April 4th, 2021
To badanie przedstawia protokoły dla dwóch półautomatycznych metod analizy aktywności lokomotorycznej u robaków C. elegans complex I disease gas-1(fc21), a mianowicie ZebraLab (test o średniej przepustowości) i WormScan (test o wysokiej przepustowości) i dostarcza analizy porównawczej wśród szerokiego wachlarza metod badawczych do ilościowego określenia zachowania nicieni i zintegrowanej funkcji nerwowo-mięśniowej.
Protokół ten wykorzystuje dwa różne półautomatyczne testy do szybkiego ilościowego określenia aktywności lokomotorycznej C.elegans w płynnym podłożu i może być potencjalnie stosowany do badań przesiewowych leków w modelach choroby C. elegans. Głównymi zaletami tych dwóch technik są łatwość użycia i łatwość odtwarzalności. Obie techniki mają potencjał do oceny wpływu leków na zachowanie robaków przy zmiennej przepustowości.
Te testy ruchliwości są przydatne do oceny aktywności lokomotorycznej modeli chorób mitochondrialnych C.elegans, w których układ nerwowo-mięśniowy zwierząt jest upośledzony. Aby przeanalizować aktywność lokomotoryczną C.elegans w ciekłym podłożu na szkiełkach po zsynchronizowaniu kontroli w zmutowanych szczepach robaków na płytkach NGM z i bez leczenia farmakologicznego interesującego dla etapu L4, użyj kilofa ślimakowego i stereomikroskopu, aby wybrać pięć robaków na szczep i kondycjonować do pojedynczych 20 mikrolitrowych kropli roztworu S. bazalu na szkiełku podstawowym. Dodaj robaki z tych samych warunków eksperymentalnych z różnych płytek NGM do wielu kropel na tym samym szkiełku, aby uzyskać wiele powtórzeń technicznych.
Po zebraniu wszystkich robaków pozwól zwierzętom zaaklimatyzować się na szkiełku przez jedną minutę w temperaturze pokojowej, a następnie rejestruj aktywność pływania robaków w każdej kropli przez jedną minutę przy 15 klatkach na sekundę na kroplę. Aby przeanalizować zarejestrowaną aktywność lokomotoryczną C.elegans za pomocą oprogramowania ZebraLab, użyj opcji ZEBRALAB AVI, aby przesłać filmy do oprogramowania. Kliknij opcję Kwantyzacja za pomocą plików AVI.
Aby utworzyć nowy protokół, wybierz Parametry, Parametry protokołu i Czas, a następnie ustaw czas trwania eksperymentu na jedną minutę. Wybierz opcję Brak przedziału czasu i odznacz opcję Okres integracji zgodnie z żądanymi danymi wyjściowymi, a następnie wybierz Plik i Otwórz film, aby przesłać każdy wcześniej nagrany plik wideo. Aby zbudować pojedynczy obszar wykrywania, użyj narzędzia okręgu, aby utworzyć obszar wokół całej kropli cieczy, w której znajdują się robaki.
Zostanie wykryta aktywność wszystkich robaków w wybranym obszarze. Aby wskazać odległość do kalibracji, narysuj poziomą linię od lewej do prawej od obszaru wideo i wybierz opcję Kalibracja, Rysuj i Zastosuj do grupy. Aby umożliwić wykrywanie wszystkich różnych szczepów robaka C.elegans, które mają zostać przeanalizowane, usuń zaznaczenie ikony Obszar i dostosuj czułość wykrywania w Progu aktywności.
Aby zobrazować ślady pozostawione przez zwierzęta podczas analizy aktywności, ustaw skalę wyświetlania na 70 i wybierz opcję Zastosuj do grupy. Aby przeanalizować filmy, kliknij przycisk Odtwórz, a następnie wybierz opcję Eksperymentuj i Wykonaj, aby wprowadzić nazwę pliku wideo. Po zapisaniu pojawi się okno z pytaniem, czy analizować wideo z maksymalną prędkością komputera.
Kliknij przycisk Tak. Otworzy się okno uruchomionego eksperymentu. Kliknij przycisk Start.
Po zakończeniu analizy nagrania kliknij przycisk Eksperymentuj i zatrzymaj się, aby zapisać analizowaną aktywność w droplecie w arkuszu kalkulacyjnym. Aby przeanalizować aktywność lokomotoryczną C.elegans w płynnym podłożu w formacie 96-dołkowej płytki, gdy robaki osiągną stadium L4, dodaj 50 mikrolitrów 2% masy na objętość pożywki E. coli OP50 i S. bazalnej do każdej studzienki przezroczystej 96-dołkowej mikropłytki z płaskim dnem. Użyj mikroskopu stereoskopowego, aby ręcznie wybrać 15 zsynchronizowanych robaków na dołek z 96-dołkowej płytki i pozwól robakom zaaklimatyzować się przez 20 minut.
Pod koniec okresu aklimatyzacji użyj standardowego skanera płaskiego, aby zeskanować każdą mikropłytkę dwa razy w czasie krótszym niż 10 sekund między skanami Aby przeanalizować skany, użyj oprogramowania typu open source, aby wyrównać dwa sekwencyjne skany i uzyskać dane o zmianie pikseli między dwoma obrazami oraz względny wynik skanowania robaka w celu określenia zmian w odpowiedzi lokomotorycznej na podstawie natężenia światła wytwarzanego przez skaner po ustawieniu na piksel próg wynoszący pięć. W tej analizie aktywności lokomotorycznej C.elegans w pojedynczej kropli płynnego podłoża, robaki z chorobą mitochondrialną z kompleksem I wykazały znaczny 38% spadek aktywności lokomotorycznej w stadium L4 w porównaniu z robakami typu dzikiego. Podobnie, analiza skanów robaków w tych samych populacjach wykazała znaczne zmniejszenie aktywności lokomotorycznej u robaków modelowych w stadium L4 w porównaniu z robakami N2 Bristol typu dzikiego.
Tę utratę aktywności lokomotywy zaobserwowano również u dorosłych robaków z chorobą mitochondrialną kompleksu I w pierwszym stadium, co oceniono za pomocą analizy skanów robaków. Ważne jest, aby pamiętać o użyciu odpowiedniej liczby robaków podczas ustawiania każdego testu. Po tej procedurze nasze laboratorium często przeprowadza badania przesiewowe na obecność narkotyków.
Te dwie techniki są stosowane w naszym laboratorium do oceny wpływu leków będących przedmiotem zainteresowania na aktywność robaków w przedklinicznych modelach zwierzęcych choroby mitochondrialnej.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
To badanie prezentuje protokoły dla dwóch półautomatycznych podejść do analizy aktywności ruchowej u robaków C. elegans z chorobą kompleksu I gas-1 (fc21), a mianowicie ZebraLab i WormScan. Te techniki pozwalają na ilościową ocenę zachowania nicieni i zintegrowaną funkcję nerwowo-mięśniową.
Quantitative assessment of locomotor activity in Caenorhabditis elegans models enables objective evaluation of neuromuscular phenotypes relevant to mitochondrial disease. Semi-automated methods like ZebraLab and WormScan provide scalable, reproducible platforms for preclinical drug screening and mechanistic de-risking in translational research. These approaches support predictive confidence and portfolio triage by standardizing behavioral phenotyping across experimental conditions.
These semi-automated locomotor assays integrate from early discovery through lead identification and preclinical research, supporting hypothesis testing and compound triage in mitochondrial disease models.