-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Elektropenetrografia AC-DC do badania zachowań sondujących i połykanych komarów Culex tarsalis...
Elektropenetrografia AC-DC do badania zachowań sondujących i połykanych komarów Culex tarsalis...
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
AC-DC Electropenetrography for the Study of Probing and Ingestion Behaviors of Culex tarsalis Mosquitoes on Human Hands

Elektropenetrografia AC-DC do badania zachowań sondujących i połykanych komarów Culex tarsalis na ludzkich rękach

Full Text
855 Views
07:42 min
November 29, 2024

DOI: 10.3791/66877-v

Anastasia M. W. Cooper1,2, Kaitlin Pfeiffer1, Kathryn Reif2, Kristopher Silver1, Dana Mitzel3

1Department of Entomology,Kansas State University, 2Department of Pathobiology,Auburn University, 3National Bio and Agro-Defense Facility,USDA Agricultural Research Service

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study investigates the probing and ingestion behaviors of Culex tarsalis mosquitoes during blood feeding on human hands. Utilizing AC-DC electropenetrography (EPG), the researchers aim to elucidate how these behaviors influence pathogen transmission and disease pathology.

Key Study Components

Research Area

  • Vector behavior and pathogen transmission.
  • Interactions between arboviruses and blood-feeding patterns.
  • Blood-feeding arthropods and disease pathology.

Background

  • EPG has traditionally studied plant-feeding insects.
  • New methods enable non-invasive studies of mosquito feeding behaviors.
  • The challenge remains in correlating EPG waveforms with specific biological activities.

Methods Used

  • AC-DC EPG for recording feeding behaviors.
  • Culex tarsalis mosquitoes as the model organism.
  • Detailed procedural development for mosquito wiring and monitoring.

Main Results

  • Novel insights into the mechanics of mosquito feeding were obtained.
  • Interpretative waveforms correlated with probing behaviors.
  • Experimental evidence supports the ongoing hypotheses regarding mosquito feeding and pathogen interactions.

Conclusions

  • The study demonstrates the intricate behaviors of mosquitoes during feeding and their implications for pathogen transmission.
  • Findings are relevant for developing management strategies against vector-borne diseases.

Frequently Asked Questions

What is electropenetrography (EPG)?
EPG is a technique used to study and record the feeding behaviors of various arthropods, including mosquitoes, by measuring electrical signals generated during their probing activities.
Why is Culex tarsalis significant in this research?
Culex tarsalis is a key mosquito vector for several arboviruses, making its feeding behaviors crucial for understanding disease transmission dynamics.
How does this research contribute to public health?
By revealing how mosquitoes feed and transmit pathogens, this research can inform strategies to mitigate the spread of vector-borne diseases.
What challenges do researchers face when using EPG?
Key challenges include correlating the recorded electrical signals with specific biological activities such as salivation and pathogen transmission during feeding.
Are the techniques used in this study applicable to other insects?
Yes, while the techniques here focus on mosquitoes, the EPG methods can potentially be adapted for other blood-feeding insects as well.
What are the expected outcomes of this research?
The study aims to improve understanding of mosquito feeding behaviors, leading to enhanced pathogen control strategies and better management of vector populations.
Is this research invasive for the mosquitoes?
No, the AC-DC EPG methods used are designed to be non-invasive, allowing for detailed observation without harming the mosquitoes.

Opisano procedury badania zachowań komarów Culex tarsalis na ludzkich rękach za pomocą elektropenetracji AC-DC.

Nasza grupa używa EPG do zbadania, w jaki sposób arbowirusy i inne czynniki wpływają na zachowania związane z sondowaniem i spożyciem, które występują podczas karmienia krwią, ponieważ wiele patogenów manipuluje zachowaniem wektora, aby zwiększyć transmisję. Zasadniczo badamy, co dzieje się podczas ukąszenia komara i jak te zachowania wpływają na przenoszenie patogenów i patologię choroby. Historycznie rzecz biorąc, EPG był używany głównie do badania owadów odżywiających rośliny.

Niedawny rozwój procedur AC-DC EPG dla stawonogów żywiących się krwią pozwala nam badać zachowania związane z sondowaniem i spożyciem, które występują podczas karmienia krwią w niespotykanych dotąd szczegółach, bez konieczności stosowania procedur inwazyjnych, co może pozwolić na opracowanie nowych strategii zarządzania. Największym wyzwaniem związanym ze stosowaniem EPG u stawonogów żywiących się krwią jest korelacja kształtów fal z aktywnościami biologicznymi, takimi jak ślinotok i przenoszenie patogenów. Mamy mocne hipotezy oparte na elektrycznym pochodzeniu fal i literaturze, ale nadal potrzebujemy dowodów empirycznych.

