Name: Métodos para investigar o papel de Regulamentação dos Pequenos RNAs e Ribosomal Ocupação de Plasmodium falciparum (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-12-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 22 s
Description: Aprenda métodos para investigar a regulação pós-transcricional em Plasmodium falciparum usando microRNAs de eritrócitos e perfilamento de polissomos. Esta técnica permite capturar RNAs totais e pequenos RNAs em uma única amostra.

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Esta pesquisa foi financiada pela Doris Duke Charitable Foundation, Burroughs Wellcome Fund, NIH R21DK080994, fundo de projeto piloto da Duke Chancellor, Roche Foundation for Anemia Research e The Bill and Melinda Gates Foundation. GL é apoiado pela UPGG da Duke e pelo NIH (Grant # 5R01AI090141-03) e KAW pelo Programa de Bolsas de Pesquisa de Pós-Graduação da NSF.

1: Isolamento de RNAs de pequeno porte de P. falciparum Durante o IDC <ol><li> Obter parasitas da malária na cultura assexuada 29. NOTA: O tamanho cultura requerida irá variar de acordo com a aplicação desejada; No entanto, uma cultura de 10 ml em 3-5% de parasitemia e 5% de hematócrito fornece amplo para ARN-PCR em tempo real (RT-PCR). A técnica foi inicialmente otimizado para culturas assíncronas, mas quando são desejados momentos específicos durante o ciclo de infecção, os parasitas anel de carreira podem ser sincronizados pela sincronização sorbitol, o mais tardar 10-12 horas pós-invasão. Sincronização deve ser repetido após um ciclo (aproximadamente 48 horas) 29. </li><li> Piscina células infectadas em conjunto (5 x 10 ~ 9 GVs na parasitemia 3-5%) e PBS frio encher a parte superior do tubo e centrifugar a 800 xg durante 5 minutos, sem travão para sedimentar as células vermelhas. </li><li> Após centrifugação, o sobrenadante cuidadosamente remover usando uma pipeta de aspiração, ligadopara um vácuo, uma vez que o pellet eritrocítica é fácil de deslocar. Lava-se a pelete mais uma vez com PBS 1x frio. </li><li> Ressuspender o sedimento de células em 0,15% de saponina frio (em PBS 1x) e colocar em gelo durante 30 min. </li><li> Centrifugar as células a 1.500 xg durante 12 min a 4 ° C, remover o sobrenadante (que será vermelho escuro em cor) e ressuspender o pellet em PBS frio. Repita este passo mais uma vez. NOTA: De modo a assegurar que os microARNs presentes eram reflectora de microARNs dentro parasitas, e não contaminação eritrocítica, um número de condições de isolamento do parasita foram testados: 1) de saponina de lise, 2) saponina de lise combinada com tratamento com ARNase A de miARNs célula hospedeira e 3 ) metil-beta-ciclodextrina de tratamento para remover o parasita do eritrócito hospedeiro. Todos os tratamentos deu resultados semelhantes. </li><li> Lisar as parasita sedimento isolado usando as recomendadas 600 ul de tampão de lise. Este volume de tampão de lise é suficiente para culturas até ~ 30 ml em 2% de hematócrito e 5% de parasitemia. NOTA: Para as culturas de parasitas de maiores dimensões, este volume pode ser aumentado. É importante garantir uma lise completa do pelete parasita em vórtice completa durante pelo menos 1 min. Além disso, para facilitar a extracção, as amostras submetidas a lise pode ser transferida para um tubo de microcentrífuga de 1,7 ml. </li><li> Adicionar 60 ul, ou 1/10 do volume do tampão de lise usado no passo 6, de aditivo homogeneizado (acetato de sódio 2 M, pH 4). </li><li> Deixar as amostras em gelo durante 10 min. </li><li> Adicionar 600 ul, ou um volume igual ao volume de tampão de lise adicionado no passo 6, de choloroform fenol ácido para cada amostra e vortex durante 1 min. </li><li> Separaram-se as fases aquosa e orgânica por centrifugação das amostras a 10000 xg durante 5 min. Esta rotação é maior do que a sugerida pelo kit para garantir que toda a hemoglobina / hemozoína está na fase orgânica. </li><li> Recolhe-se o (aquosa) da camada superior e transferi-lo para um tubo fresco. Repetir os passos 9 e 10, se a fase aquosa é branca ou (mais provavelmente) de cor castanha, que sugere prócontaminação tein. </li><li> Determinar o volume do sobrenadante resultante por pipeta e, em seguida, adicionar 1,25 volumes de etanol a 100% (~ 800 mL) e misturar por inversão do tubo de microcentrífuga de 1,7 ml de 5 vezes. </li><li> Passar cada amostra através de um cartucho de filtro de ligação de ARN fornecida (vários diferente dos quais estão disponíveis comercialmente), quer por centrifugação a 14.000 xg durante 1 min, ou usando um colector de vácuo. </li><li> Lavar o cartucho de filtro com 700 ul de tampão de lavagem a miARN 1 usando uma microcentrífuga, girando a 14.000 xg durante 1 min. </li><li> Lavar o cartucho de filtro com 500 ul de tampão de lavagem 2/3 duas vezes por centrifugação a 14.000 xg durante 1 min cada. </li><li> Eluir com 100 ul de ARN DEPC-água, que foi pré-aquecido a 95 ° C, em duas lavagens de 50 mL, a centrifugação a 14000 xg durante 1 min cada. Medir a concentração de ARN através de absorvência de UV a 260 nm. NOTA: O gel de ARN (quer de acrilamida TBE-ureia ou gel desnaturante de formaldeído agarose a) pode be utilizada para avaliar a distribuição de tamanho dos ARN isolados. NOTA: Este RNA é adequado para análise por microarray, RNA-sequenciamento, norte blot e ensaio de protecção de ribonuclease. </li></ol> 2: Quantificação de RNAs de pequeno porte de P. falciparum Durante o IDC <ol><li> Determinar a concentração de amostras individuais isolados no passo 1, utilizando espectrofotometria de UV a 260 nm. </li><li> Gerar iniciadores de PCR em tempo real para as espécies de ARN desejado. Para miRNA sozinho, usamos premade ensaios miRNA qPCR, enquanto que para mRNAs ou fusão miRNA-RNAm nós projetamos primers para o verde SYBR. Para os ARN de fusão, o iniciador directo foi a própria sequência miARN (miR-451: AAACCGTTACCATTACTGAGTT), ao passo que o inverso era um iniciador específico do gene ~ 100 pb a jusante da miARN na sequência de ARNm (PKA-R: ATCGAACATGCTGTGAACAT). </li><li> Faça cDNA a partir