Name: Isolar células de melanócito-like primárias do coração mouse (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-29T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 38 s
Description: Aprenda a isolar células melanócito-like cardíacas de camundongos para estudos de arritmia atrial. Este método utiliza digestão enzimática e cultura celular para análise fisiológica e molecular.

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Este trabalho foi financiado pelo National Institutes of prêmio Saúde R01 HL105734 para VVPMDL é suportado, em parte, pelo National Institutes of Health Research Career Award K08 HL094748. VVP é um pesquisador inovador da American Heart Association apoiada pela concessão 11IRG900384.

1 Preparar as soluções necessárias e Equipamentos <ol><li> Primeiro, esterilizar os instrumentos cirúrgicos (pinças retas forma, fórceps, tesouras forma curva de forma reta, e tesouras forma curva) em autoclave por 15 min. a 121 ° C. Preparar dois conjuntos de instrumentos, onde um conjunto é usado para dissecar os corações e o outro conjunto irá ser utilizados para triturar o tecido. </li><li> Dissolve-se um pacote de meios de cultura MCDB153 em 900 ml de esterilizado, água filtrada e agita-se lentamente até que o pó esteja dissolvido. Adicionar 1,2 g de bicarbonato de sódio, ou de 15,7 ml de uma solução de bicarbonato de sódio [7,5% w / v], por cada litro de volume final de meio que está sendo preparada e agita-se até se dissolver. Ajustar o pH para 7,2 por adição de 1 N ou HCl ou NaOH 1 N, em seguida verter os meios de comunicação através de um filtro de topo de 0,2 um frasco sob condições estéreis num capuz de cultura de tecidos (cabine de segurança biológica). Em seguida, coletar o material e armazene-o a 4 ° C. </li><li> Prepare os suplementos paraadicionar ao meio de cultura (Lista de Materiais). Os suplementos devem ser adicionados ao meio antes de apenas meios de comunicação é necessária para o plaqueamento das células. </li><li> Prepare DPBS com FBS a 10% mais antibióticos (penicilina e estreptomicina). </li><li> Em seguida, preparar uma solução de tripsina a 0,25% por adição de 0,25 g de tripsina (de pâncreas de bovino, actividade&gt; 2.500 unidades USP / mg, ultrapura; USB) a 100 ml de DPBS mais antibióticos (penicilina e estreptomicina). </li><li> Outros equipamentos necessários necessários para concluir este procedimento incluem um microscópio estereoscópico, placas de Petri (10 cm), tubos cônicos de 50 ml, filtros de células 40 mícrons, DPBS mais antibióticos, de 60 mm e placas de cultura de 35 mm placas de cultura. </li></ol> 2 Isolando Corações de Neonatais rato filhotes de cachorro <ol><li> Em primeiro lugar, obter P0 para p2 de rato neonatal filhotes (n = 6 a 8). Recomenda-se usar os filhotes gerados por meio de cruzamento DCT-Cre fêmeas homozigotas com os machos que são heterozigotos para tanto o R26R: alelo EYFP ou o alelo Z / EG para rotular omelanócitos semelhante. Ambos R26R: EYFP e Z / EG ratinhos estão disponíveis a partir de Jackson Laboratories (números 006148 e 003920 banco, respectivamente). </li><li> Em seguida, a eutanásia os filhotes recém-nascidos de rato, limpe o peito com um algodão embebido em álcool e em seguida, coloque os filhotes em uma placa de Petri de 10 cm com DPBS. </li><li> Cortar a pele sobre o peito e esterno com pinça e tesouras esterilizadas e em seguida, abra o baú com cuidado sob microscópio estereoscópico. Os corações dos filhotes recém-nascidos de rato são muito pequenos por isso tome cuidado para se certificar de remover todo o coração com os átrios anexados. </li><li> Lave os corações em DPBS e transferi-los para um novo prato de 10 cm Petri. </li></ol> 3. digestão enzimática <ol><li> Traga a placa de Petri com o coração excisadas para uma capa de