RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/58240-v
Ye Guan1,2, Shiyuan Wang1, Minjun Jin2, Haotian Xu3, Qiong Yang1,4
1Department of Biophysics,University of Michigan, Ann Arbor, 2Department of Chemistry,University of Michigan, Ann Arbor, 3Department of Computer Science,Wayne State University, 4Department of Physics,University of Michigan, Ann Arbor
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Prezentujemy metodę generowania in vitro samopodtrzymujących się oscylacji mitotycznych na poziomie pojedynczej komórki poprzez kapsułkowanie ekstraktów jajecznych Xenopus laevis w mikroemulsjach typu woda w oleju.
Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie biologii systemowej, takie jak mechanizm regulujący sieć mitotyczną oraz dynamiczne właściwości i funkcje zegara cyklu komórkowego. Główną zaletą tej techniki jest to, że wygeneruje ona dużą ilość kropel z wieloma cyklami komórkowymi w każdej, zapewniając nam wysokowydajne ramy do ilościowej manipulacji i analizy. Na początek wyrzuć partie jaj, które mają niejasne granice między biegunami zwierzęcymi i roślinnymi lub nieregularne białe plamy na słupach zwierzęcych.
Następnie wybierz odpowiednią partię jaj od jednej samicy żaby i przenieś jaja do 600-mililitrowej zlewki. Wylej nadmiar 0,2x buforu MMR i delikatnie dodaj cysteinę w 1x buforze ekstraktu do jaj. Następnie energicznie potrząśnij ręcznie zlewką, aby usunąć galaretki z jaj.
Powtórz to mycie trzy razy, w sumie 800 mililitrów buforu cysteiny lub do momentu, gdy jaja się zgromadzą i osiądą na dnie zlewki. Po usunięciu galaretki umyj jajka cztery razy w jednym litrze 0,2x roztworu MMR. Użyj szklanej pipety, aby zebrać i wyrzucić jaja, które stają się białe.
Wylej bufor MMR ze zlewki i dodaj 200 mililitrów roztworu jonoforu wapnia do jaj. Za pomocą szklanej pipety delikatnie wymieszaj jajka, aż zostaną aktywowane, a następnie usuń roztwór jonoforu wapnia. Pozostawienie jaj w roztworze jonoforu wapnia zbyt długo zainicjuje apoptozę.
Mieszamy jajka przez 1,5 minuty i sprawdzamy skuteczność aktywacji. Jeśli nie są aktywowane, wznów mieszanie i sprawdzaj częściej, aż zostanie osiągnięta 90% aktywacja. Po tym, jak jaja osiądą na dnie zlewki, sprawdź skuteczność aktywacji.
Dobrze aktywowane jaja mają około 25% bieguna zwierzęcego i 75% bieguna roślinnego. Następnie dwukrotnie umyj jaja łączną objętością 50 mililitrów buforu ekstraktu uzupełnionego inhibitorami proteazy. Następnie ostrożnie przenieś jajka do mikroprobówki zatrzaskowej o pojemności 0,4 mililitra.
Wirować mikroprobówkę przez 60 sekund przy 200 g, a następnie przy 600 g przez 30 sekund, aby zapakować jaja. Następnie użyj szklanej pipety Pasteura, aby usunąć nadmiar buforu z jaj po każdym kroku. Następnie zmiażdż jajka w temperaturze 15 000 g przez 10 minut w czterech stopniach Celsjusza.
Użyj żyletki, aby przeciąć rurki, aby oddzielić trzy warstwy zmiażdżonych jaj i utrzymać surową cytoplazmę w środkowej warstwie. Następnie przenieś surową cytoplazmę do czystych probówek ultrawirówek. Uzupełnij cytoplazmę inhibitorami proteazy i cytochalazyną B w dawce 10 mikrogramów na mililitr każdy.
Wirować surową cytoplazmę w temperaturze 15 000 g i czterech stopniach Celsjusza przez pięć minut. Następnie użyj żyletki, aby przeciąć rurkę i utrzymać cytoplazmę w środkowej warstwie. Umieść świeżo przygotowane ekstrakty na lodzie.
Najpierw dodaj mRNA securin-mCherry do przygotowanych ekstraktów. Następnie dodaj 200 mikrolitrów 2% fluorosurfaktantu PFPE-PEG do mieszaniny ekstraktu mRNA. Użyj miksera wirowego, aby wygenerować kropelki, dostosowując prędkość i czas trwania wiru w razie potrzeby.
Następnie sprawdź wzrokowo kropelki, aby upewnić się, że mają jednolitą wielkość. Za pomocą pipety o pojemności 200 mikrolitrów przenieś unoszące się na wierzchu kropelki i równą objętość środka powierzchniowo czynnego do probówki PCR. Zanurz szklaną rurkę w warstwie kropel i poczekaj, aż kropelki wypełnią około 75% probówki.
Następnie wepchnij rurkę w warstwę środka powierzchniowo czynnego i całkowicie napełnij rurkę. Następnie napełnij naczynie ze szklanym dnem olejem mineralnym. Następnie za pomocą cienkiej pęsety zanurz rurkę wypełnioną kropelkami w oleju.
Użyj szklanej pipety, aby usunąć wszelkie widoczne zanieczyszczenia lub wyciekające kropelki. Aby uniknąć przemieszczania się i wycieku kropel, szklaną rurkę wypełnioną kropelkami należy ostrożnie zanurzyć pod olejem mineralnym. Możemy albo popchnąć rurkę na obu końcach z równowagą, albo najpierw dodać kilka kropel oleju mineralnego na końce tubki.
Następnie użyj mikroskopu epifluorescencyjnego wyposażonego w zmotoryzowany stolik xy, aby zobrazować kropelki. Nagrywaj filmy poklatkowe w jasnym polu i wielu kanałach fluorescencyjnych co sześć do dziewięciu minut, aż kropelki stracą swoją aktywność. Za pomocą tego protokołu wyprodukowano oscylacje mitotyczne zarówno w prostych, bezjądrowych komórkach, jak i skomplikowanych komórkach z jądrami.
Kropelki pozbawione jąder wygenerowały oscylacje mitotyczne do 30 nietłumionych cykli w ciągu 92 godzin. Zbadano również zdolność oscylatora mitotycznego do kierowania dalszymi zdarzeniami mitotycznymi. Samopodtrzymujący się oscylator mitotyczny napędzał zmiany morfologii jądrowej obserwowane poprzez autonomiczną zmianę różnych faz cyklu komórkowego.
Próbując tej procedury, ważne jest, aby pamiętać, aby pamiętać o czasie podczas przygotowywania ekstraktu, ponieważ jest on wrażliwy na czas i zawsze trzymać jajka i ekstrakt na lodzie. Po opracowaniu technika ta utorowała drogę naukowcom zajmującym się biologią systemową do zbadania podstawowych zasad złożonych właściwości zegara, takich jak przestrajalność i stochastyczność u Xenopus laevis.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
07:45
Related Videos
12.5K Views
04:49
Related Videos
11.6K Views
06:51
Related Videos
15.3K Views
10:01
Related Videos
14.1K Views
09:41
Related Videos
12.4K Views
09:22
Related Videos
23.3K Views
11:04
Related Videos
10.7K Views
09:40
Related Videos
8.5K Views
14:27
Related Videos
8.6K Views
12:02
Related Videos
28.1K Views