-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
Kalwaryjny model augmentacji kości u królika do oceny wzrostu kości i neowaskularyzacji w materia...
Kalwaryjny model augmentacji kości u królika do oceny wzrostu kości i neowaskularyzacji w materia...
JoVE Journal
Bioengineering
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Bioengineering
Calvarial Model of Bone Augmentation in Rabbit for Assessment of Bone Growth and Neovascularization in Bone Substitution Materials

Kalwaryjny model augmentacji kości u królika do oceny wzrostu kości i neowaskularyzacji w materiałach kościozastępczych

Full Text
8,850 Views
08:41 min
August 13, 2019

DOI: 10.3791/59976-v

Laurine Marger1, Antonio Barone2, Carla P. Martinelli-Kläy3, Leandra Schaub1, Malin Strasding4, Mustapha Mekki1, Irena Sailer4, Susanne S Scherrer1, Stéphane Durual1

1Division of Fixed Prosthodontics and Biomaterials, Biomaterials Laboratory,University of Geneva, University Clinic of Dental Medicine, 2Department of Surgery, Division of Oral and Maxillofacial Surgery (HUG), Unity of Oral Surgery and Implantology,University of Geneva, University Clinic of Dental Medicine, 3Department of Surgery, Division of Oral and Maxillofacial surgery (HUG), Laboratory of Oral & Maxillofacial Pathology,University of Geneva, University Clinic of Dental Medicine, 4Division of Fixed Prosthodontics and Biomaterials,University of Geneva, University Clinic of Dental Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Tutaj prezentujemy protokół chirurgiczny u królików, którego celem jest ocena materiałów zastępczych kości pod kątem zdolności do regeneracji kości. Za pomocą cylindrów PEEK przymocowanych do czaszek królików, osteokondukcja, osteoindukcja, osteogeneza i waskulogeneza wywołane przez materiały mogą być oceniane zarówno na żywych, jak i uśpionych zwierzętach.

W niniejszej pracy przedstawiono protokół chirurgiczny dla królików, którego celem jest ocena materiałów kościozastępczych pod kątem zdolności regeneracyjnych kości. Podstawową zasadą tego modelu kalwarii królika jest pionowy wzrost nowej tkanki kostnej na szczycie korowej części czaszki. Model ten pozwala na ocenę materiałów substytucyjnych do regeneracji kości jamy ustnej i twarzoczaszki pod kątem wspomagania wzrostu kości i wspomagania neowaskularyzacji.

Model ten ma duże znaczenie dla oceny regeneracji kości, ponieważ mierzy ektopowy wzrost nowej tkanki kostnej powyżej dojrzałej kości. W porównaniu z tradycyjnymi modelami, w których nowa kość regeneruje się, aby wypełnić ubytek, który został sztucznie stworzony, aby ostatecznie wrócić do swojego pierwotnego poziomu. Za pomocą dużych cylindrów przymocowanych do czaszek królików, osteokondukcjacja, osteoindukcja, osteogeneza i unaczynienie wywołane przez materiały mogą być oceniane zarówno na żywych, jak i zabitych zwierzętach.

Procedurę zademonstruje Laurin Marger, pracownik naukowy z naszego laboratorium, oraz ja. Po uśpieniu zwierząt należy umieścić kaniulę dożylną w żyle brzeżnej z ucha i trzymać ją zamkniętą aż do zakończenia intubacji. Ułóż królika w pozycji leżącej i utrzymuj jego głowę w pionowym wyprostowaniu.

Znieczulić tchawicę miejscowo, rozpylając 10% lidokainę. Wsuń rurkę dotchawiczą o małej średnicy do tchawicy królika, aż będzie słyszalny przepływ powietrza w rurce. To otworzy krtań i ułatwi wprowadzenie ostatecznej rurki.

Następnie włóż prowadnicę do rurki, aby ustalić położenie rurki w tchawicy. Wyjmij rurkę o małej średnicy i wsuń ostateczną rurkę dotchawiczą na prowadnicę. Zdejmij prowadnicę i napompuj balon na końcu rurki dotchawiczej, aby uszczelnić i zablokować urządzenie w tchawicy.

Stale obfitie podawaj fentanyl w celu wywołania znieczulenia. Dwa do czterech miligramów na kilogram propofolu w celu wywołania znieczulenia i cztery mililitry na kilogram na godzinę octanu pierścienia w celu utrzymania warunków izowolumetrycznych. Natychmiast przewietrzyć zwierzę 3% sewofluranem w czystym tlenie.

