Name: Análise Quantitativa de Migração aleatória de células usando microscopia de lapso de tempo vídeo (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-05-13T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 27 s
Description: Aprenda a analisar a migração celular em tempo real usando microscopia de lapso de tempo vídeo. Este método permite medir velocidade e deslocamento de células em biologia celular e estudos de câncer.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Os autores gostariam de agradecer a Amanda Struckhoff pela ajuda inicial com o experimento. Este trabalho foi financiado por uma concessão do NIH 5RO1CA115706.

1. Preparação da placa revestida com colágeno <ol><li> Diluir colagénio para uma concentração final de 10 ug / ml em OPTI-MEM meios de comunicação. </li><li> Casaco 6 placas de poços com colagénio, pela adição de 1,5 ml a partir do passo 1 a cada poço. Incubar durante a noite a 4 ° C. </li><li> No dia seguinte, lavar a placa 2 vezes com fosfato 1x salino tamponado (PBS) e armazená-los em PBS. </li></ol> 2. Preparação de células e Sementeira em uma placa de 6 poços Nota: Use a mídia quentes e PBS para garantir condições óptimas para a movimentação das células <ol><li> Crescer MDA-MB-231 (uma linha de células de mama invasivo do cancro) escassamente em Dulbecco modificado por Eagle (DMEM) com 10% de soro fetal bovino (FBS). Neste exemplo, usamos o MDA-MB-231, no entanto, este método pode ser aplicado a qualquer aderentes cancerosas e não linhas de células cancerígenas. </li><li> Lave as células duas vezes com PBS 1x quente e recolher por tripsinização. Confira as células sob um microscópio para fazer sure que as células são adequadamente separação por tratamento com tripsina. </li><li> Recolher as células por adição de meio DMEM com 10% de FBS, suavemente girar para baixo as células a 1000 g durante 5 minutos. Ressuspender o sedimento de células suavemente em meio DMEM com FBS 10%. </li><li> Quebre o pellet celular pipetando cima e para baixo com cuidado. É importante para quebrar agrupamentos de células em células individuais, tanto quanto possível. </li><li> Contar as células e diluir até uma concentração final de 50.000 células / ml em meio DMEM com FBS 10%. Pipetar 2 ml em cada poço. </li><li> Incubar a placa a 37 ° C em um incubador de cultura de tecidos durante a noite, até começar a microscopia de lapso de tempo. </li><li> Para assegurar um amplo espaço para a migração, criar uma ferida utilizando uma ponta de pipeta, lavar a placa com 1X PBS para remover os restos (formado como resultado da ferida) e adicionar DMEM com FBS 10%. Verificar sob o microscópio para células flutuantes. Se um grande número de células são flutuantes, repita o procedimento de lavagem. Agora, o prato está pronto para ser configurado nomicroscópio para aquisição de imagem. </li></ol> 3. Instalação de microscópio e de aquisição de imagens automatizado Existem pacotes de imagem diversos softwares que controlam o microscópio para aquisição automática de imagem. Aqui, usamos Slidebook 5,0 software de imagem automáticos e aquisições são realizadas em um microscópio Olympus (Olympus IX81), acoplado a uma câmera C9100 EM-Hamamatsu, que é excelente para aplicações em células vivas, onde a velocidade de aquisição e fototoxicidade mínima é obrigatória. O sistema inclui um estágio de câmara de controle ambiental superior (Neue Live Cell) e um controlador de fase automatizada XY (Antes Proscan). As imagens são adquiridos com um 10X UPLANFL Ph1/0.30 objectivo, no modo de campo claro, utilizando um intervalo de tempo definido. O protocolo seguinte descreve a aquisição de imagem. <ol><li> Ligue o microscópio, câmara, e um aparelho de imagem ao vivo de células. Posicione a placa sobre o palco microscópico. Cobrir a placa com o meio celular Neue ao vivoambiental câmara de controlo, que está ligado com uma fonte de CO 2 e sensores de temperatura. Ajuste o termostato a 37 ° C e CO2 a 5%. </li><li> SlideBook software permite a seleção objetiva totalmente automatizado, a seleção de comprimento de onda e fácil troca entre as técnicas de