RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Weź unieruchomiony, transfekowany wycinek koronalny myszy w komorze nagraniowej perfuzji płynu mózgowo-rdzeniowego.
Wycinek zawiera rzadką populację neuronów piramidowych wyrażających docelowy enzym i białko fluorescencyjne.
Zmontuj pipetę rejestrującą składającą się z roztworu wewnątrzkomórkowego i elektrody podłączonej do wzmacniacza do pomiaru sygnałów neuronalnych.
Mikroskopowo zidentyfikuj obszar tkanki docelowej i zlokalizuj neuron fluorescencyjny.
Zastosuj dodatnie ciśnienie do pipety, aby zapobiec zatkaniu i przesunąć ją do docelowego neuronu.
Dodatnie ciśnienie powoduje niewielkie wgłębienie na błonie neuronalnej w kontakcie.
Zwolnij ciśnienie, tworząc szczelne uszczelnienie między membraną a końcówką.
Ustaw potencjał utrzymywania na stałą wartość ujemną, aby ustabilizować neuron.
Zastosuj krótkie podciśnienie, aby rozerwać membranę, łącząc cytoplazmę z wnętrzem pipety i ustanawiając konfigurację całej komórki.
Przełącz się w tryb cęgów prądowych i zastosuj dodatnie impulsy prądowe, generując potencjały czynnościowe wskazujące na pobudliwość neuronów.
Przenieś plasterek do komory rejestracyjnej za pomocą pipety Pasteura lub małego pędzelka. Przytrzymaj plasterek harfą i przetapiaj go ACSF z szybkością 2 mililitrów na minutę. Aby załatać neuron GFP-dodatni, zlokalizuj obszar zainteresowania za pomocą mikroskopu pod kątem 10x. Następnie znajdź komórkę GFP-dodatnią za pomocą obiektywu 60x.
Następnie napełnij elektrodę rejestrującą roztworem wewnątrzkomórkowym. Następnie umieść szklaną pipetę w uchwycie na pipety. Następnie umieść końcówkę pipety w wannie i skup się na końcówce. Gdy pipeta znajdzie się w kąpieli, należy zastosować nadciśnienie przez system kontroli ciśnienia wstecznego.
Zbliżyć się do celi zainteresowania pod kierunkiem wizualnym, utrzymując ciśnienie wsteczne w pipecie. Po pojawieniu się małego wgłębienia na powierzchni komórki zwolnij ciśnienie. W tym momencie może powstać szczelne uszczelnienie o rezystancji większej niż 1 gigaom. W przeciwnym razie zastosuj lekkie podciśnienie, aby to ułatwić.
Podczas formowania uszczelki doprowadź zacisk podtrzymujący napięcie do ujemnych 60 miliwoltów. Po uformowaniu uszczelki gigaomowej zastosuj impuls ssania, aby rozerwać błonę komórkową i przejść w tryb całej komórki. Gdy znajdzie się w trybie całej komórki, przełącz się z trybu cęgów napięciowych na tryb cęgów prądowych i rozpocznij nagrywanie.
Related Videos
07:23
Related Videos
61.7K Views
08:39
Related Videos
17.8K Views
10:52
Related Videos
13.4K Views
10:19
Related Videos
21.6K Views
07:40
Related Videos
18.9K Views
03:42
Related Videos
5.7K Views
03:05
Related Videos
499 Views
03:45
Related Videos
500 Views
03:54
Related Videos
395 Views
11:34
Related Videos
7K Views