RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/63170-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Kluczową umiejętnością w modelowaniu biomolekularnym jest wyświetlanie i opisywanie aktywnych miejsc w białkach. Technika ta została zademonstrowana przy użyciu czterech popularnych darmowych programów do wizualizacji makromolekularnej: iCn3D, Jmol, PyMOL i UCSF ChimeraX.
Wizualizacja makrocząsteczek biologicznych jest kluczową umiejętnością dla studentów i profesjonalistów w naukach biologicznych. W tym protokole pokazujemy, jak modelować miejsce aktywne enzymu glukokinazy za pomocą czterech ogólnodostępnych programów do modelowania molekularnego. W tym samouczku przedstawiono kilka kroków protokołu dla każdego programu, który obejmuje wybór związanych ligandów i użycie ligandów do wyświetlania aminokwasów i cząsteczek wody w promieniu pięciu angstremów.
Informacje pomocnicze do tego manuskryptu zawierają dedykowany film wideo dla każdego programu, który szczegółowo opisuje wszystkie kroki protokołu wraz z dalszymi wyjaśnieniami. Struktura będzie modelować PDBID. 3FGU reprezentuje kompleks katalityczny enzymu glukokinazy.
Miejsce aktywne enzymu jest związane z dwoma jego substratami, beta-D-glukozą, która dała identyfikator BGC i jonem magnezu, MG. Dodatkowo ten analog substratu, kwas fosforoaminofosforowy, ester adenylanowy, ANP jest związany z miejscem aktywnym glukokinazy. Ten niehydrolizowalny analog trifosforanu adenozyny, ATP, zapobiega wystąpieniu reakcji fosforylacji, która wychwytuje kompleks miejsca aktywnego przed katalizą. Interfejs programu do modelowania UCSF ChimeraX zawiera menu rozwijane, pasek narzędzi, przeglądarkę konstrukcji i wiersz poleceń.
Rozpoczniemy protokół od kroku 1.4, wybierając pozostałości w obrębie pięciu angstremów, aby zdefiniować miejsce aktywne. Aby wybrać ligandy, naciśnij Control, Shift i kliknij dowolny atom lub wiązanie w każdym z trzech ligandów. Naciskaj strzałki w górę, aż wszystkie trzy ligandy zostaną podświetlone zieloną poświatą.
Zdefiniuj wybór do wykorzystania w przyszłości, klikając w menu rozwijanym, wybierz definiuj selektor, wpisz ligandy jako nazwę wyboru i kliknij OK. Ponownie, korzystając z menu wyboru, wybierz strefę. Przełącz to na pozostałości i upewnij się, że górne pole jest zaznaczone.
Kliknij w porządku. Zauważ, że części kreskówki w promieniu pięciu angstremów od tych ligandów są podświetlone. Aby wyświetlić łańcuchy boczne jako pałeczki i pokazać cząsteczki wody w miejscu aktywnym, użyj menu wiązań atomowych akcji, aby je pokazać.
Lub włącz je za pomocą tych przycisków tutaj. Aby usunąć zaznaczenie, kliknij w dowolnym miejscu pustego miejsca. Końcowym wynikiem tego protokołu powinien być model z miejscem aktywnym białka i ligandami pokazanymi jako pałeczki w kontrastowy sposób.
Kluczowe oddziaływania wiązania biegunowego są pokazane liniami przerywanymi, a niektóre pozostałości tworzące kontakty są oznaczone. Interfejs iCn3D zawiera menu rozwijane, przeglądarkę struktury i dziennik poleceń. W tym widoku są wyświetlane menu podręczne wybierania zestawów i sekwencji oraz adnotacji, które pojawiają się, gdy użytkownik wykonuje polecenia, które ich wymagają.
Rozpoczniemy protokół od kroku 2.4, wybierając reszty w obrębie pięciu angstremów, aby zdefiniować miejsce aktywne. Aby wybrać ligandy, użyj menu rozwijanego wyboru i kliknij wybierz w 3D, upewnij się, że pozostałość jest zaznaczona. Przytrzymując przycisk alt na komputerze PC lub przycisk opcji na komputerze Mac, kliknij pierwszy ligand.
Następnie naciśnij Control i kliknij na pozostałe dwa ligany, aby dodać je do zaznaczenia. Zapisz wybór za pomocą menu rozwijanego, kliknij wybierz, zapisz wybór, wprowadź nazwę i kliknij Zapisz. Pojawi się teraz wyskakujące menu wyboru zestawów z wybranymi trzema ligandami.
Teraz wybierz reszty w promieniu pięciu angstremów od ligandów. Skorzystaj z menu rozwijanego, wybierz według odległości. W wyświetlonym menu podręcznym zmień drugi element włóczni o promieniu na pięć angstremów, wpisując w bloku, kliknij display.