cultura de tecidos (cabine de segurança biológica) e, em seguida, siga os passos abaixo usando técnicas estéreis na capa. </li><li> Em primeiro lugar, os corações lavar três vezes em DPBS estéril mais antibióticos. </li><li> Colocar os corações (n = 6-8) numa60 mm de placa de cultura e adicionar 6-8 mL de solução de tripsina a 0,5% para o prato. </li><li> Em seguida, o coração cortado em pedaços pequenos (menos de 1 mm de tamanho) e incubar a 37 ° C durante 30 min numa atmosfera de CO2 a 5%. </li><li> Após o período de incubação estiver completa, despejar a solução resultante de tecido cardíaco e tripsina a partir do prato para um tubo de 50 ml estéril cónica. </li><li> Em seguida, usando uma pipeta estéril de 10 ml, rapidamente mas suavemente, tritura-se a solução no tubo de 50 mL cónico 30-50 vezes. </li><li> Filtra-se a solução resultante através de um filtro de células de 40 mícrons no início de um novo tubo cónico limpo de 50 ml e recolher o filtrado. </li><li> Em seguida, o tubo de centrifugação de 50 ml a 240 x g numa centrífuga de bancada durante 5 minutos a temperatura ambiente. Em seguida, aspirar cuidadosamente o sobrenadante e ressuspender o sedimento restante em 6-8 ml de DPBS estéril. Repita este passo mais duas vezes. Esta etapa pelotas miócitos atriais e melanócitos cardíacos, mas não derrubar a fifibroblastos desde os fibroblastos são menores e permanecerão no sobrenadante. </li></ol> 4. chapeamento Cardiac Melanócitos como células <ol><li> Após a terceira lavagem, após a centrifugação, com cuidado drenar ou aspirar para fora da solução de lavagem (DPBS) e ressuspender o sedimento em 6 ml de meio de cultura MCDB aos quais foram adicionados os suplementos. </li><li> Agora, extrair a solução ressuspenso para uma pipeta de transferência estéril e colocar as células em uma placa de 35 mm, ou de um poço de uma placa de 6 poços, e reunir as células cardíacas isoladas a partir de três ratinhos neonatais em um prato de 35 mm ou bem. </li><li> Incubar as placas durante a noite a 37 ° C numa atmosfera de CO2 a 5%, aspirar fora do meio de cultura, juntamente com quaisquer células não ligadas e depois enxaguar as placas uma vez com DPBS. Em seguida, adicione meio fresco para as placas e substituir os meios de comunicação a cada 2 dias. As células isoladas a partir de corações neonatais ou embrionários pode ser mantido em cultura durante até 3 semanas, enquanto que as células isoladas de ouvir adultots podem ser mantidas em cultura durante até 10 dias. </li></ol> Células 5 Isolando Cardiac Melanócitos como de rato adulto Coração <ol><li> Em primeiro lugar, retirar os corações de ratos maduros (3-4 semanas de idade, n = 3), através de uma esternotomia linha média após a administração de heparina 100 U intraperitoneal para os ratinhos e, em seguida, eles eutanásia. Recomenda-se usar pentobarbital para sacrificá camundongos para este procedimento, mas este medicamento não está disponível em todos os locais. </li><li> Em seguida, lave os corações excisadas em DPBS estéreis contendo antibióticos em uma capa de cultura de tecidos (cabine de segurança biológica). Aperte os corações um pouco com uma pinça de dissecação curvas para remover qualquer vestígio de sangue restante deles e, em seguida, enxaguar os corações em DPBS mais uma vez. </li><li> Remover os átrios e anel atrioventricular dos corações (estas estruturas contêm as células de melanócito-like) e coloque as amostras de tecido excisadas em um prato de 35 mm. </li><li> Corte os corações em pedaços pequenos usando uma tesoura curva e forçaps e, em seguida, adicionar 6-8 mL de solução de tripsina a 0,5% para o prato. Em seguida, os pratos incubar a 37 ° C durante 45-60 min. </li><li> Agora, siga os passos do procedimento acima a partir do passo 3.6 em diante. </li></ol>

