsułek z wolframianu sodu i molibdenianu sodu za pomocą bakterii i odpowiadających im nanocząstek.

Synteza wolframianu sodu i mikrokapsułek molibdenianu sodu poprzez bakteryjne wydalanie minerałów

We present a method, the bacterial mineral excretion (BME), for synthesizing two kinds of microcapsules, sodium tungstate and sodium molybdate, and the ...

Ogólnym celem tego eksperymentu jest zademonstrowanie nowych procedur wytwarzania pustych sferycznych struktur z materiałów tlenkowych przy użyciu bakterii Gram-ujemnych. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie bionanomateriałów, pokazując, w jaki sposób nanograniczny materiał tlenku metalu w mikrokapsułkach może być formowany za pomocą bakterii. Główną zaletą tej techniki jest to, że jest przyjazna dla środowiska i ma potencjał do masowej produkcji.Odważ osiem gramów bulionu LB Lennox w proszku i umieść go w 500-mililitrowej butelce laboratoryjnej z 400 mililitrami wody. Następnie dodaj magnetyczny teflonowy pręt mieszający i mieszaj zawartość przez 20 minut. Mocno zakręć bulion i autoklawuj zawartość w temperaturze 120 stopni Celsjusza przez 10 minut.Poczekaj, aż roztwór ostygnie do temperatury pokojowej, a następnie za pomocą pipety podziel 12,5 mililitra bulionu na osiem 15-mililitrowych probówek wirówkowych. Pozostałą ilość bulionu przelej do trzech 100-mililitrowych butelek laboratoryjnych, szczelnie zakręć trzy butelki i przechowuj je w komorze bezpieczeństwa biologicznego. Następnie odzyskaj kriokonserwowany zapas glonów Shewanella z magazynu.Następnie w komorze bezpieczeństwa biologicznego użyj szpatułki ze stali nierdzewnej, aby usunąć jeden mililitr zamrożonego materiału z rurki do przechowywania i umieść go w jednej z 12,5 mililitrowych porcji zawierających bulion LB Lennox. Umieść próbkę w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza i inkubuj kulturę przez 24 godziny. Następnie przygotuj płytki agarowe.Rozpuść dwie tabletki bulionu LB Lennox z agarem w 100-mililitrowej butelce zawierającej 100 mililitrów wody. Użyj mieszadła, aby mieszać zawartość przez 20 minut, a następnie mocno ją przykręć. Po autoklawie podwielokrotność 20 mililitrów do każdej z czterech szalek Petriego.Poczekaj, aż roztwór ostygnie do temperatury pokojowej w okapie. A następnie przykryj talerze. Oznacz trzy butelki przygotowane ze 100 mililitrami bulionu LB Lennox numerem jeden, numer dwa i numer trzy.Odpipetować 0,1 mililitra powstałej kultury bakteryjnej do pierwszej butelki. Zakręć butelkę i obracaj nią ręcznie przez minutę, aby uzyskać jednorodny roztwór. Następnie odpipetuj 0,1 mililitra z butelki numer jeden do butelki numer dwa.Ponownie zakręć butelkę i kołysz nią ręcznie przez minutę. Ostatnie rozcieńczenie wykonać pipetując 0,1 mililitra z butelki numer dwa do butelki numer trzy. Zakręć butelkę i potrząsaj nią ręcznie przez minutę.A następnie odpipetować 20 mikrolitrów roztworu na każdą z czterech szalek Petriego. Następnie umieść cztery autoklawowane szklane koraliki o średnicy trzech milimetrów w każdej z szalek Petriego. Zamknij pokrywki szalek Petriego i potrząsaj nimi ręcznie przez minutę.Po zakończeniu odwróć szalki Petriego do góry nogami i inkubuj płytki w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 24 godziny. Za