das amostras de RNA usando um iniciador hairpin para miRNAs (20-40 ng de usar RNA) sozinho ou hexâmeros aleatórios para mRNA e / ou miRNAespécies de fusão -mRNA (usando 1 ug de ARN). Misture e iniciadores de ARN durante 5 minutos a 65 ° C, depois arrefece-se até à temperatura ambiente. Em seguida, adicionar mistura de transcriptase reversa (0,5 ul de transcriptase reversa, 0,5 ul de inibidor de RNase, 1 ul de dNTPs (2,5 mM cada), 4 pi de tampão 5x, 2 ul de DTT 0,1 M, 1 mL de H2O). <ol><li> Amostras executado em um termociclador capaz de detectar qualquer SYBR verde ou sondas TaqMan. SYBR Green PCR quantitativa em 30 para genes específicos foi executado como um 3-passo do PCR, 95 ° C durante 15 seg, menor temperatura de hibridação do iniciador de menos de 5 ° C durante 30 seg, e 68 ° C durante 30 s, durante 40 ciclos, utilizando um SYBR comercial master mix verde. miARN-PCR em tempo real foi executada como uma PCR de dois passos, 95 ° C durante 15 seg e 60 ° C durante 1 min, durante 40 ciclos. </li><li> Quantificar os ensaios utilizando o método ΔΔCt e normalizá-los contra qualquer Rab GTPase (PF08_0110) ou 18S rRNA 31. </li></ol></li></ol> 3: Introduçãodos Pequenos RNAs em Malária Parasitas <ol><li> Agregar a 300 ul de células vermelhas do sangue por transfecção (250 ul de hemácias, cerca de 1,5 x 10 9 células, em última análise, ser utilizado) em meio completo a malária por centrifugação a 800 xg durante 5 min a 1 freio. </li><li> Lavar os eritrócitos duas vezes com meio RPMI e ressuspender em cytomix completo (KCl 120 mM, 0,15 mM de CaCl2, 10 mM de K 2 HPO 4 / KH 2 PO 4, pH 7,6; 25 mM de HEPES, pH 7,6; EGTA a 2 mM, pH 7,6; 5 mM de MgCl2, pH ajustado com KOH) a 50% de hematócrito após a centrifugação a 800 xg durante 5 min a 1 freio. </li><li> Transferir as células para uma cuvete de electroporação 0,2 cm. </li><li> Adiciona-se 10 ug, ou quantidade apropriada, de oligonucleótidos sintéticos costume às cuvetes e ressuspender as culturas. </li><li> Ajustar o electroporador de 310 V / 950 uF e fornecer um impulso para cada cuvete. </li><li> Ressuspender as 300 ul de hemácias dentro da tina em pré-aquecido Mal completameios Aria e placa-los em placas de 24 poços e incuba-se a 37 ° C num recipiente estanque ao ar com uma mistura de gases no sangue malária (3% de O2, 5% de CO 2). </li><li> Após 4 horas, infectam os glóbulos vermelhos transfectadas com trofozoítos final sincronizado para uma parasitemia final, de cerca de 1%. </li><li> Adicionar hemácias recém-transfectadas cada 4-6 dias para culturas infectadas e determinar a parasitemia% por FACS usando YoYo-1 coloração, conforme indicado na secção 4. </li></ol> 4: Determinação da Erythrocyte microRNAs efeito sobre Parasite Taxa de Infecção <ol><li> Tome 100 ul de cultura ressuspenso por micropipeta e coloque em um tubo de 1,7 ml de microcentrífuga. Lavar duas vezes com 1 ml de PBS 1x e centrifugar numa microcentrífuga mesa por centrifugação a 800 xg durante 5 min. </li><li> Ressuspender o sedimento em 1 ml de glutaraldeído a 0,025%. Incubar as amostras durante 20 min à TA. NOTA: As amostras podem ser armazenadas aqui durante várias semanas a 4 ° C. Depois, sedimentar os infectados RBCs por centrifugação a 800 xg durante 5 min. Lavar duas vezes com 1 ml de PBS 1x. </li><li> Ressuspender o sedimento em 1 mL de 0,015% de saponina. Incubar a 4 ° C durante 15 min. Pellet infectados eritrócitos por centrifugação a 800 xg durante 5 min. Lavar duas vezes com 1 ml de PBS 1x. Repeat.4.3. Ressuspender as células em 1 ml de PBS 1x contendo 1 ul (1.000X) corante de ADN. </li><li> Determinar os graus de parasitemia num citómetro de fluxo, a 488 nm de excitação e 530 nm (FL-1) ~ emissão. </li><li> Em primeiro lugar, o portão citômetro de fluxo com base em FSC e SSC para se concentrar em hemácias. Em seguida, medir os graus de parasitemia (hemácias infectadas) no RBC fechado por fluorescência no canal FL-1. NOTA: depois parasitas estágio são 10X mais fluorescente de parasitas fase anterior, e ~ 100X acima hemácias não infectados. Além disso, a coleta em baixa velocidade tende a reduzir o ruído. Finalmente, esta abordagem tem sido comparada ao 3H-hipoxantina incorporação e Giemsa, tanto como relatado anteriormente 13, e todas as técnicas GAVum e resultados semelhantes. </li></ol> 5: Biotina-tagging e eluição de miRNA-RNAm Fusão produtos <ol><li> Directamente por ordem oligonucleótidos sintéticos costume de RNA com destiobiotina (DB) ligadas covalentemente à extremidade 5 &#39;. </li><li> Transfectar RBC infectados com destiobiotina-conjugado (DB) miARN e não modificado miARN (controlo negativo), como indicado no passo 3. </li><li> Infectar hemácias transfectadas com P. falciparum parasitas para uma parasitemia de partida de 0,5% (passo 1.1). </li><li> Extrair ARN parasita 4 dias (96 horas) mais tarde, como descrito acima no passo 1. </li><li> Incubar 10 ug de ARN parasita com 50 ul embalados esferas de estreptavidina, adicionada através de micropipeta, e girar sobre um rotador tubo de microcentrífuga durante 1 hora a 4 ° C. </li><li> Agregar as esferas a 800 xg durante 30 seg e lava-se com 20 mM de KCl e 1 / 1.000 de RNase inibidor. </li><li> Eluir ARN a partir das pérolas por competição com biotina 2 mM e tampão com 200 ul de RNA de captura de eluição (20 mM de KCl, 1/1, 000 Inibidor de RNase e 2 mM de biotina) a 4 ° C durante a noite com rotação. </li><li> Determinar o grau de enriquecimento de P. indicado transcrições falciparum utilizando SYBR Green qRT-PCR, e microARN enriquecimento (controlo positivo) por TaqMan qPCR como indicado no passo 2. </li></ol> 6: Separação polissoma determinar o Ribosomal Ocupação de P. falciparum <ol><li> Coloque solução de sacarose a 5 ml de 15% (400 mM de acetato de potássio, HEPES de potássio 25 mM, pH 7,2, acetato de magnésio 15 mM, 200 ^ M de ciclo-heximida, DTT 1 mM, PMSF 1 mM, 40 U / ml de RNase inibidor, e 15% de sacarose ) para um tubo de ultracentrífuga SW41 (14 x 89 mm). </li><li> Usando uma seringa de 5 ml, adicionar solução de sacarose a 5 ml de 50% (400 mM de acetato