<ol><li>Hornyak, T. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitf+dosage+as+a+primary+determinant+of+melanocyte+survival+after+ultraviolet+irradiation%5BTitle%5D)+AND+%22Pigment+Cell+Melanoma+Res%22%5BJournal%5D)">Mitf dosage as a primary determinant of melanocyte survival after ultraviolet irradiation.</a> Pigment Cell Melanoma Res. 22, 307-318 (2009).</li>
<li>Yonetani, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+expansion+of+immature+melanoblasts+and+their+ability+to+repopulate+melanocyte+stem+cells+in+the+hair+follicle%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Invest.+Dermatol%22%5BJournal%5D)">In vitro expansion of immature melanoblasts and their ability to repopulate melanocyte stem cells in the hair follicle.</a> J. Invest. Dermatol. 128, 408-420 (2008).</li>
<li>Levin, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Melanocyte-like+cells+in+the+heart+and+pulmonary+veins+contribute+to+atrial+arrhythmia+triggers%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Melanocyte-like cells in the heart and pulmonary veins contribute to atrial arrhythmia triggers.</a> J. Clin. Invest. 119, 3420-3436 (2009).</li>
<li>Patel, V. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+insights+in+the+cellular+basis+of+atrial+fibrillation%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Rev.+Cardiovasc.+Ther%22%5BJournal%5D)">Novel insights in the cellular basis of atrial fibrillation.</a> Expert Rev. Cardiovasc. Ther. 8, 907-915 (2010).</li>
<li>Sviderskaya, E. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+neurons+and+melanocytes+induced+from+immortal+lines+of+postnatal+neural+crest-like+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Functional neurons and melanocytes induced from immortal lines of postnatal neural crest-like stem cells.</a> FASEB J. 23, 3179-3192 (2009).</li>
<li>Sviderskaya, E. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((P16Ink4a+in+melanocyte+senescence+and+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Natl.+Cancer.+Inst%22%5BJournal%5D)">P16Ink4a in melanocyte senescence and differentiation.</a> J. Natl. Cancer. Inst. 94, 446-454 (2002).</li>
<li>Cook, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+melanoblasts+in+culture%3A+Expression+of+BRN2+and+synergistic+regulation+by+fibroblast+growth+factor-2%2C+stem+cell+factor%2C+and+endothelin-3%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Invest.+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Human melanoblasts in culture: Expression of BRN2 and synergistic regulation by fibroblast growth factor-2, stem cell factor, and endothelin-3.</a> J. Invest. Dermatol. 121, 1150-1159 (2002).</li>
<li>Fang, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defining+the+conditions+for+the+generation+of+melanocytes+from+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Defining the conditions for the generation of melanocytes from human embryonic stem cells.</a> Stem Cells. 24, 1668-1677 (2006).</li>
<li>Brito, F. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Timeline+and+distribution+of+melanocyte+precursors+in+the+mouse+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Pigment+Cell+Melanoma+Res%22%5BJournal%5D)">Timeline and distribution of melanocyte precursors in the mouse heart.</a> Pigment Cell Melanoma Res. 21, 464-470 (2008).</li>
<li>Yajima, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+isolation+of+heart+melanocytes+is+specified+and+the+level+of+pigmentation+in+the+heart+may+correlate+with+coat+color%5BTitle%5D)+AND+%22Pigment+Cell+Melanoma+Res%22%5BJournal%5D)">The isolation of heart melanocytes is specified and the level of pigmentation in the heart may correlate with coat color.</a> Pigment Cell Melanoma Res. 21, 471-476 (2008).</li>
</ol>

Não temos nada a divulgar.

Melanócitos cardíacas estão presentes em locais anatômicos dentro do coração que normalmente dão origem a gatilhos arritmia atrial. Essas regiões incluem as veias pulmonares, o anel atrioventricular, a posterior do átrio esquerdo e do forame oval (Figura 4). Para compreender o papel dessas células desempenham na arritmogênese, desenvolvemos técnicas para isolá-los e estudar sua fisiologia. No entanto, reconhecemos que melhorar esta técnica para produzir quantidades mais saudáveis ​​e maiores de melanóci...