campo fluorescentes e brilhantes. Para configurar diferentes parâmetros de controle de foco, aberto software SlideBook&gt; ir para a barra de menu&gt; controle de foco de seleção, clicando&gt; <img alt="Figura 0 Botão 1" src="/files/ftp_upload/3585/3585fig0btn1.jpg" /> e selecione os seguintes parâmetros: <ol><li> Na &quot;caixa objectivo&quot; definir o objetivo da seleção da janela suspensa. Note que estamos usando uma objetiva fase e ter selecionado manualmente o anel de fase apropriado no condensador. Se usando um sistema com um condensador automatizado, este será automaticamente ajustado através do programa de software. Alternativamente, se nem objetiva nem torre condensador são automatizados estes devem ser selecionados de cada manual doly. </li><li> No &quot;Filter Set&quot; caixa: <ol><li> Selecione as configurações para direcionar o caminho da luz, quer ocular ou câmera da caixa suspensa para ver filtros disponíveis (&quot;Live&quot; para ocular &quot;, Widefield&quot; para a câmera em nosso sistema). </li><li> Selecione o filtro apropriado para a iluminação de campo claro (no nosso set-up, esta opção é rotulado como &quot;DIC&quot;, o que representa uma posição aberta para o caminho da luz brightfield). </li><li> Selecione a fonte de luz, clicando em &quot;Abrir brilhante&quot; para abrir o obturador de campo claro. </li></ol></li></ol></li><li> Para visualizar a amostra sob a parte do olho, selecione o filtro de campo claro (posição &quot;6&quot; em nosso sistema) na torre. Depois de inicialmente visualizar a amostra através da ocular para encontrar campos apropriados e levar a amostra em foco (passos 3.2.1 a 3.2.2.3). Mova a torre de filtro para alterar o caminho de luz para a câmera para captura de imagem (posição &quot;1&quot; em nosso sistema). </li><li> A etapa automatizada permite a seleção de diferentes XY coordenaçãotes para capturar vários campos de interesse na aquisição da imagem. Em software SlideBook, vá para o controle de foco, escolha &quot;XY&quot;, selecione posições diferentes embora a parte do olho, em seguida, clique em &quot;set point&quot; de bloqueio em cada local para captura de imagem (Figura 1). </li><li> Afinar o foco da imagem da câmera que é visto na tela. Isto pode ser conseguido por qualquer utilizando os controlos manuais no microscópio ou os controles de computador, que pode ajustar a focagem em incrementos muito mais finas. </li><li> Usando os controles na &quot;Focus Controls&quot; janela, ajustar a posição z do palco. Para melhores resultados, o foco em planos saliências celulares perto o contato com a placa. </li><li> Para ajudar com o foco use o controle deslizante para ajustar os tempos de exposição para a um conjunto adequado para focagem. Se múltiplas posições XY foram selecionados, ajustar o foco para cada posição individual: Sob o controle de foco&gt; XY ponto de visita&gt;. Nota: isto é feito para fazer ª, com certezano campo for correctamente focado para um instantâneo ideal. </li><li> Use o software para configurar os parâmetros da janela de captura. Em SlideBook, abra a captura, selecionando <img alt="Figura 0 Botão 2" src="/files/ftp_upload/3585/3585fig0btn2.jpg" /> na barra de menus. Veja a Figura 2. Em seguida, verifique os seguintes parâmetros. <ol><li> Verifique Capture&gt; tipo de lapso de tempo. </li><li> Verifique conjunto de filtro: campo largo: DIC (para a imagem de campo claro). </li><li> &quot;Captura lapso de tempo&quot; é o número de pontos de tempo que será capturada (que pode variar, dependendo do tipo de célula). Duração é o comprimento total de tempo para a experiência. Unidades de tempo [em milissegundos (ms), segundos (s), minutos (m) ou horas (h)] pode ser selecionado no menu suspenso. </li><li> &quot;Intervalo&quot; é o atraso entre o início de um instante e no início do instante seguinte. Conforme você digita em dois desses valores, o terceiro campo será calculado automaticamente. </li><li> Captura XY múltipla: selecionar &quot;multilista de pontos &quot;para mais de 1 posição XY. </li><li> Nomeie o arquivo. No exemplo dado, temos chamado-lo &#39;231 &#39;. </li></ol></li><li> Para evitar o inesperado desligar do computador devido a várias imagens, use a opção &quot;spool&quot; para salvar o arquivo. É opcional, porém é altamente recomendável. Para este fim, sob captura contro l&gt; selecione Avançado&gt; Spool&gt; Capturar a memória e guardar no arquivo de spool após cada momentos. Navegue até o local para salvar o arquivo do livro slide (Figura 3). O filme gerado pode ser importado depois do local designado. Passos de configuração microscópio foi resumido em <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/3585/Figure_3.1_merged.pdf" target="_blank">arquivo de 3,1</a> . </li></ol> 4. Processamento de Imagens e de Análise da Migração: Cálculo da Velocidade e Deslocamento Neste exemplo, o processamento de imagem é feito por SlideBook 5, 6 5,0 software. Existem vários outros programas como o ImageJ 7 para o processamento e análise de imagem. <ol><li> Importe os arquivos SlideBook gerados a partir de imagens de campos diferentes em momentos diferentes. Vá para a barra de menu&gt; em Image&gt; Import&gt; livro de slides carretel&gt; selecione o arquivo desejado (Figura 4a). </li><li> Aqui nosso objetivo é rastrear o movimento de células individuais. Isso pode ser feito usando o acompanhamento automático ou acompanhamento individual. No exemplo, utilizou-se de controle manual, uma vez que isto facilita a afastar artefactos facilmente, o que é mais difícil com acompanhamento automatizado. </li><li> Abra o arquivo SlideBook, em que temos para realizar monitoramento. Sob o menu: Máscara Select&gt; Protocolo de rastreamento de partículas&gt; Protocolo de Partículas manual de Rastreamento (Figura 4b). Uma janela aparecerá com pontos de início e fim do tempo (Figura 4c). </li><li> Begin para controlar o movimento de células individuais, clicando no centro de cada célula (núcleo). Rastrear cerca de 10 células de cada filme e pelo menos três filmes diferentes devem ser seleccionados a partir de localizações diferentes, de modo que aproximadamente 30 células será analisado a partir de uma experiência. Cada experiência deve ser repetido três vezes. Para permitir uma abordagem imparcial, selecione as células a partir de locais diferentes, como algumas células de frente, meio, etc cantos Clique em &quot;OK&quot;, uma vez rastreamento é feito. </li><li> A migração aleatória pode ser analisado através da medição mudanças etc velocidade, velocidade ou deslocamento Para analisar os dados, em Menu&gt; máscara select&gt; de rastreamento de partículas&gt; protocolo de rastreamento de partículas. Seleccionar os parâmetros de controle, como descrito, a seguir: (Figura 5a): <ol><li> Acompanhe com - Selecione o parâmetro que você deseja monitorar na lista suspensa. Neste exemplo, utilizou-se Center, de Área (as coordenadas do centro do Object). </li><li> Clique em &quot;acompanhar e continuar&quot;. Depois de monitoramento é completo, isto irá avançar automaticamente para a próxima etapa. </li></ol></li><li> Escolha estatísticas desejadas para cada caminho, tais como o deslocamento ea velocidade média (ver Figura 5b): <ol><li> Velocidade Média - a distância total percorrida dividida pelo tempo necessário para percorrer essa distância. </li><li> Cilindrada total - a distância total percorrida pelo objeto. </li><li> Clique em &quot;Calcular e Continuar&quot; se quiser avançar para a próxima etapa, ou simplesmente escolha &quot;Calcular&quot; se você quiser ver as estatísticas, sem passar para a próxima etapa. Um arquivo será gerado que pode ser salvo como arquivo de texto e podem ser posteriormente exportados para o Excel. </li></ol></li><li> A fim de rastrear objetos usando o protocolo de monitoramento automatizado, primeiro uma máscara tem que ser criado. <ol><li> Selecione Mask&gt; Imagem Segmento&gt; uma janela segmento parece&gt; selecione até limite for alcançado tal que setembroarating um objeto a partir de outros&gt; clique em Aplicar&gt; OK (veja a Figura 5c). Passo 4.5.1 é o mesmo. </li><li> Remover Objectos menor do que - Marque esta caixa para remover seletivamente objetos menores que um