de potássio, HEPES de potássio 25 mM, pH 7,2, acetato de magnésio 15 mM, 200 ^ M de ciclo-heximida, DTT 1 mM, PMSF 1 mM, 40 U / ml de ARNase inibidor, e 50% de sacarose) debaixo da sacarose 15% utilizando uma agulha de aço longo, em seguida, remover a agulha. </li><li&gt; Selar o topo do tubo do gradiente com parafilme, inclinar o tubo lentamente sobre o seu lado, numa posição estável que impeça o rolamento, de modo que é deitado na horizontal sobre a superfície da mesa. Manter o tubo no seu lado, pelo menos, 2 h. Enquanto espera, comece com o passo 6.5. </li><li> Após 2 horas, incline lentamente o tubo de volta na posição vertical e transferir o tubo de gelo, permitindo-o esfriar por pelo menos 15 minutos antes da amostra de carregamento (passo 14). </li><li> Recolha de sangue infectado com Plasmodium suficiente cultura estágio para gerar 100-500 ug de RNA total, ou cerca de 100 ml de cultura assíncrona em 3-5% parasitemia. Adicionar 1/10 volume de que o meio de cultura contendo 10x (2 mM) de ciclo-heximida (CHX) e incubar a 37 ° C durante 10 min. <ol><li> Culturas por centrifugação a 500 xg durante 7 minutos com a centrifugadora (freio 1), lavar duas vezes com, em seguida, temperatura ambiente 1x PBS contendo 200 uM CHX. Volte a suspender as culturas de parasitas em 1x PBS contendo 200 mM CHX e armazenar no gelo. </li></ol></li&gt; <li> Estimar o volume do pelete de RBC. Adicionar tampão de lise (400 acetato de potássio mM, HEPES de potássio 25 mM, pH 7,2, acetato de magnésio 15 mM, 200 uM de CHX, DTT 1 mM, PMSF 1 mM, 40 U / ml de RNase Inhibitor, 1% (v / v) de IGEPAL CA -630, e 0,5% (w / v) DOC) à pelete de RBC a um volume final de 4,25 ml. Incubar o lisado a 4 ° C durante 10 min durante a rotação. </li><li> Transferir o lisado para tubos de microcentrífuga, e depois centrifugar as amostras numa microcentrífuga a 16000 xg e 4 ° C durante 10 min. </li><li> Prepare almofadas de sucrose por pipetagem de 1,25 ml de solução de almofada de sacarose a frio 0,5 M (400 mM de acetato de potássio, HEPES de potássio 25 mM, pH 7,2, acetato de magnésio 15 mM, 200 ^ M de ciclo-heximida, DTT 1 mM, PMSF 1 mM, 40 U / ml de ARNase inibidor, e sacarose 0,5 M) para um tubo de ultracentrífuga SW55 (13 x 51 mm). </li><li> Camada cuidadosamente 3,75 ml de sobrenadante lisado (a partir do passo 7) no topo da almofada de sacarose utilizando uma seringa e pequeno (~ 27) agulha de calibre. Store o lisado remanescente (~ 500 mL) a -80 ° C para extrair os níveis de ARN total, como indicado no ponto 1. </li><li> Coloque as amostras num rotor de ultracentrífuga, pré-refrigerada a 4 ° C, a qual pode conter tubos de 13,2 ml. Centrifugar as amostras a 366.000 xg e 4 ° C durante 146 min. </li><li> Usando uma pipeta, transferir o sobrenadante para um tubo cónico de 15 ml. Armazene o sobrenadante a -80 ° C para o isolamento de RNA livre (não ligada por ribossomos) RNAs. </li><li> Ressuspender o sedimento ribossoma em 500 ul de tampão de ressuspensão ribossoma (400 mM de acetato de potássio, HEPES de potássio 25 mM, pH 7,2, acetato de magnésio 15 mM, 200 ^ M de ciclo-heximida, DTT 1 mM, PMSF 1 mM, e 40 U / ml de RNase inibidor) pipetando durante 5 min. </li><li> Centrifugar as amostras numa microcentrífuga a 16000 xg e 4 &#160; ° C durante 10 min. </li><li> Mantendo o gradiente do passo 4 em gelo, remover o Parafilm, em seguida, a camada cuidadosamente a suspensão ribossoma no topo do gradiente using uma seringa e pequena (~ 27) agulha de calibre. </li><li> Carregar o tubo num rotor de ultracentrífuga pré-gelada e centrifugar os gradientes carregados em 200.000 xg e 4 ° C durante 180 min. Quando a rotação estiver concluída, loja centrifugado gradientes a 4 ° C até estar pronto para carregar no fraccionador. </li><li> Coloque um tubo de ultracentrífuga vazio no fraccionador do gradiente (este pode ser um tubo usado em uma execução anterior), depois lave com água RNase por 5 min a 100 x 10 velocidade. </li><li> Durante o passo de lavagem em 6,16, ajustar a sensibilidade do detector de absorvância no UV. Uma boa sensibilidade de partida é de 0,2, mas este pode ter de ser ajustado em mais tarde corre dependendo do sinal A 254 (que varia com base no número de parasitas, etc.). </li><li> Uma vez que a sensibilidade do detector é definido, defina o sinal de linha de base para zero, enquanto a água está fluindo através do detector. </li><li> Depois de se lavar o colector de fracções, inverter o fluxo de fluido até que as linhas estão vazios e, em seguida, REMove o tubo de ultracentrífuga vazio. </li><li> Executar solução de 60% de sacarose através do fraccionador até que ele sai do aparelho de agulha. </li><li> Insira o tubo que contém o primeiro gradiente na parte superior da câmara de carga e apertar o selo, tomando cuidado para não apertar demasiado. Em seguida, furar o fundo do tubo com a agulha. </li><li> Repor a velocidade de fluxo de fluido a 12,5 x 10 (controlada pelo botão de controlo de velocidade do fluxo na parte da frente da bomba), em seguida, definir o colector de fracções automático para recolher fracções de 18 seg (~ 330 ul / fracção) em tubos de microcentrífuga. </li><li> Comece a frente de fluxo da solução de sacarose a 60%. </li><li> Quando a primeira gota da solução gradiente cai para dentro do tubo de microcentrífuga, começará imediatamente tanto a recolha de fracções e gravação ao vivo do sinal A 254. </li><li> Uma vez que uma queda brusca é observada no sinal de A 254, que corresponde à interface entre as soluções de sacarose a 50% e 60%, parar o fluxo de fluido e uma 254 </sub&gt; gravação. </li><li> Armazenar as fracções de gradiente a -80 &#160; ° C para uso posterior. </li><li> Inverter o fluxo de fluido a 100 x 10 velocidade até que a solução de sacarose 60% esvazia para fora do tubo de ultracentrífuga. </li><li> Se houver gradientes adicionais para fracionar, remover o tubo de ultracentrífuga vazio da câmara de carga e reinicie a partir do passo 6.21. Se todas as amostras são completadas, lavar o aparelho como foi realizada em passos 6.16 e 6.19. </li></ol>