A następnie zamknij okno, klikając X w prawym górnym rogu. Zapisz aktywną witrynę z pięcioma angstromami, klikając menu rozwijane, wybierz Zapisz wybór i użyj klawiatury, aby wprowadzić nazwę. Następnie kliknij Zapisz.
Teraz utwórz nowe zaznaczenie, które łączy te dwa zestawy. Można je łączyć w menu kontekstowym wyboru zestawów. Na komputerze PC kliknij dwa zestawy z wciśniętym Control lub kliknij polecenie na komputerze Mac.
Ponownie kliknij menu rozwijane, wybierz opcję Zapisz wybór i wpisz nową nazwę, a następnie kliknij przycisk Zapisz. Aby pokazać interakcje, takie jak wiązania wodorowe, użyj menu analizy i wybierz interakcje. Interesować nas będą tu tylko wiązania wodorowe i mostki solne.
Więc odznaczymy resztę z nich. Wybierzemy trzy ligandy. A dla drugiego zestawu, pozostałości w obrębie pięciu angstremów.
Kliknij opcję Interakcje wyświetlania 3D i zamknij okno. Pokazuje to niektóre pozostałości, które oddziałują ze sobą, ale nie pokazuje całego miejsca aktywnego pięciu angstremów. Aby to wyświetlić, ponownie użyj menu wyboru zestawów.
Kliknij pięć pełnych angstremów, a następnie w menu rozwijanym kliknij styl boczne łańcuchy, drążki. Aby zastosować kolorowanie CPK, kliknij menu rozwijane koloru i kliknij atom. Końcowym wynikiem protokołu powinien być model, który wygląda tak, z miejscem aktywnym białka i ligandem pokazanym jako pałeczki pokolorowane w kontrastowy sposób.
Ważne interakcje wiążące są pokazane liniami przerywanymi, a wszystkie pozostałości w jednym z wyborów, który został utworzony podczas protokołu, są oznaczone. Interfejs Jmol zawiera menu rozwijane, pasek narzędzi, przeglądarkę struktury, menu kontekstowe oraz konsolę Jmol zawierającą wiersz poleceń. Protokół Jmol rozpoczynamy od kroku 3.4, wybierając reszty w obrębie pięciu angstremów, aby zdefiniować miejsce aktywne.
Konsola Jmol to najlepszy sposób na wybór pozostałości w promieniu pięciu angstremów. Wpisz to polecenie, aby wybrać reszty w promieniu pięciu angstremów od trzech ligandów. Wybierane są 193 atomy, ale nie reprezentują one pełnych reszt aminokwasowych.
Aby je wybrać, użyj wpisanego polecenia, wybierz w ciągu (grupa, wybrane) i naciśnij enter. Zwróć uwagę, że pojawiają się dodatkowe otoczki zaznaczenia. Aby pokazać te pozostałości jako patyki, kliknij prawym przyciskiem myszy, aby wyświetlić menu podręczne, najedź kursorem na styl, schemat, a następnie kliknij patyczki.
Zauważ, że jest tu jeszcze kilka pustych aureoli. Są to cząsteczki wody w miejscu aktywnym. Aby wybrać tylko cząsteczki wody, możemy ponownie wykonać to polecenie, a następnie je zmodyfikować.
Kliknij w konsoli, a następnie użyj strzałek w górę, aby znaleźć to polecenie i kliknij Enter, aby je ponownie wykonać. Aby wyświetlić cząsteczki wody jako atomy, chcemy usunąć wybór liganda i białka. W tym celu wpiszemy dwa polecenia.
Nasze ligany są uważane za grupy hetero, ale woda jest również uważana za jedną z nich. Tak więc w tym poleceniu musimy zdefiniować, że nie usuwamy wody. Naciśnij enter, a teraz wybrane są tylko cząsteczki wody.
Kliknij rozwijane menu wyświetlania, najedź kursorem na atom i kliknij 20%promienia van der Waalsa. Zielony jon magnezu jest nadal pokazany w postaci patyczków. Częściej jony są przedstawiane jako kule.
Kliknij w konsoli Jmol, a następnie wpisz wybierz MG, a następnie wypełnij spację 50%Ligandy wewnątrz łańcuchów są pokolorowane identycznie. Aby odróżnić je od siebie, warto ponownie pokolorować ligandy. W konsoli wykonam polecenie wielowierszowe, które skopiowałem i wkleiłem ze ściągawki, którą rozwijam w dodatkowym filmie Jmol.
Wynikiem tego protokołu powinien być model, który wygląda tak, z miejscem aktywnym białka pokazanym jako pałeczki. A ligandy pokazały nam patyczki w łagodniejszej kolorystyce. Żółte linie wskazują interakcje wiążące, a poszczególne pozostałości są oznaczone zgodnie z potrzebami.
