Aqui nós descrevemos um fluorescente todo-mount In situ Protocolo de hibridização (FISH) para determinar as propriedades de expressão e localização de RNAs expressas durante a embriogênese na mosca da fruta, Drosophila melanogaster.
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Artigo de método
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Aqui nós descrevemos um fluorescente todo-mount In situ Protocolo de hibridização (FISH) para determinar as propriedades de expressão e localização de RNAs expressas durante a embriogênese na mosca da fruta, Drosophila melanogaster.
Avaliar o padrão de expressão de um gene, assim como as propriedades de localização subcelular dos seus transcritos de ARN, são características chave para a compreensão da sua função biológica durante o desenvolvimento. RNA de hibridação in situ (RNA-ISH) é um poderoso método utilizado para visualização de propriedades de distribuição de RNA, seja nos organismos, níveis celulares ou subcelular 1. RNA-ISH baseia-se na hibridação de uma sonda marcada de ácido nucleico (por exemplo, ARN anti-sentido, oligonucleótidos) complementar à sequência de um mRNA ou de um não-codificantes de ARN alvo de interesse 2. À medida que o processo requer a informação de sequência primária sozinho para gerar sondas específicas de sequência, pode ser universalmente aplicado a uma ampla gama de organismos e amostras de tecido 3. De facto, uma série de estudos de grande escala ISH foram implementados para documentar a expressão do gene de ARN e dinâmica de localização em vários organismos modelo, o que levou àestabelecimento de recursos comunitários importantes 4-11. Embora uma variedade de etiquetagem da sonda e estratégias de detecção têm sido desenvolvidos ao longo dos anos, o uso combinado de reagentes de detecção marcados por fluorescência e as etapas de amplificação enzimática de sinal oferecem melhorias significativas na sensibilidade e resolução do processo 12. Aqui, nós descrevemos um método fluorescente optimizado em hibridização in situ (FISH) utilizando amplificação de sinal de tiramida (TSA) para visualizar a expressão de RNA e da dinâmica de localização em embriões de Drosophila faseados. O procedimento é realizado em formato de 96 poços da placa de PCR, o que facilita grandemente o processamento simultâneo de um grande número de amostras.
1. Preparação da sonda de ARN
Resumo: A seção seguinte descreve os passos necessários para fazer sondas digoxigenina (Dig)-rotulados de RNA suficiente para os peixes. O primeiro passo envolve a clonagem ou PCR amplificar uma sequência correspondente à região transcrita de um gene de interesse que irá ser utilizado para gerar uma sonda específica da sequência. Isto pode ser conseguido por clonagem do primeiro segmento de gene em um plasmídeo no qual o sítio de clonagem múltipla é flanqueado por elementos do promotor de bacteriófago (T7, T3 ou SP6), que pode então servir como um modelo para PCR, utilizando iniciadores que fla....
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Quando realizada com sucesso, este procedimento oferece um nível notavelmente melhorada de detalhe na análise espaço-temporal da expressão gênica e dinâmica de localização de mRNA durante a embriogênese Drosophila cedo. De fato, como ilustrado na Figura 3A para o nanico gene clássico par-regra (pista), pode-se usar este protocolo para observar eventos de expressão gênica por meio da detecção de focos transcrição nascente em grupos de núcleos expressando. Além disso, como mostr.......
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Para as etapas de síntese da sonda, que normalmente geram o escoamento sondas antisense RNA por transcrição in vitro a partir de cDNAs completos Drosophila amplificados de plasmídeos encontrados no gene Drosophila Collection (DGC), um recurso detalhada no site: http://www .fruitfly.org / DGC / index.html 14,15. Esta abordagem tem sido amplamente utilizado em estudos de grande escala ISH destinadas a expres.......
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Não há conflitos de interesse declarados.
Trabalho realizado no laboratório Lecuyer é suportado por financiamento do Conselho Nacional e Ciências da Engenharia do Canadá (NSERC), o Canadian Institutes of Health Research (CIHR) e do Fonds de Recherche en Santé du Québec (FRSQ). Fabio Alexis Lefebvre e Gaël Moquin-Beaudry são suportados por NSERC bolseiros de iniciação científica, enquanto Carole Iampietro é suportado pela irmandade Pizzagalli Angelo pós-doutorado.
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Nome do reagente | Companhia | Número de Catálogo | Comentários (opcional) |
| T7, T3 ou SP6 RNA polimerase | Fermentas Life Sciences | EP0101, EP0111, EP0131 | Kits contêm tampão de reacção. |
| DIG RNA Labeling Mix | Roche Applied Science | 11 277 073 910 | |
| RNAguard | Amersham Biosciences | 27-0816-01 | |
| Acetato de sódio 3M | |||
| Etanol a 100% frio. | |||
| Etanol a 70% frio. | |||
| Solução de lixívia de cloro diluído 1:1 com água. | |||
| Heptano | |||
| Metanol | |||
| proteinase K | Sigma Aldrich Oakville, Ontário, Canadá | Catalog No. P2308 | |
| Solução de formaldeído a 40%, recentemente preparada | |||
| PBS-Tween (PBT) | 1xPBS, 0,1% de Tween-20 | ||
| Glicina solução | 2 mg / ml de glicina em PBT | ||
| HRP conjugada com anticorpo monoclonal de ratinho anti-DIG | Jackson ImmunoResearch Laboratories Inc | 200-032 - 156 | (1/400 de uma diluição de 1 mg / ml de solução concentrada de PBTB |
| HRP-conjugado ovelha monoclonal anti-DIG | Roche Applied Science, Laval, QC | 1 207 733 | 1/500 diluição da solução de reserva em PBTB |
| A biotina conjugada com anticorpo monoclonal de ratinho anti-DIG | Jackson ImmunoResearch Laboratories Inc., West Grove, PA, EUA | 200-062-156 | (1/400 de uma diluição de 1 mg / ml de solução concentrada de PBTB |
| Estreptavidina-HRP conjugado | Molecular Probes, Eugene OR, EUA | S991 | (Diluição 1/100 de um estoque 1 ug / ml |
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