<ol><li>World Health Organization. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22World+Malaria+Report%22">World Malaria Report</a>. , (2014).</li>
<li>Livincstone, F. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Malaria+and+human+polymorphisms%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Genet%22%5BJournal%5D)">Malaria and human polymorphisms.</a> Annu Rev Genet. 5, 33-64 (1971).</li>
<li>Nagel, R. L., Roth, E. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Malaria+and+red+cell+genetic+defects%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Malaria and red cell genetic defects.</a> Blood. 74, 1213-1221 (1989).</li>
<li>Aidoo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protective+effects+of+the+sickle+cell+gene+against+malaria+morbidity+and+mortality%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Protective effects of the sickle cell gene against malaria morbidity and mortality.</a> Lancet. 359, 1311-1312 (2002).</li>
<li>Tiffert, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+hydration+state+of+human+red+blood+cells+and+their+susceptibility+to+invasion+by+Plasmodium+falciparum%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">The hydration state of human red blood cells and their susceptibility to invasion by Plasmodium falciparum.</a> Blood. 105, 4853-4860 (2005).</li>
<li>Fairhurst, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abnormal+display+of+PfEMP-1+on+erythrocytes+carrying+haemoglobin+C+may+protect+against+malaria%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Abnormal display of PfEMP-1 on erythrocytes carrying haemoglobin C may protect against malaria.</a> Nature. 435, 1117-1121 (2005).</li>
<li>Cyrklaff, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemoglobins+S+and+C+interfere+with+actin+remodeling+in+Plasmodium+falciparum-infected+erythrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Hemoglobins S and C interfere with actin remodeling in Plasmodium falciparum-infected erythrocytes.</a> Science. 334, 1283-1286 (2011).</li>
<li>Friedman, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Erythrocytic+mechanism+of+sickle+cell+resistance+to+malaria%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Erythrocytic mechanism of sickle cell resistance to malaria.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 75, 1994-1997 (1978).</li>
<li>Pasvol, G., Weatherall, D. J., Wilson, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+mechanism+for+the+protective+effect+of+haemoglobin+S+against+P.+falciparum+malaria%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cellular mechanism for the protective effect of haemoglobin S against P. falciparum malaria.</a> Nature. 274, 701-703 (1978).</li>
<li>Lecellier, C. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+cellular+microRNA+mediates+antiviral+defense+in+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A cellular microRNA mediates antiviral defense in human cells.</a> Science. 308, 557-560 (2005).</li>
<li>Niu, Q. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+artificial+miroRNAs+in+transgenic+Arabidopsis+thaliana+confers+virus+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+biotechnology%22%5BJournal%5D)">Expression of artificial miroRNAs in transgenic Arabidopsis thaliana confers virus resistance.</a> Nature biotechnology. 24, 1420-1428 (2006).</li>
<li>Zhao, G., Yu, D., Weiss, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroRNAs+in+erythropoiesis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Hematol%22%5BJournal%5D)">MicroRNAs in erythropoiesis.</a> Curr Opin Hematol. 17, 155-162 (2010).</li>
<li>Lee, Y. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LIN28B-mediated+expression+of+fetal+hemoglobin+and+production+of+fetal-like+erythrocytes+from+adult+human+erythroblasts+ex+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">LIN28B-mediated expression of fetal hemoglobin and production of fetal-like erythrocytes from adult human erythroblasts ex vivo.</a> Blood. 122, 1034-1041 (2013).</li>
<li>Sangokoya, C., Doss, J. F., Chi, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Iron-responsive+miR-485-3p+regulates+cellular+iron+homeostasis+by+targeting+ferroportin%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+genetics%22%5BJournal%5D)">Iron-responsive miR-485-3p regulates cellular iron homeostasis by targeting ferroportin.</a> PLoS genetics. 9, e1003408(2013).</li>
<li>Chen, S. Y., Wang, Y., Telen, M. J., Chi, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genomic+analysis+of+erythrocyte+microRNA+expression+in+sickle+cell+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">The genomic analysis of erythrocyte microRNA expression in sickle cell diseases.</a> PLoS ONE. 3, e2360(2008).</li>
<li>Sangokoya, C., Telen, M. J., Chi, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((microRNA+miR-144+modulates+oxidative+stress+tolerance+and+associates+with+anemia+severity+in+sickle+cell+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">microRNA miR-144 modulates oxidative stress tolerance and associates with anemia severity in sickle cell disease.</a> Blood. 116, 4338-4348 (2010).</li>
<li>Deitsch, K., Driskill, C., Wellems, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transformation+of+malaria+parasites+by+the+spontaneous+uptake+and+expression+of+DNA+from+human+erythrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+acids+research%22%5BJournal%5D)">Transformation of malaria parasites by the spontaneous uptake and expression of DNA from human erythrocytes.</a> Nucleic acids research. 29, 850-853 (2001).</li>
<li>Liang, X. H., Haritan, A., Uliel, S., Michaeli, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((trans+and+cis+splicing+in+trypanosomatids%3A+mechanism%2C+factors%2C+and+regulation%5BTitle%5D)+AND+%22Eukaryotic+cell%22%5BJournal%5D)">trans and cis splicing in trypanosomatids: mechanism, factors, and regulation.</a> Eukaryotic cell. 2, 830-840 (2003).</li>
<li>Baum, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+genetics+and+comparative+genomics+reveal+RNAi+is+not+functional+in+malaria+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+acids+research%22%5BJournal%5D)">Molecular genetics and comparative genomics reveal RNAi is not functional in malaria parasites.</a> Nucleic acids research. 37, 3788-3798 (2009).</li>
<li>Hall, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comprehensive+survey+of+the+Plasmodium+life+cycle+by+genomic%2C+transcriptomic%2C+and+proteomic+analyses%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A comprehensive survey of the Plasmodium life cycle by genomic, transcriptomic, and proteomic analyses.</a> Science. 307, 82-86 (2005).</li>
<li>Caro, F., Ahyong, V., Betegon, M., DeRisi, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+regulatory+dynamics+of+translation+in+the+asexual+blood+stages%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">Genome-wide regulatory dynamics of translation in the asexual blood stages.</a> eLife. 3, (2014).</li>
<li>Oehring, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organellar+proteomics+reveals+hundreds+of+novel+nuclear+proteins+in+the+malaria+parasite+Plasmodium+falciparum%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+biology%22%5BJournal%5D)">Organellar proteomics reveals hundreds of novel nuclear proteins in the malaria parasite Plasmodium falciparum.</a> Genome biology. 13, R108(2012).</li>
<li>Lasonder, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+the+Plasmodium+falciparum+proteome+by+high-accuracy+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Analysis of the Plasmodium falciparum proteome by high-accuracy mass spectrometry.</a> Nature. 419, 537-542 (2002).</li>
<li>Bozdech, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+transcriptome+of+the+intraerythrocytic+developmental+cycle+of+Plasmodium+falciparum%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+biology%22%5BJournal%5D)">The transcriptome of the intraerythrocytic developmental cycle of Plasmodium falciparum.</a> PLoS biology. 1, E5(2003).</li>
<li>Gardner, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome+sequence+of+the+human+malaria+parasite+Plasmodium+falciparum%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Genome sequence of the human malaria parasite Plasmodium falciparum.</a> Nature. 419, 498-511 (2002).</li>
<li>Zhang, M., Joyce, B. R., Sullivan, W. J. Jr., Nussenzweig, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translational+control+in+Plasmodium+and+toxoplasma+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22Eukaryotic+cell%22%5BJournal%5D)">Translational control in Plasmodium and toxoplasma parasites.</a> Eukaryotic cell. 12, 161-167 (2013).</li>
<li>Lacsina, J. R., LaMonte, G., Nicchitta, C. V., Chi, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polysome+profiling+of+the+malaria+parasite+Plasmodium+falciparum%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+biochemical+parasitology%22%5BJournal%5D)">Polysome profiling of the malaria parasite Plasmodium falciparum.</a> Molecular and biochemical parasitology. 179, 42-62 (2011).</li>
<li>Bunnik, E. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polysome+profiling+reveals+translational+control+of+gene+expression+in+the+human+malaria+parasite+Plasmodium+falciparum%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+biology%22%5BJournal%5D)">Polysome profiling reveals translational control of gene expression in the human malaria parasite Plasmodium falciparum.</a> Genome biology. 14, R128(2013).</li>
<li>LaMonte, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translocation+of+sickle+cell+erythrocyte+microRNAs+into+Plasmodium+falciparum+inhibits+parasite+translation+and+contributes+to+malaria+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+host+%26+microbe%22%5BJournal%5D)">Translocation of sickle cell erythrocyte microRNAs into Plasmodium falciparum inhibits parasite translation and contributes to malaria resistance.</a> Cell host & microbe. 12, 187-199 (2012).</li>
<li>Lambros, C., Vanderberg, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synchronization+of+Plasmodium+falciparum+erythrocytic+stages+in+culture%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+parasitology%22%5BJournal%5D)">Synchronization of Plasmodium falciparum erythrocytic stages in culture.</a> The Journal of parasitology. 65, 418-420 (1979).</li>
<li>Bourgeois, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+three+real-time+PCR+methods+with+blood+smears+and+rapid+diagnostic+test+in+Plasmodium+sp.+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+microbiology+and+infection+%3A+the+official+publication+of+the+European+Society+of+Clinical+Microbiology+and+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Comparison of three real-time PCR methods with blood smears and rapid diagnostic test in Plasmodium sp. infection.</a> Clinical microbiology and infection : the official publication of the European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases. 16, 1305-1311 (2010).</li>
<li>Abruzzo, L. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Validation+of+oligonucleotide+microarray+data+using+microfluidic+low-density+arrays%3A+a+new+statistical+method+to+normalize+real-time+RT-PCR+data%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">Validation of oligonucleotide microarray data using microfluidic low-density arrays: a new statistical method to normalize real-time RT-PCR data.</a> Biotechniques. 38, 785-792 (2005).</li>
<li>Sangokoya, C., LaMonte, G., Chi, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+microRNAs+of+human+mature+erythrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+molecular+biology%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of microRNAs of human mature erythrocytes.</a> Methods in molecular biology. 667, 193-203 (2010).</li>
<li>Rathjen, T., Nicol, C., McConkey, G., Dalmay, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+short+RNAs+in+the+malaria+parasite+and+its+red+blood+cell+host%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+Lett%22%5BJournal%5D)">Analysis of short RNAs in the malaria parasite and its red blood cell host.</a> FEBS Lett. 580, 5185-5188 (2006).</li>
<li>Xue, X., Zhang, Q., Huang, Y., Feng, L., Pan, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((No+miRNA+were+found+in+Plasmodium+and+the+ones+identified+in+erythrocytes+could+not+be+correlated+with+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Malar+J%22%5BJournal%5D)">No miRNA were found in Plasmodium and the ones identified in erythrocytes could not be correlated with infection.</a> Malar J. 7, 47(2008).</li>
</ol>