Interfejs PyMOL zawiera menu rozwijane, przeglądarkę struktury, panel nazw obiektów i menu sterowania myszą. Główny wiersz poleceń jest również oznaczony na tym rysunku. Rozpoczynamy protokół pierwotny w kroku 4.4, wybierając reszty w obrębie pięciu angstremów, aby zdefiniować miejsce aktywne.
Aby wybrać ligandy, kliknij na każdy z nich. Pojawi się nowy wybór, którego nazwę można zmienić, klikając przycisk A. Za pomocą klawiatury usuń litery sele i wpisz w ich miejsce ligans.
Naciśnij Enter. Możemy użyć tego zaznaczenia, aby zdefiniować obszar wokół niego. Zacznij od kliknięcia przycisku A i wybierz duplikat pozycji menu.
W tym nowym zaznaczeniu, sel01, kliknij A i wybierz pozycję menu zmiany nazwy. Za pomocą klawiatury usuń istniejące litery i wpisz active. To wciąż wybieranie naszych trzech ligandów, więc będziemy musieli je ponownie zmodyfikować, używając przycisku akcji A.
Kliknij przycisk, wybierz modyfikuj i rozwiń zaznaczenie o pięć kątów. Teraz udało nam się uchwycić ligandy i reszty w promieniu pięciu angstremów. Litera S na przycisku S oznacza pokaz.
Kliknij na to, aby wyświetlić białko na różne sposoby. Pokażemy tę lukrecję w postaci patyczków. Kliknij puste miejsce, aby wyczyścić zaznaczenie.
W ten sposób udało się uchwycić aminokwasy w promieniu pięciu angstremów, ale nie wodę. Możemy ponownie zduplikować zaznaczenie, a teraz zmodyfikować je tak, aby wybrało tylko wodę. W akcjach Przycisk A zduplikuj.
Pojawi się wybór 2. Zmieńmy to na aktywną wodę. Tym razem użyjemy przycisku A do modyfikacji, dookoła, aby wybrać atomy wokół naszego wyboru.
Atomy w obrębie czterech angstremów. W ten sposób wyselekcjonowano wodę, ale także niektóre atomy łańcuchów bocznych. Aby to jeszcze bardziej zmodyfikować, użyj przycisku A, aby zmodyfikować i ograniczyć do rozpuszczalnika.
Teraz widzimy, że tylko cząsteczki wody są oświetlone. Ponownie w przycisku A możemy zastosować ustawienie wstępne. Wybierz ustawienie wstępne, piłkę i kij, a teraz cząsteczki wody są wyświetlane jako kule.
Efektem końcowym protokołu jest model, który wygląda tak, z miejscem aktywnym w ligandach pokazanym jako pałeczki pokolorowane w kontrastowy sposób. Żółte linie przerywane pokazują interakcje wiązania biegunowego, a poszczególne pozostałości są oznaczane za pomocą wyborów utworzonych w panelu nazw obiektów. Błędy w wykonaniu protokołu mogą prowadzić do nieoptymalnych wyników.
Na przykład całe białko jest wyświetlane w postaci patyczków. Aby rozwiązać problem, użytkownik będzie musiał najpierw ukryć reprezentację drążka dla całej konstrukcji. A następnie ponownie wyświetl reprezentację drążka tylko dla obiektu o nazwie aktywny za pomocą przycisku S.
Tutaj modele wygenerowane za pomocą każdego programu są pokazane obok siebie. Chociaż istnieją różnice w wyświetlaniu enzymu, te same kluczowe cechy i interakcje można zaobserwować w każdym z czterech modeli. Użytkownik zainteresowany opanowaniem jednego z programów zawierających wiersz poleceń chce nauczyć się stosować i modyfikować wpisane polecenia.
Jak wspomniałem w protokole Jmol, przydatnym narzędziem jest ściągawka z poleceniami. Zwykły plik tekstowy zawierający często używane kody, do których można się odwoływać. Aby stać się zaawansowanym użytkownikiem, warto zrozumieć, które części protokołu można dostosowywać i modyfikować.
Przy odrobinie wprawy protokoły te można zastosować do modelowania dowolnego miejsca aktywnego enzymu, które jest przedmiotem zainteresowania.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
11:26
Related Videos
9.8K Views
09:42
Related Videos
9.4K Views
10:27
Related Videos
13K Views
07:33
Related Videos
14.9K Views
05:56
Related Videos
1.7K Views
09:30
Related Videos
2K Views
05:00
Related Videos
1.9K Views
08:49
Related Videos
1.1K Views
10:29
Related Videos
2.2K Views
08:09
Related Videos
11.2K Views