pomocą szpatułki ze stali nierdzewnej wybierz powstałe bakterie monoklonalne z czterech szalek Petriego i umieść je w pozostałych siedmiu probówkach zawierających 12,5 mililitra bulionu LB Lennox. Pozostaw probówki w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza na 24 godziny, a następnie wybierz tę, która ma największe rozproszenie światła, stosując wizualną metodę kolorymetryczną.Umieść 10 gramów bulionu LB Lennox, 10 gramów chlorku sodu i 10 gramów glukozy w 500-mililitrowej butelce laboratoryjnej. Następnie dodaj wodę, aż objętość osiągnie 450 mililitrów. Dodaj teflonowy mieszadło i mieszaj przez 20 minut.Po wymieszaniu qutoclavuj ten roztwór w temperaturze 120 stopni Celsjusza przez 10 minut. Następnie odmierz 16,5 grama dwuwodnego wolframianu sodu i umieść go w 100-mililitrowej butelce. Dodaj wodę, aż objętość osiągnie 50 mililitrów.Dodaj teflonową mieszadło i mieszaj roztwór przez 20 minut. Stężenie rozpuszczalnika wolframianu sodu powinno być wysokie, aby zapewnić kulisty kształt mikrokapsułki, ale nie za wysokie, aby zabić bakterie. Po autoklawie przefiltruj roztwór przez filtr z włókna szklanego z porami o wielkości jednego mikrona, aby uzyskać filtrat.Wlej filtrat ręcznie do 450 mililitrowej butelki z bulionem LB Lennox zawierającym glukozę i sól. Następnie podziel otrzymany roztwór na 10, 50 mililitrowe probówki wirówkowe. Pobrać kulturę zawierającą bakterie monoklonalne i dodać 50 mikrolitrów do każdej z 10, 50 mililitrowych probówek wirówkowych zawierających pożywkę wolframianową sodu.Inkubuj 10 probówek w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 120 godzin. Po inkubacji umieść każdą z probówek w ultrasonikatorze i poddaj komórki sonikacji z częstotliwością 20 kiloherców o mocy 150 watów przez jedną godzinę. Odwirować probówki.A następnie usuń klarowny płyn za pomocą pipety. Następnie dodaj wodę. A następnie poddać sonikacji i odwirować probówki jeszcze raz.Po drugim odcentrowaniu usunąć klarowny płyn z probówek za pomocą pipety. Następnie dodaj 35 mililitrów 99,8% etanolu i ponownie wykonaj ultradźwięki próbek. Opłucz minerały, odwirowując je, dodając alkohol i ponownie sonikując próbkę.Następnie usunąć przezroczysty płyn z probówek za pomocą pipety i natychmiast zakryć probówki, nie wysuszając próbki. To zdjęcie SEM pokazuje złamaną, pustą skorupę wykonaną z wolframianu sodu, który został wydalony przez algi Shewanella przy użyciu glukozy jako źródła węgla. Granulki o średnicy około 40 do 60 nanometrów zwisają na zewnątrz skorupy.Sama skorupa wykonana jest z granulek o średnicy około 22 nanometrów. Oddalając się, można zobaczyć stosunek długości do średnicy tych pustych muszli. Te kuliste muszle mają stosunek długości do średnicy jeden do jednego i zostały uzyskane przy użyciu wysokiego stężenia oksydanionów metali większego niż 100 milimolów w pożywce hodowlanej.Zmniejszając stężenie oksyjanionów w pożywce hodowlanej do około 20 milimolów, bakterie wytwarzają otoczki wolframianowe sodu o stosunku długości do średnicy wynoszącym trzy do jednego. Po jej opracowaniu, technika ta pomaga badaczom w dziedzinie bionanotechnologii zbadać możliwość wytworzenia mikrostruktury, takiej jak mikrokapsułka materiału tlenku metalu, za pomocą bakterii Gram-ujemnych.