Os autores não têm interesses financeiros concorrentes a declarar.

HbS é uma das variantes da hemoglobina mais comuns em áreas endêmicas de malária, em grande parte porque ele fornece proteção contra a malária grave causada por P. falciparum. As técnicas necessárias para caracterizar o papel do microRNA humana na regulação de genes de P. falciparum são detalhadas ao longo deste manuscrito. Ao extrair o RNA total de modo a incluir todos os pequenos RNAs, e através da realização de um procedimento de lise parasita relativamente simples, estes ARN de fusão foram...

A malária, causada por parasitas apicomplexan do gênero Plasmodium, é a doença parasitária humana mais comum, infectando mundialmente cerca de 200 milhões de pessoas por ano e causando cerca de 600.000 mortes 1. Dos cinco espécies de Plasmodium que infectam os humanos, o mais relevante para a doença humana são P. falciparum e P. vivax, devido às suas distribuições generalizadas e potencial para complicações graves de malária. O ciclo de vida do parasita da malária requer infecção de ambos os mosquitos e seres humanos. Quando um mosquito infectado pica um humano, os parasitas viajar através da corrente sanguínea para o fígado, onde uma rodada inicial de replicação ocorre. Depois merozoites ruptura do hepatócito hospedeiro, infectam os glóbulos vermelhos próximos, quer iniciar a replicação assexuada ou sexual. A fase assexuada de replicação, que dura 48 horas em P. falciparum, é o foco deste estudo, uma vez que é a fonte da maior parte malsintomas Aria e é facilmente recapitulou in vitro. Embora uma série de iniciativas de saúde pública, incluindo as terapias anti-malária melhoradas, ter um pouco reduzido o fardo do paludismo a nível mundial, o surgimento contínuo de parasitas resistentes aos medicamentos constitui um problema para os esforços de controle da malária. Uma área que pode sugerir novas abordagens terapêuticas é o estudo sobre como as várias variantes genéticas conferem resistência à malária. Em regiões endêmicas de malária, uma variedade de polimorfismos eritrocitários são bastante comuns 2,3. Estas mutações, com falciforme sendo talvez o mais importante, estão muitas vezes associados com substancial resistência ao aparecimento de infecção por malária sintomática 4. Os mecanismos subjacentes pelo qual eles causam eritrócitos para resistir à infecção da malária são completamente compreendidas. Eritrócitos parasitados com mutações da hemoglobina estão sujeitos a fagocitose aumentada através de uma maior rigidez celular e desidratação, queestá associada à diminuição invasão pelo P. falciparum 5. O alelo HbC também afecta a expressão da proteína na superfície do eritrócito e com a remodelação do citoesqueleto, inibindo a continuação do desenvolvimento do parasita 6,7. Finalmente, P. falciparum cresce pouco dentro de foice homozigoto (HbSS) 8,9 eritrócitos in vitro, sugerindo fatores eritrocitários intrínsecas de resistência da malária. No entanto, embora todos esses mecanismos parecem desempenhar um papel, eles não explicar completamente os mecanismos de resistência das células falciformes trás para a malária. Um conjunto de fatores eritrocitários potencial que continuam a ser mal compreendido é a grande piscina de miRNA presentes dentro de eritrócitos maduros. MicroRNAs são pequenos RNAs não-codificantes, 19-25 nt de tamanho, que medeiam a tradução e / ou estabilidade de mRNAs alvo por emparelhamento de bases dentro da UTR 3 &#39;. Eles têm sido implicados no controlo de respostas imunitárias de mamíferos, incluindo a supressão óf replicação do vírus 10, e foram exibidas para conferir resistência a vírus em plantas Eles também têm sido mostrados para regular vários processos, incluindo a eritropoiese eritrocitárias 11,12 e metabolismo do ferro 13. Estudos anteriores identificaram uma população abundante e diversificada de miRNAs eritrocitários, cuja expressão foi alterada drasticamente nos HbSS eritrócitos 14,15. Desde eritrócitos maduros falta de transcrição e tradução activo, o papel funcional destas miARNs eritrocitárias permanece obscura. Como material de troca significativa ocorre entre a célula hospedeira e P. falciparum durante o ciclo de desenvolvimento intraerythrocytic (IDC) 16, especulou-se que o perfil de miARN alterado dentro eritrócitos HbS podem contribuir directamente para a célula-resistência intrínseca a malária. Estes estudos culminaram no desenvolvimento de um gasoduto para isolar, identificar e funcionalmente estudar o papel de miARN humana dentro do mAlaria parasita, P. falciparum, que indicou que esses hospedeiros / miRNAs humanos em última análise, de forma covalente fusível e, em seguida, traducionalmente reprimir transcritos de ARNm parasita 17. Isto proporcionou um exemplo dos primeiros cruzada entre espécies transcritos quiméricos formados por trans-splicing e implica que esta fusão ARNm-miARN pode estar a ocorrer em outras espécies, incluindo outros parasitas. Todos os mRNAs de tripanossomas são trans-emendado com uma tala-líder (SL) para regular a separação de transcrições policistrónicos 18. Desde P. falciparum carece orthologs para Dicer / Ago 19,20, é possível que miRNAs eritrócitos seqüestrar máquinas SL semelhante em P. falciparum para integrar genes-alvo. Estudos recentes em P. falciparum têm, de facto, indica a presença de sequências líder 5 &#39;da tala 21. Este estudo detalha os métodos que levaram à descoberta de humanos-parasita miRNA-RNAm transcrições de fusão, incluindo tanto transcriptomic e translatécnicas de regulação adicionais. Os objetivos gerais destes métodos são a investigar os efeitos de pequenos RNAs na regulação gênica, fenótipos e tradução potencial de P. transcrições falciparum. A identificação inicial de transcritos quiméricos humano-parasita invocado a utilização de técnicas de análise de RNA, tais como PCR em tempo real, o seqüenciamento do transcriptoma e EST captura biblioteca, que incluía tanto totais e pequenos RNAs, em vez de usar as técnicas que só isoladas pequenos RNAs. Isolamento de ARN todos juntos em um tanque grande, em vez de separadamente, permitiu a identificação de ambos os pequenos RNAs humanos translocados do parasita, assim como a presença destas sequências de ARN pequenos, como parte de uma sequência maior. Este então necessária uma análise do estado tradução destes ARNms de fusão para determinar as consequências funcionais destas fusões. Enquanto esforços extensivos sobre a caracterização do genoma do parasita umad transcriptoma contribuíram para a compreensão da biologia do parasita 22-25, muito menos se sabe sobre a regulação da tradução do mRNA transcriptoma em todo o ciclo de vida de P. falciparum 26. Esta compreensão limitada do proteoma do parasita tem dificultado tanto a compreensão da biologia do parasita ea capacidade de identificar novos alvos para a próxima geração de terapias anti-malária. Esta lacuna na compreensão da biologia celular do parasita persiste em grande parte devido à falta de técnicas adequadas para investigar regulação traducional em P. falciparum. Um estudo recente descreveu o uso de pegada ribossomal de P. falciparum para determinar o status de tradução global 21. Uma medição bem estabelecido de potencial de translação dos transcritos corresponde ao número de ribossomas associados determinados pelo perfil polissoma. No entanto, quando esta técnica é aplicada a P. falciparum &lt;/ em&gt;, é incapaz de recuperar a maioria polissomos e captura predominantemente monosomes. Recentemente, vários grupos 27,28 otimizaram P. técnicas polissomas falciparum por lise do eritrócito e parasita simultaneamente para preservar os polissomos e caracterizar a ocupação ribossômica e potencial translacional desses parasitas da malária durante o seu desenvolvimento assexuado em hospedeiras células vermelhas 28. Coletivamente, esses métodos demonstram que a fusão observado de miRNA e parasitas mRNAs humanos modula a tradução da proteína do parasita desses mRNAs de fusão, que foi demonstrada utilizando métodos previamente relatados 27, e é um importante determinante da resistência da malária em HbAS e 17 HbSS eritrócitos. Estes métodos seriam úteis em qualquer sistema de procura para identificar e explorar funcionalmente eventos de splicing de ARN, ARN de fusão se estas estão dentro P. falciparum ou outros sistemas eucariotas.