Najpierw umieść królika na podgrzewanej podkładce ustawionej na 39 stopni Celsjusza na stole operacyjnym i umieść sondę temperatury doodbytniczą. Ogol skórę głowy. Szoruj skórę 10% jodem prowidonu, aby zdezynfekować miejsce.

Następnie udrapuj królika sterylną serwetą chirurgiczną i wytnij obszar dostępu do czaszki. Zdezynfekuj miejsce operowane 10% jodem prowidonu po raz drugi. Na początek znieczulenie miejscowe za pomocą podskórnego wstrzyknięcia lidokainy w czaszkę.

Za pomocą skalpela naciąć skórę wzdłuż linii strzałkowej kalwarii od oczodołów do zewnętrznej wypukłości potylicznej, upewniając się, że okostna jest nacięta. Użyj windy okostnej, aby delikatnie podnieść okostną po obu stronach nacięcia. Spłucz miejsce sterylną solą fizjologiczną.

Najpierw zlokalizuj media i szwy koronalne na czaszce. Zauważ, że te linie anatomiczne tworzą krzyż. Cylindry zostaną umieszczone w każdym z kwadrantów określonych przez krzyż, upewniając się, że krawędź cylindra nie znajduje się nad szwem.

Umieść pierwszy cylinder w lewym górnym kwadrancie, układając urządzenie tak płasko, jak to możliwe. Ustal pozycję cylindra silnym naciskiem dłoni i wkręć mikrośrubę, aż poczujesz opór. Upewnij się, że jest zlicowany z klapką cylindra.

Zamocuj drugą zakładkę cylindra w ten sam sposób, aby mocno przymocować cylinder do czaszki. Upewnij się, że cylinder jest hermetycznie przymocowany do kości. Następnie powtórz całą tę procedurę, aby przymocować cylinder do każdego z pozostałych trzech kwadrantów.

Na początek wywierć otwór międzyszpikowy pod irygacją solą fizjologiczną z okrągłym zadziorem na kości pośrodku obszaru opisanego przez cylinder. Upewnij się, że pojawia się krwawienie. Następnie wywierć dwa kolejne otwory międzyszpikowe wzdłuż osi przechodzącej przez dwie z zakładkami na wewnętrznych krawędziach cylindra.

Wzdłuż prostopadłej osi wywierć dwa kolejne otwory międzyszpikowe na wewnętrznych krawędziach cylindra. Powtórz ten proces wiercenia dla trzech pozostałych cylindrów. Następnie napełnij pierwszy cylinder po brzegi próbką materiału.

Zamknij cylinder, zakładając nakrętkę. Powtórz ten proces napełniania dla pozostałych trzech cylindrów. Zamknąć skórę nad cylindrami przerywanym, niewchłanialnym szwem i nałożyć na ranę opatrunek w sprayu.

Następnie przerwij dopływ środka przeciwbólowego i znieczulającego i sprawdź, czy odzyskano autonomiczne oddychanie. Gdy zwierzę odzyska autonomiczne oddychanie, przerwij wentylację. Utrzymuj zwierzę pod czystym tlenem przed całkowitym przebudzeniem.

Chlorowodorek buprenofiny należy wstrzykiwać podskórnie. Powtarzaj wstrzyknięcie co sześć godzin przez trzy dni jako znieruchoność pooperacyjna. Pozwól zwierzęciu całkowicie się obudzić przed przeniesieniem go do zwykłego pomieszczenia z wodą i pełnym karmieniem.

Model opisany w tym filmie jest dedykowany do oceny osteokondukcji, osteoindukcji, osteogenezy i neowaskularyzacji w substytutach kości. Po zakończeniu operacji wzrost kości może być monitorowany w różnych punktach czasowych za pomocą tomografii kości na żywych zwierzętach. Dodatkowa analiza wymaga uśmiercenia zwierząt.

Po eutanazji próbki są dzielone na sekcje, a butle są ostrożnie usuwane. Biopsje są następnie utrwalane roztworem 4% formaldehydu w PBS. Następnie mikrotomografia może być wykorzystana do oceny wzrostu kości.

Próbki mogą być również przetwarzane do barwienia histologicznego. Analiza histomorfometryczna i specyficzne barwienia są wtedy możliwe w celu dokładniejszego zakończenia analizy. Ponieważ protokół ten jest metodą chirurgiczną, wszystkie kroki są krytyczne i muszą być prawidłowo przestrzegane.