Nós recentemente identificada uma população de células romance no coração de camundongos e humanos que expressam enzimas melanina-síntese e morfologicamente se assemelham melanócitos cutâneos. Chamamos &#39;melanócitos cardíacos&#39; essas células e descobrimos que eles estão presentes em locais anatômicos a partir do qual arritmia atrial desencadeia muitas vezes se originam em seres humanos. Encontramos também melanócitos cardíacos contribuir para arritmias atriais em camundongos com deleção da linhagem germinativa de Dct. Melanócitos cardíacas são escassamente distribuídos por todo o átrio do rato onde eles compreendem menos de 0,1% de todas as células atriais. Para investigar as propriedades elétricas e biológicos de melanócitos cardíacos foi desenvolvido um procedimento para isolá-los do coração mouse usando marcadores específicos de melanócitos Cre-induzida. Nosso procedimento inicial foi desenvolvido daqueles usados ​​para isolar cardiomiócitos murinos neonatais e rendeu um pequeno número de células adequadas para gravações de patch clamp ou análise de PCR. No entanto, para melhorar a curarº e viabilidade de melanócitos cardíacas, para mais aprofundada análise eletrofisiológica ou estudos bioquímicos, foi desenvolvido um procedimento refinado e as destinadas a isolar melanócitos cutâneos. O processo descrito e demonstrado neste teste tem a vantagem de produzir melanócitos cardíacas saudáveis, que podem ser plaqueadas como uma população pura ou com cardiomiócitos.

<table><tbody><tr><td>MCDB 153</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M7403</td><td>Dissolver em água</td></tr><tr><td>DPBS, sem cálcio nem magnésio</td><td>Invitrogen</td><td>14190136</td><td>Conc. estoque: 1x&lt;br/&gt; Conc. de trabalho: 1x</td></tr><tr><td>Penicilina-estreptomicina</td><td>Invitrogen</td><td>15140163</td><td>Conc. estoque: 100x&lt;br/&gt; Conc. de trabalho: 1x</td></tr><tr><td>Soro bovino fetal</td><td>Life Technology</td><td>Certificado</td><td>Conc. de trabalho: 4%</td></tr><tr><td>TPA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1585</td><td>Dissolver em DMSO&lt;br/&gt;Conc. estoque: 3,2 &amp;mu;M&lt;br/&gt;Conc. de trabalho: 32 nM</td></tr><tr><td>Transferrina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8158</td><td>Dissolver em DPBS&lt;br/&gt;Conc. estoque: 0,1 mg/ml&lt;br/&gt;Conc. de trabalho: 1 &amp;mu;g/ml</td></tr><tr><td>AMP cíclico dibutiril</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D0627</td><td>Dissolver em DPBS&lt;br/&gt;Conc. estoque: 0,5 mM&lt;br/&gt;Conc. de trabalho: 5 &amp;mu;M</td></tr><tr><td>Insulina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I6634</td><td>Dissolver em ácido acético 10 mM&lt;br/&gt;Conc. estoque: 1 mg/ml&lt;br/&gt;Conc. de trabalho: 5 &amp;mu;g/ml</td></tr><tr><td>FGF básico</td><td>BD Biosciences</td><td>354060</td><td>Dissolver em água&lt;br/&gt;Conc. estoque: 4 ng/&amp;mu;l&lt;br/&gt;Conc. de trabalho: 4 ng/ml</td></tr></tbody></table>