<table><tbody><tr><td>REAGENTS-Todos os reagentes devem ser livres de RNAse.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Diethyl pyrocarbonate</td><td>Sigma</td><td>D5758</td><td>DEPC DEPC-água</td></tr><tr><td>tratada (ver CONFIGURAÇÃO DO REAGENTE)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Yoyo-1 DNA corante fluorescente</td><td>Thermo Fisher</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gene Pulser II eletroporador Bio-Rad</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>0,2 cm Cubetas</td><td></td><td></td><td></td>de eletroporação</tr><tr><td>4 M acetato de potássio</td><td>Mallinckrodt</td><td>6700</td><td></td></tr><tr><td>2 M HEPES de potássio</td><td>Sigma</td><td>H0527</td><td>pH 7,2</td></tr><tr><td>1 M acetato de magnésio</td><td>Sigma</td><td>M-2545</td><td></td></tr><tr><td>1 M ditiotreitol</td><td>Research Products International</td><td>D11000</td><td>DTT</td></tr><tr><td>100 mM fluoreto de fenilmetilsulfonato Sigma</td><td></td><td>P7626</td><td>PMSF, dissolvido em isopropanol</td></tr><tr><td>10% (v/v) Igepal CA-630</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I3021</td><td></td></tr><tr><td>10% (p/v) desoxicolato de sódio</td><td>Sigma</td><td>D-6750</td><td>DOC</td></tr><tr><td>Cicloheximida</td><td>Sigma</td><td>C-7698</td><td>CHX</td></tr><tr><td>Sacarose</td><td>Mallinckrodt</td><td>8360-04</td><td></td></tr><tr><td>RNAseOUT (Invitrogen, cat. no. 100000840)</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td>100000840</tr><tr><td>RPMI-1640 c/ L-glutamina</td><td>Cellgro</td><td>10-040-CV</td><td></td></tr><tr><td>10% AlbuMAX I</td><td>Invitrogen</td><td>11020-039</td><td>p/v em água estéril</td></tr><tr><td>Gentamicina</td><td>Gibco</td><td>15750-060</td><td></td></tr><tr><td>HT suplemento (100x) (Invitrogen, cat. n.º 11067030)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>45% (p/v) sacarose (Sigma, cat. n.º G8769)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tampão HEPES 1 M (Gibco, cat. no. 15630-080)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1x solução salina tamponada com fosfato (PBS; Cellgro, gato. n.º 2109310CV)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Balão de filtro de vácuo Corning de 500 ml (VWR, cat. n.º 430769)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lâminas de vidro (VWR, cat. n.º 48311-702)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Coloração de Giemsa (50X) (VWR, cat. n.º m708-01)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kit de isolamento de miRNA mirVana (Ambion, ThermoFisher Scientific).</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5 'MiRNA maduro conjugado com biotina (a sequência varia de acordo com o miRNA de interesse) (Dharmacon)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Biotina em pó (Sigma-Aldrich)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 M Cloreto de Potássio</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Estreptavidina Sepharose Grânulos de Alto Desempenho (GE Healthcare)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tampão de ressuspensão de ribossomo (ver CONFIGURAÇÃO DO REAGENTE)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tampão de lise (ver CONFIGURAÇÃO DO REAGENTE)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solução de gradiente de sacarose a 15% (p/v) (ver CONFIGURAÇÃO DO REAGENTE)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solução de gradiente de sacarose a 50% (p/v) (ver CONFIGURAÇÃO DO REAGENTE)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Almofada de sacarose a 0,5 M (ver CONFIGURAÇÃO DO REAGENTE)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solução de busca de sacarose a 60% (p/v) (ver CONFIGURAÇÃO DO REAGENTE)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Meios de cultura de células de Plasmodium (ver CONFIGURAÇÃO DO REAGENTE)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tampão de lavagem de captura de RNA (ver CONFIGURAÇÃO DO REAGENTE)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tampão de eluição de RNA (ver CONFIGURAÇÃO DO REAGENTE)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>REAGENT SETUP</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solutions</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><forte>Meio de cultura de células de Plasmodium</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>500 ml RPMI-1640 c/ L-glutamina</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>0,5 ml gentamicina</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5 ml suplemento</td><td></td><td></td><td></td>HT</tr><tr><td>2,5 ml 45% glicose</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>25 ml 10% AlbuMAX I</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>12,5 ml 1 M HEPES</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Filtro estéril com balão filtrante a vácuo de 0,2 mm.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><forte>Meios de cultura de células de Plasmodium contendo 10x CHX</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mesma receita que os meios de cultura de</td> células de Plasmodium acima, com a adição de:<td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>2 mM de cicloheximida</td> O meio é preparado normalmente, depois adiciona CHX a uma concentração final de 2 mM e filtra.&nbsp;<td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><forte>1x PBS contendo cicloheximida</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>A cicloheximida é adicionada fresca a 1x PBS até uma concentração final de 200 mM e mantida a 4 OC até o uso.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><forte>tampão de ressuspensão do ribossomo</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>400 mM de acetato</td><td></td><td></td><td></td>de potássio</tr><tr><td>25 mM HEPES de potássio, pH 7,2</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>15 mM de acetato</td><td></td><td></td><td></td>de magnésio</tr><tr><td>200 mM de cicloheximida (adicionar fresco)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 mM DTT (adicionar fresco)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 mM PMSF (adicionar fresco)</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>40 U / ml RNaseOUT (adicionar fresco)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>< forte > tampão de lise< / forte ></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>mesma receita do tampão de ressuspensão do ribossomo acima, com a adição de:</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>1% (v / v) Igepal CA-630</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>0,5% (p / v) DOC</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>< soluções de sacarose > fortes < / fortes ></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>mesma receita do tampão de ressuspensão do ribossomo acima, com a adição de quantidades variadas de sacarose:</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>15% (p / v) de sacarose para fazer uma solução</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>de gradiente de sacarose a 15%50% (p/v) de sacarose para fazer solução</td><td></td><td></td><td></td>de gradiente de sacarose</tr><tr><td>a 50% 0,5 M de sacarose para fazer 0,5 M de almofada</td><td></td><td></td><td></td>de sacarose</tr><tr><td>Como acima, cicloheximida, DTT, PMSF e RNaseOUT devem ser adicionados frescos.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>A solução de perseguição de sacarose a 60% requer apenas sacarose e água, nenhum outro componente</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>60% (p/v) de sacarose em água tratada com DEPC para fazer uma solução</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr> de perseguição de sacarose a 60%<tr><td>RNA Capture Wash Buffer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>20 mM&nbsp; KCl</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5 unidade/ml Rnase Out (Invitrogen)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>RNA Capture Elution Buffer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mesma receita do RNA Capture Wash Buffer, com a adição de:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>2 mM de biotina</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>EQUIPMENT</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>SW55 Rotor de ultracentrífuga Ti (Beckman, cat. nº 342194)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rotor de ultracentrífuga SW41 Ti (Beckman, cat. no. 331362)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ultra-ClearTM &frac12; x 2 pol (13 x 51 mm) tubos de ultracentrífuga para o SW55 (Beckman, cat. nº 344057)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Polialômero 9/16 x 3 &frac12; em tubos de ultracentrífuga (14 x 89 mm) para a ultracentrífuga SW41 (Beckman, cat. no. 331372)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>L8-80M (Beckman)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Agulha de seringa romba de aço, 4 polegadas, 16 G (Aldrich, cat. no. Z261378)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Seringa de 1 ml com agulha de 27 G&frac12; (Becton Dickinson, cat. no. 309623)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Seringa de 5 ml (Becton Dickinson, cat. no. 309646)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rotador de tubo</td> de parafilme, ponta a ponta <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microcentrífuga, refrigerado</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sistema de fracionamento de gradiente de densidade (Teledyne Isco, cat. no. 69-3873-179)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>TracerDAQ (Computação de Medição)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td>Centrífuga Eppendorf 5810R <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rotor Eppendorf A-4-81 (Eppendorf, cat. nº 022638807)</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