Ważne jest, aby zostać przeszkolonym w zakresie eksperymentów na zwierzętach, zwłaszcza w zakresie obchodzenia się z królikami i znieczulenia. Oprócz opisanych metod, komórki mogą być analizowane bardziej szczegółowo za pomocą cytometrii przepływowej. Ewolucję materiału, dojrzewanie tkanki kostnej i mechanikę można również ocenić na przykład za pomocą nano wgłębień.

Za pomocą tego modelu przeprowadzono wiele ocen. Jak na przykład dla koszyków tytanowych lub ceramicznych, błon GBM, czynników osteogennych, podstawników noworodkowych czy mechanizmu neowaskularyzacji podczas procesu regeneracji kości.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Model kalwaryjny augmentacja kości model królika wzrost kości neowaskularyzacja materiały do substytucji kości regeneracja twarzoczaszki osteokondukcja osteoindukcja osteogeneza unaczynienie protokół chirurgiczny kaniula dożylna zabieg znieczulenia serweta chirurgiczna

Related Videos

Wykorzystanie ludzkich okołonaczyniowych komórek macierzystych do regeneracji kości

07:05

Wykorzystanie ludzkich okołonaczyniowych komórek macierzystych do regeneracji kości

Related Videos

22K Views

Generowanie modelu ubytku kości nazębnej królika: zabieg chirurgiczny mający na celu utworzenie okrągłych ubytków w górnej części czaszki królika w celu oceny materiałów substytucyjnych kości pod kątem zdolności regeneracji kości

05:23

Generowanie modelu ubytku kości nazębnej królika: zabieg chirurgiczny mający na celu utworzenie okrągłych ubytków w górnej części czaszki królika w celu oceny materiałów substytucyjnych kości pod kątem zdolności regeneracji kości

Related Videos

3.2K Views

Tomografia komputerowa i obrazowanie optyczne sprzężenia osteogeneza-angiogeneza w celu oceny integracji autoprzeszczepów kości czaszki i alloprzeszczepów

13:16

Tomografia komputerowa i obrazowanie optyczne sprzężenia osteogeneza-angiogeneza w celu oceny integracji autoprzeszczepów kości czaszki i alloprzeszczepów

Related Videos

11.9K Views

Wizualizacja angiogenezy za pomocą mikroskopii wielofotonowej in vivo w genetycznie zmodyfikowanym rusztowaniu 3D-PLGA/nHAp do naprawy krytycznego ubytku kości calowej

09:34

Wizualizacja angiogenezy za pomocą mikroskopii wielofotonowej in vivo w genetycznie zmodyfikowanym rusztowaniu 3D-PLGA/nHAp do naprawy krytycznego ubytku kości calowej

Related Videos

9.8K Views

Półautomatyczna ilościowa analiza strukturalna oparta na mikrotomografii komputerowej nagiego szczura Model złamania kręgów związanego z osteoporozą

07:12

Półautomatyczna ilościowa analiza strukturalna oparta na mikrotomografii komputerowej nagiego szczura Model złamania kręgów związanego z osteoporozą

Related Videos

8.6K Views

Leczenie siarczanem wapnia obciążonym wankomycyną i autogenną kością w ulepszonym króliczym modelu infekcji kości

09:09

Leczenie siarczanem wapnia obciążonym wankomycyną i autogenną kością w ulepszonym króliczym modelu infekcji kości

Related Videos

9.4K Views

Profil zgodności biologicznej biomateriałów do regeneracji kości

10:28

Profil zgodności biologicznej biomateriałów do regeneracji kości

Related Videos

13.3K Views

Pomiar przebudowy kości i odtworzenie mikrośrodowiska guz-kość przy użyciu kokultury kalwarii i histomorfometrii

08:24

Pomiar przebudowy kości i odtworzenie mikrośrodowiska guz-kość przy użyciu kokultury kalwarii i histomorfometrii

Related Videos

7.3K Views

Tworzenie modelu ubytku ubytku ubytku w kości korowej kości udowej szczura

02:56

Tworzenie modelu ubytku ubytku ubytku w kości korowej kości udowej szczura

Related Videos

1.3K Views

Kompleksowa charakterystyka mineralizacji tkanek w modelu ex vivo

07:29

Kompleksowa charakterystyka mineralizacji tkanek w modelu ex vivo

Related Videos

1.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code