isolar células de melanócito-like primárias do coração mouse

Isolating Primary Melanocyte-like Cells from the Mouse Heart

Foi descoberta uma nova população de células de melanócitos tipo (também conhecido como melanócitos cardíaca) nos corações de ratos e seres humanos, que contribuem para os gatilhos de arritmias atriais em ratinhos. Para investigar as propriedades elétricas e biológicos de melanócitos cardíacos foi desenvolvido um procedimento para isolá-los do rato corações que nós derivados das destinadas a isolar cardiomiócitos murinos neonatais. A fim de obter melanócitos cardíacos saudáveis ​​adequados para mais extensa patch clamp ou estudos bioquímicos, foi desenvolvido um procedimento refinado para isolar e cultivar melanócitos cardíacos baseados naqueles originalmente projetado para isolar os melanócitos cutâneos. O procedimento refinado é demonstrado nesta revisão e produz um maior número de células de melanócito-like saudáveis ​​que pode ser banhado em uma população pura ou com cardiomiócitos.

O protocolo descrito neste artigo é uma técnica aprimorada em comparação com o que anteriormente publicado para isolar melanócitos cardíacos do coração murino. Este procedimento emprega a utilização de marcadores fluorescentes accionados por síntese de melanina-específica enzima Cre-recombinase para marcar as células de melanócitos, como cardíacas. É importante a utilização de um marcador para rotular melanócitos cardíacas quando se trabalha com células embrionárias ou neonatais recém-isolados, uma vez que as diferenças...

Neste protocolo, w e identificou um novo população de células de melanócito-like (também conhecido como melanócitos cardíacos) nos corações de ratos e humanos que contribuem para a arritmia atrial dispara em camundongos.

Isolar células de melanócito-like primárias do coração mouse

Identificamos uma nova população de células semelhantes a melanócitos (também conhecidas como melanócitos cardíacos) nos corações de camundongos e humanos que contribuem para a atrial...