métodos para investigar o papel de regulamentação dos pequenos rnas e ribosomal ocupação de<em&gt; plasmodium falciparum</em

Methods to Investigate the Regulatory Role of Small RNAs and Ribosomal Occupancy of Plasmodium falciparum

A variação genética responsável pelo alelo falciforme (HbS) permite eritrócitos para resistir à infecção pelo parasita da malária, P. falciparum. A base molecular da resistência a este, que é conhecida por ser multifactorial, permanece incompletamente compreendida. Estudos recentes descobriram que a expressão diferencial de microRNAs de eritrócitos, uma vez translocados em parasitas da malária, afetar tanto a regulação gênica e crescimento do parasita. Estes miARNs foram posteriormente mostrados para inibir a tradução do ARNm através da formação de um transcrito de ARN quimérico através de 5 &#39;do RNA de fusão com subconjuntos discretos de mRNAs do parasita. Aqui, as técnicas que foram usadas para estudar o papel funcional e putativos mecanismo microRNAs eritrócitos subjacentes na regulação gênica e potencial translacional de P. falciparum, incluindo a transfecção de microRNAs sintéticos modificados em eritrócitos de acolhimento, serão detalhados. Por fim, um método de gradiente de polissoma é usado para determinar a extensão da TRAnslation destes transcritos. Juntas, essas técnicas nos permitiu demonstrar que os níveis desregulados de microRNAs eritrócitos contribuir para a célula-intrínseca resistência da malária dos eritrócitos falciformes.

Perfil global de microARN humana em P. falciparum As técnicas aqui apresentadas foram usadas para extrair microARNs de parasitas em uma variedade de condições. Uma coisa a notar é que extrações de RNA para glóbulos vermelhos não infectados foram realizados como indicado na 32, que muitas vezes serviu como um ponto de referência para os dados de microRNA apresentadas tanto este artigo e do estudo original 29. Esses estudos também demonstraram que os eri...

Os microRNAs humanos se translocam dos eritrócitos hospedeiros para os parasitas Plasmodium falciparum. Aqui, as técnicas usadas para transfectar microRNAs sintéticos em eritrócitos hospedeiros e isolar todos os RNAs de P. falciparum são descritas. Além disso, este artigo detalhará um método de isolamento de polissomos em P. falciparum para determinar a ocupação ribossômica e o potencial translacional de transcritos do parasita.

Métodos para investigar o papel de Regulamentação dos Pequenos RNAs e Ribosomal Ocupação de<em&gt; Plasmodium falciparum</em

The genetic variation responsible for the sickle cell allele (HbS) enables erythrocytes to resist infection by the malaria parasite, P. falciparum. The ...