Na początek przełóż końcówkę szklanej pipety pastwiskowej przez płomień, lekko obracając pipetę. Sprawdź średnicę i powtórz proces, aby doprowadzić pipetę do żądanego rozmiaru. Aby wykonać aspirator do owadów, przykryj duży koniec zmodyfikowanej pipety pastwiskowej moskitierą i włóż do silikonowej rurki połączonej z aspiratorem laboratoryjnym, zabezpieczając połączenie taśmą izolacyjną.

W przypadku elektrod rejestrujących owiń blok pianki świeżą folią do trzymania przygotowanych kikutów owadów i komarów drutowych. Zeskrob górny jeden centymetr drutu miedzianego żyletką, aż będzie błyszczący ze wszystkich stron. Następnie pokrój złoty drut o średnicy 0,025 milimetra na kawałki o długości od czterech do pięciu centymetrów.

Trzymaj drut w samozamykających się kleszczach zamaskowanych taśmą, aby uniknąć wgniecenia drutu, delikatnie owiń złoty drut trzy razy wokół drutu miedzianego kikuta owada, zaczynając wzdłuż czystej końcówki drutu miedzianego. Użyj sondy preparucyjnej, aby nałożyć srebrny klej, aby utrzymać złoty drut na miejscu. Po upewnieniu się, że nie ma luźnego końca, umieść kikut owada w piance, aż klej wyschnie.

Następnie delikatnie pogłaszcz złoty drut przymocowany do kikuta owada, aby uformować go w długi, delikatny łuk i przyciąć drut do około 2,5 do 3 centymetrów długości. Pracując pod mikroskopem preparacyjnym, przytrzymaj kikut owada za mosiężny gwóźdź ręką niedominującą, podczas gdy złoty drut dotyka stolika mikroskopu preparacyjnego i chwyć sam koniec złotego drutu kleszczami drobnopunktowymi za pomocą dominującej ręki, użyj kleszczyków drobnopunktowych, aby skrzyżować końcówkę złotego drutu nad drutem miedzianym kikuta owada w pobliżu klejonego obszaru. Następnie delikatnie pociągnij za kikut owada, aż złoty drut utworzy małą złotą pętlę wokół kleszczyków z cienkim punktem.

Zwolnij złoty drut i ostrożnie wyjmij kleszcze. Trzymając kikut owada w niedominującej ręce, chwyć złotą pętlę cienkimi kleszczami punktowymi. Pociągnij za kikut owada, jednocześnie lekko obracając kleszcze od króćca, aż pętla zgnie się pod kątem 90 stopni do szyjki drutu.

Upewnij się, że złota pętla jest całkowicie zamknięta przed powrotem kikuta owada do bloku piankowego. Na początek przygotuj aspirator do owadów i elektrody rejestrujące do okablowania komarów. Ułóż znieczulone komary na plecach na podkładce anestezjologicznej tak, aby ich brzuchy były skierowane w stronę badacza.

Po umieszczeniu taśmy laboratoryjnej nałóż na taśmę 0,5 centymetra kroplę świeżo wymieszanego srebrnego kleju. Następnie zassaj brzuch znieczulonego komara do aspiratora. Używając ssania tylko na tyle długo, aby osadzić brzuch na miejscu i przytrzymaj komara pod lunetą sekcyjną nad srebrnym klejem za pomocą aspiratora.

Po zanurzeniu szpilki minuchin w srebrnym kleju nałóż cienką warstwę na przedplecze komara. Szybko zanurz złotą pętlę na końcówce elektrody nagrywającej w srebrnym kleju. Umieść go na srebrnym miejscu kleju na przedpleczu komara i kołysz pętlą w przód iw tył, aby upewnić się, że przylega równo.

Następnie umieść kikut owada w piance pod kątem, który pozwoli komarsowi wygodnie stać, gdy się obudzi. Po okablowaniu żądanej liczby komarów umieść blok pianki w pudełku do przechowywania i utrzymuj go. Aby rozpocząć, przymocuj elektrody rejestrujące do komarów w dniu elektropenetografii lub eksperymentu EPG.

Gdy host znajdzie się na miejscu, obróć głowicę amplifier na bok. Po usunięciu przewodowego komara włóż mosiężny kołek króćca owadów do portu w głowicy amplifier. Rozpocznij nagrywanie za pomocą oprogramowania do zarządzania sprzętem.