determinado tamanho. Digite o tamanho no campo de edição e escolha microns ou pixels como unidade. Isto é usado para remover artefatos freqüentemente causadas por detritos. </li><li> Movimento mínimo - introduzir o número mínimo de pontos de tempo que deve ser controlado a fim de determinar um caminho. </li><li> Movimento máximo - Digite o movimento máximo que você espera de um determinado objeto de um ponto de tempo para o próximo. </li><li> Passos para analisar os dados são os mesmos que o rastreamento manual (ver os passos para 4.5.2 4.6.2). </li></ol></li></ol> 5. Os resultados representativos Um exemplo de uma análise de migração aleatória como quantificada em termos de velocidade e de deslocamento (Figura 6). Depois de exportar o arquivo de to excel, os dados são plotados usando uma caixa e enredo bigodes. A análise estatística comparando o deslocamento total e velocidade média entre teste e de controlo é realizada usando teste de Mann-Whitney. A amostra de teste mostra um aumento na velocidade média, em comparação com o controle. A amostra de teste mostra um aumento no deslocamento total, em comparação com o controle. Filme de controlo e de teste: Controle MDA-MB-231 e teste de MDA-MB-231 foram semeadas em células de colagénio durante a noite. Lapso de tempo microscopia de vídeo foi realizada por microscópio Olympus, acoplado a uma câmara EM-Hamamatsu. As imagens são tomadas a intervalos de 1 hora para um total de 18 horas durante a migração aleatória. Por favor, veja Filme 1 e Filme 2 da migração aleatória de controle e amostras de teste. Configuração do microscópio: <img alt="A Figura 1" src="/files/ftp_upload/3585/3585fig1.jpg" /> Figura 1. Configurando múltiplos pontos para a imagem<html> capturar. <img alt="A Figura 2" src="/files/ftp_upload/3585/3585fig2.jpg" /> Figura 2. Passos retratando controle de captura. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/3585/3585fig2large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver maior figura</a> . <img alt="A Figura 3" src="/files/ftp_upload/3585/3585fig3.jpg" /> Figura 3. Como salvar várias imagens. dflinebreak &quot;&gt; Processamento de imagem e análise de migração. <img alt="A Figura 4a" src="/files/ftp_upload/3585/3585fig4a.jpg" /> Figura 4a. Etapas para importar imagens para análise de dados. <img alt="Figura 4b" src="/files/ftp_upload/3585/3585fig4b.jpg" /> Figura 4B. Passos para analisar os dados usando o protocolo de trajetórias de partículas. <img alt = &quot;Figura 4c&quot; src = &quot;files/ftp_upload/3585/3585fig4c.jpg /&quot; /&gt; Figura 4c. Janela de comprimento caminho que descreve de partículas controladas. Passos da análise de dados. <img alt="Figura 5a" src="/files/ftp_upload/3585/3585fig5a.jpg" /> Figura 5a. Passos retratando parâmetros do protocolo de rastreamento de partículas. <img alt="Figura 5b" src="/files/ftp_upload/3585/3585fig5b.jpg" /> Figura 5b. Selecção de estatísticas de caminho a ser analisado. <img alt="A Figura 5c" src="/files/ftp_upload/3585/3585fig5c.jpg" /> Figura 5c. Passos para criar a máscara para o protocolo de monitoramento automatizado. <img alt="A Figura 6" src="/files/ftp_upload/3585/3585fig6.jpg" /> A Figura 6 velocidade. Médio (Figura6a) e deslocamento (Figura 6b) é plotado em um gráfico de bigodes. A amostra de teste mostra um aumento da velocidade e do deslocamento como comparar a controlar. Filmes Filme 1. A migração de células de controle. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/3585/3585movie1.avi" target="_blank">Clique aqui para ver o filme</a> . Filme 2. A migração de células de teste. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/3585/3585movie2.avi" target="_blank">Clique aqui para ver o filme</a> . Controlo MDA-MB-231 e teste de MDA-MB-231 foram semeadas células de baixa densidade em colagénio para durante a noite. Lapso de tempo microscopia de vídeo foi realizada por microscópio Olympus, acoplado a uma câmara EM-Hamamatsu. As imagens são tomadas a intervalos de 1 hora durante 18 horas durante a migração aleatória. Por favor, veja os filmes da migração aleatória de controle e teste.