synthesizing-sodium-tungstate-sodium-molybdate-microcapsules-via

Research

JoVE Journal

Chemistry

Chemia

Źródło: Lin, P., et al. Synteza wolframianu sodu i mikrokapsułek molibdenianu sodu poprzez bakteryjne wydalanie minerałów. J. Vis. Exp. (2018).Ten film przedstawia procedurę syntezy sztywnych mikrokapsułek z tlenku metalu poprzez hodowlę bakterii redukujących metale za pomocą jonów metali, a następnie sekwencyjne oczyszczanie poprzez sonikację, wirowanie i mycie etanolem.

Synteza mikrokapsułek tlenków metali z wykorzystaniem bakterii redukujących metale

Przygotowanie i złuszczanie CaCuSi4O10 i BaCuSi4O10 są opisane. Po zmieszaniu w gorącej wodzie, CaCuSi4O10 spontanicznie złuszcza się do monowarstw, podczas gdy BaCuSi4O10 wymaga ultradźwięków w rozpuszczalnikach organicznych. Obrazowanie w bliskiej podczerwieni (NIR) ilustruje właściwości emisyjne NIR tych materiałów, a wodne dyspersje tych nanomateriałów są przydatne do przetwarzania roztworów.

Złuszczanie egipskiego błękitu i błękitu Han, dwóch pigmentów na bazie krzemianu miedzi ziem alkalicznych

Opisana jest synteza zol-żel za pośrednictwem surfaktantu nanosized monosodium titanate, wraz z przygotowaniem odpowiedniego materiału modyfikowanego nadtlenkiem. Przedstawiono również reakcję wymiany jonowej z Au(III).

Synteza i chemia reakcji nanometrażowego tytanianu sodu

Tutaj prezentujemy metodę syntezy nanocząstek siarczku kadmu bez ligandów (CdS) opartego na unikalnym kopolimerze siarki. Kopolimer siarki działa jako rozpuszczalnik wysokotemperaturowy i źródło siarki podczas syntezy nanocząstek i stabilizuje nanocząstki po reakcji.

Synteza wolnych od ligandów nanocząstek CdS w matrycy kopolimeru siarki

Ten protokół/manuskrypt opisuje uproszczony proces produkcji kapsułek egzyny sporopolleniny (SEC) z zarodników Lycopodium clavatum oraz ładowania związków hydrofilowych do tych SEC.

Ekstrakcja kapsułek roślinnych do zastosowań w mikrokapsułkowaniu

Poprzez siarkowanie wstępnie osadzonych metali przejściowych, można wytwarzać heterostruktury krystaliczne o dużej powierzchni i pionowe 2D. W niniejszym raporcie przedstawiono również procedury przenoszenia folii i produkcji urządzeń.

Otrzymywanie wielkopowierzchniowych pionowych heterostruktur krystalicznych 2D poprzez siarkowanie warstw metali przejściowych do wytwarzania urządzeń

Przedstawiamy protokół do porównywania stanu minerałów w pęcherzykach uwalnianych przez dwie linie ludzkich komórek kostnych: hFOB 1.19 i Saos-2. Ich profile mineralizacji analizowano za pomocą barwienia czerwienią Alizarin Red-S (AR-S), wizualizacji światła ultrafioletowego (UV), obrazowania za pomocą transmisyjnej mikroskopii elektronowej (TEM) oraz mikroanalizy rentgenowskiej z dyspersją energii (EDX).

Analiza minerałów wytwarzanych przez ogniwa hFOB 1.19 i Saos-2 przy użyciu transmisyjnej mikroskopii elektronowej z mikroanalizą rentgenowską z dyspersją energii

Tutaj prezentujemy jednogarnkową, wolną od metali przejściowych syntezę tioli i tioestrów z halogenków aromatycznych i tiometlenku sodu, a następnie przygotowanie monokryształów sieci metal-ditiolen przy użyciu form tiolu generowanych in situ z bardziej stabilnego i podatnego na działanie tioestru.

Synteza tiolowego bloku budulcowego do krystalizacji półprzewodnikowego żyroidalnego szkieletu metal-siarka

Ten artykuł demonstruje zasady szybkiego, minimalnie inwazyjnego wstrzykiwania mikrocząsteczek fluorescencyjnych do układu krążenia małych ryb oraz wizualizacji in vivo mikrocząsteczek we krwi ryb.

Proste i skuteczne podawanie i wizualizacja mikrocząstek w układzie krążenia małych ryb za pomocą iniekcji nerki

Ten protokół szczegółowo opisuje syntezę nanokapsułek do późniejszego wykorzystania w żywicach fotopolimeryzowalnych do wolumetrycznego druku 3D z ułatwioną fuzją trypletową.

Synteza nanokapsułek Triplet Fusion Upconversion

Ten protokół przedstawia system mikrofluidyczny do badania mikrobiologiczne precipitacji minerałów tlenku manganu. Powstawanie biomineralu jest mierzone in situ za pomocą mikroskopii optycznej i analizy obrazu. To podejście może być dostosowane do badania precipitacji innych charakterystycznie zabarwionych biogenicznych minerałów w środowiskach porowatych.

Mikropłytka platforma do badania mikrobiologicznego wytrącania tlenków metali w mediach porowatych

Poznaj metodę syntezy mikrokapsułek wolframianu sodu z użyciem bakterii Gram-ujemnych. Ta ekologiczna technika umożliwia masową produkcję pustych struktur sferycznych z materiałów tlenkowych w badaniach bionanotechnologicznych.

Synteza wolframianu sodu i mikrokapsułek molibdenianu sodu poprzez bakteryjne wydalanie minerałów

Przeglądaj więcej filmów