Umieść głowicę amplifier nad ręką, aby komar mógł wygodnie stać i sondować. Włącz głowicę amplifier, gdy jest uziemiony. Dostosuj pozycję ręki gospodarza zgodnie z potrzebami, aby pomóc w pomyślnym pomiarze.

Użyj oprogramowania do zarządzania sprzętem, aby dokonywać obserwacji ze znacznikami czasu dotyczących reakcji hosta, zachowań komarów, zmian wzmocnienia i innych istotnych zdarzeń podczas nagrywania. Dostosuj położenie sygnałów na ekranie i wzmocnienie oprogramowania za pomocą oprogramowania do zarządzania sprzętem, aby oba sygnały były wyraźnie widoczne. Aby wyregulować wzmocnienie sprzętowe, przerzuć kanał o jeden zakres i przełączniki mnożnika.

Jeśli ta regulacja nie jest wystarczająca, przekręć pokrętło wzmocnienia kanału pierwszego w prawo lub w lewo, aby odpowiednio zwiększyć lub obniżyć wzmocnienie, aby uniknąć szczytów lub niewyraźnych szczytów. Aby dostroić przesunięcie, przestaw przełącznik przesunięcia kanału o jeden kanał na skrzynce sterowniczej na neg. Następnie obracaj pokrętłem przesunięcia kanału o jeden, aż szczyty w sygnałach przed i po wystąpią w tym samym kierunku na ekranie komputera.

Jeśli komar znajduje się w środku sondy, pozwól mu skończyć. Jeśli sonda nie zostanie wykonana w ciągu 10 minut, wyłącz głowicę amplifier. Poproś gospodarza, aby ostrożnie usunął rękę, a następnie usuń komara za pomocą dołączonego kikuta owada.

Na koniec wymień komar w pudełku do przechowywania. Nagrania AC-DC EPG komarów Culex tarsalis żerujących na ludzkich dłoniach wygenerowały interpretowalne przebiegi nadające się do klasyfikacji na rodziny, typy i podtypy.

Explore More Videos

Elektropenetracja AC-DC zachowania sondujące Culex tarsalis biologia odżywiania krwią choroby przenoszone przez komary procedura nieinwazyjna sygnały elektryczne zachowania żywieniowe komarów Aedes aegypti insektycydy interakcje z gospodarzami skutki patogenów

Related Videos

System transdukcji alfawirusów: narzędzia do wizualizacji infekcji u wektorów komarów

07:12

System transdukcji alfawirusów: narzędzia do wizualizacji infekcji u wektorów komarów

Related Videos

15.5K Views

Elektroantennograficzny test biologiczny jako narzędzie przesiewowe w kierunku substancji lotnych roślin żywicielskich

12:43

Elektroantennograficzny test biologiczny jako narzędzie przesiewowe w kierunku substancji lotnych roślin żywicielskich

Related Videos

14.2K Views

Zapisy fizjologiczne i sekwencjonowanie RNA wyrostków smakowych komara Aedes aegypti wywołującego żółtą febrę

09:09

Zapisy fizjologiczne i sekwencjonowanie RNA wyrostków smakowych komara Aedes aegypti wywołującego żółtą febrę

Related Videos

8.4K Views

Wymuszone wydzielanie śliny jako metoda analizy kompetencji wektorowych komarów

05:03

Wymuszone wydzielanie śliny jako metoda analizy kompetencji wektorowych komarów

Related Videos

10.3K Views

Wektorowe analizy kompetencyjne komarów Aedes aegypti z wykorzystaniem wirusa Zika

10:35

Wektorowe analizy kompetencyjne komarów Aedes aegypti z wykorzystaniem wirusa Zika

Related Videos

3.6K Views

Badanie aktywności neuropeptydów i innych regulatorów układu wydalniczego u dorosłego komara

11:30

Badanie aktywności neuropeptydów i innych regulatorów układu wydalniczego u dorosłego komara

Related Videos

3.4K Views

Przewodnik krok po kroku po elektroantennografii komarów

06:39

Przewodnik krok po kroku po elektroantennografii komarów

Related Videos

6.3K Views

Opracowanie biohybrydowej sondy mikroskopowej sił atomowych opartej na żądłach komarów

04:51

Opracowanie biohybrydowej sondy mikroskopowej sił atomowych opartej na żądłach komarów

Related Videos

1.6K Views

Badania wizualne Wrażliwość na prędkość i kierunek ruchu w Jaszczurki

12:30

Badania wizualne Wrażliwość na prędkość i kierunek ruchu w Jaszczurki

Related Videos

12K Views

Bodźce generowane komputerowo na modelu zwierzęcym

26:43

Bodźce generowane komputerowo na modelu zwierzęcym

Related Videos

11.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code