<ol><li>Lauffenburger, D. A., Horwitz, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+migration%3A+a+physically+integrated+molecular+process%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cell migration: a physically integrated molecular process.</a> Cell. 84, 359-369 (1996).</li>
<li>Ridley, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+migration%3A+integrating+signals+from+front+to+back%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Cell migration: integrating signals from front to back.</a> Science. 302, 1704-1709 (2003).</li>
<li>Petrie, R. J., Doyle, A. D., Yamada, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Random+versus+directionally+persistent+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Random versus directionally persistent cell migration.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 10, 538-549 (2009).</li>
<li>Valone, F. H., Austen, K. F., Goetzl, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+the+random+migration+of+human+platelets%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Modulation of the random migration of human platelets.</a> J. Clin. Invest. 54, 1100-1106 (1974).</li>
<li>Biehlmaier, O., Hehl, J., Csucs, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acquisition+speed+comparison+of+microscope+software+programs%5BTitle%5D)+AND+%22Microsc.+Res.+Tech%22%5BJournal%5D)">Acquisition speed comparison of microscope software programs.</a> Microsc. Res. Tech. 74, 539-545 (2011).</li>
<li>Struckhoff, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+regulation+of+ROCK+in+tumor+cells+controls+CXCR4-driven+adhesion+events%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Sci%22%5BJournal%5D)">Dynamic regulation of ROCK in tumor cells controls CXCR4-driven adhesion events.</a> J. Cell. Sci. 123, 401-412 (2010).</li>
<li>Abramoff, M. D., Magelhaes, P. J., Ram, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Image+Processing+with+ImageJ%5BTitle%5D)+AND+%22Biophoton.+Internat%22%5BJournal%5D)">Image Processing with ImageJ.</a> Biophoton. Internat. 11, 36-42 (2004).</li>
<li>Greenberg, J. H., Seppa, S., Seppa, H., Tyl Hewitt, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+collagen+and+fibronectin+in+neural+crest+cell+adhesion+and+migration%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Role of collagen and fibronectin in neural crest cell adhesion and migration.</a> Dev. Biol. 87, 259-266 (1981).</li>
<li>Albini, A., Sporn, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+tumour+microenvironment+as+a+target+for+chemoprevention%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Cancer%22%5BJournal%5D)">The tumour microenvironment as a target for chemoprevention.</a> Nat. Rev. Cancer. 7, 139-147 (2007).</li>
<li>Yu, Y. P., Luo, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myopodin-mediated+suppression+of+prostate+cancer+cell+migration+involves+interaction+with+zyxin%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer.+Res%22%5BJournal%5D)">Myopodin-mediated suppression of prostate cancer cell migration involves interaction with zyxin.</a> Cancer. Res. 66, 7414-7419 (2006).</li>
<li>Teng, T. S., Lin, B., Manser, E., Ng, D. C., Cao, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stat3+promotes+directional+cell+migration+by+regulating+Rac1+activity+via+its+activator+betaPIX%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Sci%22%5BJournal%5D)">Stat3 promotes directional cell migration by regulating Rac1 activity via its activator betaPIX.</a> J. Cell. Sci. 122, 4150-4159 (2009).</li>
<li>Wozniak, M. A., Kwong, L., Chodniewicz, D., Klemke, R. L., Keely, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((R-Ras+controls+membrane+protrusion+and+cell+migration+through+the+spatial+regulation+of+Rac+and+Rho%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">R-Ras controls membrane protrusion and cell migration through the spatial regulation of Rac and Rho.</a> Mol. Biol. Cell. 16, 84-96 (2005).</li>
<li>Orr, A. W., Elzie, C. A., Kucik, D. F., Murphy-Ullrich, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thrombospondin+signaling+through+the+calreticulin%2FLDL+receptor-related+protein+co-complex+stimulates+random+and+directed+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Thrombospondin signaling through the calreticulin/LDL receptor-related protein co-complex stimulates random and directed cell migration.</a> J. Cell Sci. 116, 2917-2927 (2003).</li>
<li>Smith, A., Bracke, M., Leitinger, B., Porter, J. C., Hogg, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LFA-1-induced+T+cell+migration+on+ICAM-1+involves+regulation+of+MLCK-mediated+attachment+and+ROCK-dependent+detachment%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">LFA-1-induced T cell migration on ICAM-1 involves regulation of MLCK-mediated attachment and ROCK-dependent detachment.</a> J. Cell Sci. 116, 3123-3133 (2003).</li>
</ol>