O objetivo geral deste procedimento é isolar células viáveis semelhantes a melanócitos cardíacos do coração de camundongo. Isso é realizado primeiramente coletando corações de camundongos eutanasiados. O segundo passo é picar os corações e dissociar as células utilizando digestão enzimática e agitação mecânica.Em seguida, a suspensão celular é centrifugada e o pellet contendo os cardiomiócitos e células semelhantes a melanócitos é ressuspendido. O passo final é o plaqueamento e cultivo. As células isoladas, células semelhantes a melanócitos cardíacos, podem ser utilizadas em estudos de patch ou análise de microarranjo em resposta a estressores fisiopatológicos para avaliar a excitabilidade celular ou o estado do transcriptoma.A principal vantagem desta técnica em relação aos métodos existentes projetados para isolar e cultivar os cardiomiócitos é que ela resulta no isolamento de muitas células semelhantes a melanócitos cardíacos viáveis. Bem, tivemos pela primeira vez a ideia deste método quando descobrimos uma nova população celular no coração de camundongo e desejamos investigar sua fisiologia. Para começar, prepare dois conjuntos de instrumentos cirúrgicos esterilizados, um para dissecar os corações e outro para picar o tecido.Em seguida, prepare os suplementos do meio, mas aguarde para adicioná-los ao meio de cultura até imediatamente antes de semear as células. Após preparar o filtro do meio de cultura para esterilizar a solução enquanto trabalha em uma cabine de cultura de tecidos, armazene o meio a quatro graus Celsius. Prepare a solução de DNA adicionando 0,05 gramas de DNA a 100 mililitros de DPBS com 10% de FBS mais antibióticos.Em seguida, prepare uma solução de tripsina 0,5% adicionando 0,5 gramas de tripsina a 100 mililitros de DPBS com antibióticos. Por fim, reúna os demais equipamentos necessários para realizar o procedimento, incluindo placas de Petri, tubos cónicos de 50 mililitros, peneiras celulares de 40 mícrons, DPBS com antibióticos e placas de cultura de 60 milímetros e 35 milímetros. Após a eutanásia de filhotes de camundongo neonatais de P zero a P dois, limpe o tórax com álcool e coloque-os em uma placa P dois de 10 centímetros com DPBS. Trabalhando sob um microscópio estereoscópico, abra cuidadosamente a cavidade torácica e remova todo o coração com as átrias anexadas.Lave os corações em DPBS e transfira-os para um novo recipiente de Petri de 10 centímetros. Transfira o recipiente de Petri com os corações excisados para uma câmara de cultura tecidual e siga a técnica asséptica para os passos seguintes. Primeiro, lave os corações três vezes em DPBS estéril acrescido de antibióticos.Coloque os corações em uma placa de cultura de 60 milímetros e adicione seis a oito mililitros de tripsina 0,5% em solução. Em seguida, corte os corações em pequenos pedaços e incube-os a 37 graus Celsius por 30 minutos. Após a conclusão da incubação, aspire a solução resultante da placa para um tubo cônico estéril de 10 mililitros.Usando uma pipeta estéril de 10 mililitros, remisture a solução rapidamente, mas suavemente, de 30 a 50 vezes, e filtre a suspensão resultante através de um filtro celular de 40 mícrons para um novo tubo cônico limpo de 50 mililitros. Após a centrifugação, aspire cuidadosamente o sobrenadante e ressuspenda o pellet remanescente em seis a oito mililitros de DPBS estéril. Repita este passo mais duas vezes.Após a terceira lavagem, seguindo a centrifugação, drenar ou aspirar cuidadosamente a solução de lavagem e ressuspender o pellet em seis mililitros de meio de cultura suplementado. Em seguida, aspirar a solução ressuspensa em uma pipeta estéril de transferência e colocar as células em uma placa de 35 milímetros. Coletar as células cardíacas isoladas de três camundongos neonatos após uma incubação noturna, aspirar o meio de cultura juntamente com quaisquer células não aderidas e, em seguida, lavar as placas uma vez com DPBS, adicionar meio fresco às placas e substituir o meio.A cada dois dias, as células isoladas de corações neonatais ou embrionários podem ser mantidas em cultura por até três semanas, enquanto as células isoladas de corações adultos podem ser mantidas em cultura por até 10 dias. Para isolar células semelhantes a melanócitos de um coração de camundongo adulto, primeiro lave os corações removidos em DPBS estéril contendo antibióticos em uma cabine de cultura de tecidos. Aperte levemente o coração com pinças de dissecação curvas para remover qualquer sangue remanescente e, em seguida, enxágue o coração em DPBS mais uma vez.Em seguida, remova os átrios e o anel átrio-ventricular dos corações e coloque os espécimes de tecido ressecado em uma placa de 35 milímetros. Corte os corações em pequenos pedaços utilizando tesoura curva e pinça. Adicione seis a oito mililitros de solução de tripsina 0,5% à placa e incube a 37 graus Celsius por 45 a 60 minutos.Após a incubação, repita os passos demonstrados anteriormente para obter uma suspensão de células cardíacas adultas e platers antes. Neste exemplo, a seta branca identifica o melanócito cardíaco em ambos os painéis. Observe que, sem a ajuda do marcador fluorescente, o melanócito cardíaco é difícil de identificar e distinguir dos miócitos atriais aderidos à placa, os quais são indicados pela seta azul-clara que aponta para células atriais mal aderidas à placa, conforme mostrado aqui, um melanócito cardíaco saudável isolado do coração de um camundongo neonatal.Eles desenvolveram extensos processos dendríticos e se assemelham estreitamente aos melanócitos cutâneos. Uma vez dominada, essa técnica pode ser realizada em algumas horas, se for executada corretamente. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como isolar células de melanócitos viáveis do coração.Isso será adequado para análise fisiológica e molecular.

isolating-primary-melanocyte-like-cells-from-the-mouse-heart

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Este vídeo descreve o método rápido para isolar e cultivar os melanócitos e fibroblastos simultaneamente da pele do filhote de camundongo pós-natal. Essas células podem ser mantidas e manipuladas in vitro para estudar a biologia celular da pele, cicatrização de feridas e melanoma.

Cultura Rápida de Melanócitos Murinos Primários e Fibroblastos: Isolamento de Melanócitos e Fibroblastos de Amostra de Pele Murina Inteira

Cardiomiócitos individuais de camundongos selvagens e mutantes podem ser isolados do coração para estudar sua contratilidade e transientes de cálcio. Isso permite caracterizar a contribuição da disfunção celular para a disfunção cardíaca por qualquer causa.

