Um método baseado em imunofluorescência para quantificar o estresse de replicação em células cancerígenas

0 vistas3:37 min • July 8th, 2025

Comece com células cancerígenas carregando IdU, um substituto sintético do nucleotídeo timidina, já integrado em seu DNA. Quando essas células encontram estresse de replicação, sua síntese de DNA é interrompida, revelando IdU dentro de regiões de DNA de fita simples expostas.

Fixe as células e adicione moléculas de detergente para tornar a membrana celular permeável.

Adicione BSA para bloquear locais de ligação de anticorpos não-alvo.

Introduzir anticorpos anti-IdU que interagem com o DNA de fita simples marcado com IdU.

Adicione anticorpos secundários marcados com fluoróforo verde que têm como alvo anticorpos anti-IdU. Remova os anticorpos não ligados.

Coloque a lamínula em uma lâmina contendo um meio de montagem com um corante fluorescente - que mancha os núcleos.

Sob um microscópio de fluorescência, observe os núcleos azuis.

Os focos de fluorescência verde representam anticorpos que se ligam ao DNA de fita simples.

Conte o número de focos para quantificar o nível de estresse de replicação.

Adicione 1 mililitro de suspensão celular em lamínulas de poli-L-lisina colocadas nos poços de uma placa de 24 poços e cultive as células no meio de cultura em condições padrão. Após uma duplicação da população, aspire o meio existente da placa e pulse as células com 10 IdU micromolares para as duas duplicações populacionais subsequentes.

Para colher as células, substitua o meio por PBSTx 0,5% gelado no gelo por 5 minutos. Para fixação das células, aspire PBSTx e incube as células por 15 minutos com paraformaldeído a 3% à temperatura ambiente. Após 3 a 4 lavagens com PBS, mantenha as células fixas a 4 graus Celsius até o uso posterior.

Após a fixação, permeabilize as células usando PBSTx a 0,5% no gelo por 5 minutos, garantindo a cobertura de toda a lamínula. Após lavar as células 3 a 4 vezes com 1 mililitro de PBST a 0,2% à temperatura ambiente, aspire o PBST e bloqueie as amostras, usando 5% de BSA feito em PBS por 30 minutos em temperatura ambiente.

Para imunocoloração, prepare uma câmara umidificada colocando uma toalha de papel molhada em um Tupperware de fundo plano. Cubra a tampa da placa de 24 poços com parafilme. Coloque-o na câmara umidificada e coloque as lamínulas na tampa da placa. Adicione 60 microlitros de anticorpo primário de camundongo anti-BrdU diluído, na parte superior da lamínula.

Alternativamente, para reduzir o anticorpo da secagem e usar menos volume, coloque uma gota de anticorpo diluído no parafilme e vire a lamínula sobre ele. Em seguida, incube por 1 hora a 37 graus Celsius. Após a incubação, aspire o anticorpo primário.

Retorne as lamínulas de volta para uma placa de 24 poços e lave-as com 0,2% de PBST 4 vezes. Adicione anticorpo secundário diluído na lamínula, conforme demonstrado anteriormente, e incube por uma hora no escuro à temperatura ambiente. Rotule uma lâmina de microscópio e monte a lamínula nas lâminas com o meio de montagem DAPI. Armazene as lâminas no escuro em temperatura ambiente por 24 horas se o meio de montagem precisar ser curado ou endurecido.

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Última atualização: 29 agosto 2026