Não temos nada a divulgar.

O tempo real ensaio de migração aleatória permite precisas, a análise, sensível dos parâmetros celulares tais como a velocidade de migração e deslocamento. Este método não é restrita ao fim valor da medição do ponto, por isso é mais quantitativa. Uma vez que, as células são monitorizados em meio DMEM com soro normal de, que reduz o efeito deletério de incubação mais longo em soro meios livres. Tem sido demonstrado que a migração de células depende da formatação e quebrando contactos celulares com o substrato 8,</su...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentários </td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Thermo Scientific </td><td> SH30243.01 </td><td></td></tr><tr><td> FBS </td><td> Gêmeos Bio-Products </td><td> 100-106 </td><td></td></tr><tr><td> Opti-MEM </td><td> Invitrogen </td><td> 31985-070 </td><td></td></tr><tr><td> Colágeno </td><td> BD </td><td> 354231 </td><td></td></tr><tr><td> Microscópio com câmara de celular ao vivo e controlador de fase automatizada XY </td><td> Olimpo </td><td> Olympus 1X81 </td><td></td></tr><tr><td> Câmara de controle ambiental </td><td> Neue </td><td> Neue Câmara Live Cell </td><td> O nosso tem um costume construído com placa retangular de vidro para óptica apropriados através do topo da câmara. A forma rectangular acomoda multi-poços utilizados em muitos dos nossos experimentalts. </td></tr><tr><td> Automated fase XY </td><td> Prévio </td><td> Antes Proscan </td><td> Isto permite que retorno preciso para multiplicar as posições XY seleccionados durante a microscopia lapso de tempo. </td></tr><tr><td> Câmera </td><td></td><td> Hamamatsu EM câmera C9100 </td><td></td></tr><tr><td> Software </td><td> Normalmente adquirido através de fornecedor do microscópio, como Olympus </td><td> Livro Slide 5 </td><td></td></tr></tbody></table>