Isolamento e Fisiológica Análise de rato Cardiomyocytes

Nós descrevemos um método confiável para isolamento de cardiomiócitos adultos do mouse. Este protocolo produz um resultado consistente para a cultura de cardiomiócitos adultos funcionais a partir de uma variedade de camundongos geneticamente modificados.

Isolamento e Cultura de rato adulto Cardiomyocytes de sinalização celular e<em&gt; In vitro</em&gt; A hipertrofia cardíaca

Um modelo ideal para estudar a biologia de células-tronco adultas é o folículo piloso de camundongo. Aqui apresentamos um protocolo para isolar diferentes populações de folículos pilosos, células-tronco e queratinócitos epidérmicos, empregando digestão enzimática da pele dorsal de camundongos seguida de análise FACS.

Isolando células-tronco do folículo piloso e epidérmico queratinócitos da Dorsal rato Pele

Este protocolo descreve um método passo a passo para o isolamento reprodutível e cultura de longo prazo de cardiomiócitos de camundongos adultos com alto rendimento, pureza e viabilidade.

Isolamento, cultura e Transdução de rato adulto Cardiomyocytes

O objetivo geral deste artigo é a padronização do protocolo para o isolamento, caracterização e diferenciação de células-tronco cardíacas (CSCs) do fundo do coração de rato adulto. Aqui, descrevemos um método de centrifugação gradiente de densidade para isolar murino CSCs e métodos elaborados para CSC cultura, proliferação e diferenciação em cardiomyocytes.

Isolamento, caracterização e diferenciação de células-tronco cardíacas do coração de rato adulto

Este protocolo esboça um método rápido para gerar simultaneamente culturas do melanócito e do fibroblasto da pele de 0-4 ratos velhos do dia. Estas culturas primárias podem ser mantidas e manipuladas in vitro para estudar uma variedade de processos fisiologicamente relevantes, incluindo biologia celular da pele, pigmentação, cicatrização de feridas e melanoma.

Geração rápida de culturas de melanócitos e fibroblastos de Murina primária

Desenvolvemos um método simple para isolar células cardíacas individuais de camundongos de alta qualidade pela técnica de perfusão antegrada. Este método é livre de Langendorff e útil para isolar miócitos ventriculares e atrial ou células intersticiais, como fibroblastos cardíacos ou progenitores.

Um método de perfusão antegrada para isolamento cardiomiocócito de camundongos

O padrão-ouro em cardiologia para experimentos funcionais celulares e moleculares são os cardiomiócitos. Este artigo descreve adaptações à técnica não-Langendorff para isolar cardiomiócitos de camundongos.

Um Método Simples e Eficaz para Isolar Consistentemente Cardiomiócitos de Camundongos

Aqui, apresentamos um protocolo descrevendo a preparação de núcleos celulares. Após microdissecção e dissociação enzimática do tecido cardíaco em células únicas, as células progenitoras foram congeladas, seguidas pelo isolamento de células viáveis puras, que foram usadas para sequenciamento de RNA de núcleo único e o ensaio de núcleo único para cromatina acessível à transposase com análises de sequenciamento de alto rendimento.

Isolamento de Núcleos de Células Progenitoras Cardíacas de Camundongos para Perfil de Epigenoma e Expressão Gênica em Resolução Unicelular

Este manuscrito descreve um protocolo detalhado para isolar células gliais de Müller da retina de olhos de camundongos. O protocolo começa com a enucleação e dissecção dos olhos de camundongos, seguida de isolamento, semeadura e cultura de células de Müller.

Isolamento de células primárias de Müller glial da retina de camundongo

Aprenda a isolar células melanócito-like cardíacas de camundongos para estudos de arritmia atrial. Este método utiliza digestão enzimática e cultura celular para análise fisiológica e molecular.

Isolar células de melanócito-like primárias do coração mouse

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