análise quantitativa de migração aleatória de células usando microscopia de lapso de tempo vídeo

Quantitative Analysis of Random Migration of Cells Using Time-lapse Video Microscopy

A migração celular é um processo dinâmico, que é importante para o desenvolvimento embrionário, a reparação de tecidos, a função do sistema imunitário, e invasão tumoral 1, 2. Durante a migração direccional, as células movem-se rapidamente em resposta a um sinal de quimiotáctico extracelular, ou em resposta a estímulos intrínsecas 3 fornecidos pela máquina motilidade de base. A migração aleatória ocorre quando uma célula possui direccionalidade intrínseca baixa, permitindo que as células para explorar seu ambiente local. A migração celular é um processo complexo, na célula resposta inicial sofre polarização e estende-se saliências na direcção da migração 2. Os métodos tradicionais para medir a migração, tais como o ensaio de migração Boyden câmara é um método fácil de medir a quimiotaxia in vitro, o que permite medir a migração como um resultado de ponto final. No entanto, esta abordagem não permite a medição de parâmetros de migração individuais, nem permite a visualização de alterações morfológicas que celular durante a migração. Aqui, apresentamos um método que nos permite monitorar as células migram em tempo real usando o vídeo - microscopia de lapso de tempo. Desde a migração celular ea invasão são marcas registradas de câncer, este método será aplicado no estudo da migração de células cancerosas e invasão in vitro. A migração aleatória de plaquetas tem sido considerada como um dos parâmetros de 4 a função das plaquetas, por conseguinte, este método pode também ser útil no estudo da função plaquetária. Este ensaio tem a vantagem de ser rápida, fiável e reprodutível, e não necessita de optimização de números de células. A fim de manter as condições fisiologicamente adequados para as células, o microscópio é equipado com CO fornecimento 2 e termostato temperatura. O movimento celular é monitorizada por tirar fotografias com uma câmara montada no microscópio em intervalos regulares. A migração celular pode ser calculado medindo a velocidade média e umdeslocamento MÉDIO, que é calculado pelo software Slidebook.

Este método permite a monitorização de células em tempo real e as medições quantitativas de parâmetros diferentes de células, tais como a velocidade de migração, o deslocamento, e velocidade. Ao contrário dos métodos tradicionais, esta abordagem em tempo real não se baseia em medições quantitativas de terminais de migração, em vez disso ele permite o monitoramento e cálculo dos parâmetros diferentes continuamente.

Análise Quantitativa de Migração aleatória de células usando microscopia de lapso de tempo vídeo

A migração celular é um processo dinâmico, fundamental para o desenvolvimento embrionário, a reparação tecidual, a função do sistema imunológico e a invasão tumoral 1, 2. Durante...

O objetivo geral do experimento a seguir é medir quantitativamente a migração de células em tempo real utilizando microscopia de lapso de tempo em vídeo. Isso é conseguido primeiro revestindo uma placa de cultura de seis poços com colágeno e, em seguida, semear escassamente as células de interesse sobre a placa revestida. Como segundo passo, cria-se uma ferida na placa usando a ponta de uma pipeta, garantindo espaço suficiente para a migração.Em seguida, o microscópio é montado e as imagens são capturadas em intervalos regulares utilizando um sistema de controle de temperatura para permitir o monitoramento contínuo das células migratórias em tempo real. Por fim, o protocolo de rastreamento de partículas é utilizado para avaliar as diferenças na velocidade média e no deslocamento total das células de teste e controle. A principal vantagem desta técnica em relação a métodos existentes, como o ensaio de migração em câmara evitativa, é que ela não se baseia em medidas quantitativas de migração em ponto final.Em vez disso, permite o monitoramento e o cálculo contínuo de diferentes parâmetros. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área de biologia do câncer, como,

quantitative-analysis-random-migration-cells-using-time-lapse-video

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Um método quantitativo para estudar a migração espontânea de células em um microambiente confinado unidimensional é descrito. Este método tira vantagem de canais microfabricados e pode ser utilizado para estudar a migração de grande número de células em condições diferentes nas experiências individuais.

Estudo da migração celular em Canais microfabricados

A migração celular é um fenómeno biológico que está envolvido numa variedade de parâmetros fisiológicos, tais como a cicatrização de feridas e de respostas imunes, e processos patofisiológicos, como o cancro. O ensaio de migração matriz 3D-colagénio é um instrumento versátil para analisar as propriedades migratórias de diferentes tipos de células dentro de um ambiente fisiológico semelhante a 3D.

Análise da migração celular dentro de uma matriz de colagénio tridimensional

Combinando transplante de células, marcação do citoesqueleto e abordagens de perda/ganho de função, este protocolo descreve como a placa pré-cordal prospectiva de peixe-zebra migratória pode ser usada para analisar a função de um gene candidato na migração celular in vivo.

analisando<em&gt; In Vivo</em&gt; Migração celular usando transplantes de células e de imagem Time-lapse em embriões Zebrafish

Protocolos para cultura de células endoteliais da veia umbilical humana (HUVEC), transfecção transitória de marcadores marcados com fluorescência de crescimento de microtúbulos, imagens de células vivas e análise automatizada da dinâmica de crescimento de microtúbulos interfásicos são detalhados.

De alta resolução de imagem Time-lapse e análise automatizada de microtúbulos Dynamics em Viver umbilical humano Células Endoteliais da Veia

Este protocolo detalha um método personalizada para medir a migração celular em resposta a quimioatractores, que também podem ser utilizados para determinar a taxa de difusão de um fármaco a partir de uma matriz de polímero.

A Câmara customizáveis ​​para a migração celular de medição

Lente livre de microscopia nos permite monitorar culturas celulares diretamente dentro da incubadora. Aqui descrevemos o protocolo completo usado para adquirir e analisar uma aquisição de 2,7 dia longo de culturas de células de HeLa, levando a um conjunto de dados de 2,2 x 106 medições de morfologia de célula individual e 10584 ciclo celular rastreia.

Lente livre de microscopia para a dinâmica e a análise quantitativa de cultura de células aderentes

Fenótipos de célula dormente e ativo câncer foram caracterizados utilizando imagens de fase quantitativa. Ensaios de proliferação, migração e morfologia celular foram integrados e analisados em um método simples.

Uma lapso de tempo, livre de rótulo, quantitativa fase estudo de células cancerosas humanas latentes e ativos de imagem

Células B de zona marginal (MZBs) respondem à força de cisalhamento do fluxo por reorientar seu caminho de migração o fluxo. Este protocolo mostra como gravar e analisar a migração usando uma unidade de fluidics, bomba, sistema de imagem de microscópio e software livre.

Análise de cisalhamento induzida pelo fluxo de migração de murino Marginal Zone B células In Vitro

Este procedimento descreve como visualizar, rastrear e quantificar Acanthamoeba spp. motilidade.

Quantificação de Acanthamoeba spp. Motilidade

Este protocolo fornece um método de isolamento primário de células T murinas e microscopia de lapso de tempo da migração de células T sob condições ambientais específicas com análise quantitativa.

Ensaio de migração in vitro em tempo real para células T CD8+ murinas primárias

Este protocolo descreve um fluxo de trabalho baseado em tomografia por difração óptica sem marcadores para imagens em tempo real e análise quantitativa da morfodinâmica dos macrófagos. O método permite o acompanhamento contínuo da morfologia e migração de células individuais, fornecendo medições resolvidas no tempo da área projetada, perímetro e velocidade média de migração durante imagens de células vivas de longo prazo.

Imagem em tempo real sem marcação e análise quantitativa da morfodinâmica de macrófagos usando tomografia por difração óptica

Aprenda a analisar a migração celular em tempo real usando microscopia de lapso de tempo vídeo. Este método permite medir velocidade e deslocamento de células em biologia celular e estudos de câncer.

Análise Quantitativa de Migração aleatória de células usando microscopia de lapso de tempo vídeo

Explorar mais vídeos