O objetivo geral deste procedimento é estudar o papel dos microRNAs de eritrócitos na regulação pós-transcricional de genes de transcritos de plasmodium falciparum. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área da malária, como eventos de splicing de RNA com pequenos RNAs do hospedeiro ou do parasita podem afetar o potencial traducional de RNAs de fusão. A principal vantagem desta técnica é a capacidade de capturar RNAs totais e pequenos juntos em um único pool, demonstrando a presença de pequenos RNAs e RNAs de fusão em uma única célula.Além disso, este procedimento utiliza o fracionamento de polissomos para demonstrar como essas pequenas RNAs afetam a tradução dos seus produtos de mRNA de fusão. Para começar, realize a transfeção centrifugando 300 microlitros de hemácias em meio completo para malária a 800 × g durante cinco minutos. Lave os eritrócitos duas vezes com meio RPMI e re-suspenda as células em meio cyto completo com 50% de hematócrito.Em seguida, transfira as células para um tubo de eletroporação e adicione 10 microgramas de DYS com micro RNA conjugado à biotina ou um micro RNA controle negativo não conjugado. Para eletroporar as células, coloque o tubo em um eletroporador e aplique um único pulso. Em seguida, plaque as células e as infecte com plasmodium falciparum após quatro horas, conforme descrito no protocolo do texto.Em seguida, adicione 50 microlitros de avidina empacotada e perlas despolarizadas a 10 microgramas de RNA de parasita em um tubo microcêntrico e incube o tubo sob rotação por uma hora a quatro graus Celsius. Centrifugue a fita davan e as perlas a 800 × g por 30 segundos e, em seguida, lave o precipitado com 500 microlitros de tampão RNP contendo uma diluição 1:1000 de inibidor de RNA. Em seguida, elua o RNA das perlas ressuspendendo-as em 200 microlitros de RNA.Capture o tampão de eluição contendo biotina em excesso. Incube as microesferas durante a noite a quatro graus Celsius com rotação. Em seguida, centrifugue as microesferas a 800 ×g por 30 segundos e colete o RNA do sobrenadante.É essencial realizar a eluição com excesso de biotina e usar a quantidade mínima de strep avidina e microesferas para garantir uma eluição específica adequada. Isso reduz o enriquecimento de RNA de fundo. Por fim, determine o grau de enriquecimento de transcritos de P falciparum e o enriquecimento de micro-RNA por meio de R-T-P-C-R quantitativa conforme descrito no protocolo do texto para iniciar a separação de polissomos.Primeiro, coloque cinco mililitros de uma solução de sacarose a 50% em um tubo para ultracentrifugação. Em seguida, sobreponha cuidadosamente cinco mililitros de uma solução de sacarose a 15% sobre a solução de 50%. A seguir, feche o tubo com perfil e incline-o cuidadosamente até que fique na posição horizontal sobre a bancada.Certifique-se de que o tubo está em uma posição estável para evitar rolamento. Mantenha o tubo nesta posição por pelo menos duas horas para permitir a formação do gradiente. Enquanto isso, colete aproximadamente 100 mililitros de uma cultura assíncrona de sangue infectado por plasmodium com parasitemia de 3 a 5%.Em seguida, adicione 10 mililitros de meio de cultura contendo dois milimolares de cyclo, heide, e incube a 37 graus Celsius por 10 minutos. A seguir, centrifugue as células a 500 vezes G durante sete minutos e, depois, lave-as duas vezes com 80 mililitros de PBS contendo 200 micromolares de cyclo heide resus. Suspenda o pellet em PBS com cicloheximida e coloque-o no gelo.Pelotize as células e remova o sobrenadante para estimar o volume do pellet. Em seguida, lise as células em um volume final de 4,25 mililitros de tampão de lise e incube por 10 minutos a quatro graus Celsius com rotação. Tentativas anteriores de perfilagem de polissomos em espécies causadoras de malária revelaram predominantemente monossomos, pois uma lise inadequada leva à degradação dos polissomos em zonas de monossomos.Aqui utilizamos um tampão de lise que lisa os eritrócitos e os parasitas simultaneamente para preservar o padrão de polissomos de Plasmodium falciparum. Transfira o lisado para tubos de microcentrífuga e, em seguida, centrifugue a 16.000 × g a quatro graus Celsius por 10 minutos. Em um tubo de ultracentrífuga de cinco mililitros previamente resfriado, adicione 1,25 mililitro de solução fria de amortecedor de sacarose 0,5 molar usando uma seringa com agulha de 27 graus. Sobreponha cuidadosamente 3,75 mililitros do sobrenadante do lisado sobre o amortecedor de sacarose.Centrifugue a amostra a 366.000 × g a quatro graus Celsius por 146 minutos. Durante esse tempo, retorne lentamente o tubo de ultracentrifugação com gradiente de sacarose para a posição vertical e deixe em repouso sobre gelo por pelo menos 15 minutos. Após remover o lisado da ultracentrífuga, colete cuidadosamente o sobrenadante em um tubo cônico de 15 mililitros.Armazene o sobrenadante a menos 80 graus Celsius para preservar a fração de RNA não ligada aos ribossomos. Em seguida, reconstitua o pellet de ribossomos em 500 microlitros de suspensão Resus, tamponando por pipetagem durante cinco minutos para misturar; centrifugue a amostra a 16.000 × g a quatro graus Celsius por 10 minutos. Para remover material insolúvel, remova cuidadosamente o selo param na tubo de gradiente para evitar perturbar o gradiente e, em seguida, sobreponha a suspensão ribossomal na parte superior com uma seringa e agulha de 27 graus.Após centrifugar o tubo a 200.000 × g a quatro graus Celsius por 180 minutos, armazene os gradientes a quatro graus Celsius até o momento de carregá-los no fracionador. Coloque um tubo de ultracentrífuga vazio no fracionador de gradientes e lave o sistema com água livre de RNA por cinco minutos. Durante a lavagem, ajuste a sensibilidade do detector de absorbância UV a 254 nanômetros para 0,2.Embora isso possa precisar ser ajustado dependendo do sinal. Em seguida, ajuste o sinal de base a zero enquanto a água passa pelo detector. Após lavar o coletor, inverta o fluxo de fluido através do fracionador para esvaziar as tubulações e, então, remova o tubo de ultracentrífuga vazio.Execute uma solução de sacarose a 60% através do FRACTIONATOR até que saia pelo dispositivo da agulha. Em seguida, posicione o tubo de gradiente carregado na parte superior da câmara de carga e aperte o selo. Fure a parte inferior do tubo com a agulha.Em seguida, redefina a velocidade de fluxo do fracionador para 12,5 por 10 e colete frações de 18 segundos em tubos de microcentrífuga. Inicie o fluxo direto da solução de sacarose a 60% para eluir as frações antes que a primeira gota da solução em gradiente entre em um tubo de microcentrífuga. Inicie simultaneamente a coleta e a gravação em tempo real da absorbância no sinal de 254 nanômetros.Quando o sinal absorvente diminuir acentuadamente na interface das soluções de sacarose a 50% e 60%, interrompa o fluxo e a gravação. Armazene as frações do gradiente a menos 80 graus Celsius. Em seguida, inverta o fluxo de fluido até que a solução a 60% esvazie do tubo de ultracentrifugação.Remova o tubo e inicie a análise do próximo gradiente. A transfeção de hemácias com microRNA 4 5 1, seguida pela recuperação dos híbridos de micro RNAm biotinilados, revelou enriquecimento dos transcritos de fusão PKAR. A transfeção com microRNA controle ou não relacionado não enriqueceu o transcrito PKAR.Os dados mostram os picos de elucian das subunidades ribossomais de 40 s e 60 s, o ribossomo a DS e as frações de polissomos contendo o número indicado de ribossomos. Os ribossomos estavam associados aos transcritos isolados do PCI presentes no interior das hemácias. A análise de sangue northern demonstrou que os ribossomos e os polissomos estavam associados ao RNA 18 S e ao RNA 28 S.Juntamente com este procedimento, outros métodos como digestão com RNase H, ensaios de proteção por ribonuclease e hibridização Northern podem ser realizados para validar adicionalmente a presença de fusões de microRNA com MRNA. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como transfectar microRNAs em eritrócitos e subsequentemente capturar RNAs pequenos com o RNA total, incluindo transcritos quiméricos. Você também deverá ser capaz de recuperar polissomos para determinar a ocupação ribossomal e, portanto, o potencial traducional desses transcritos de fusão.

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

Análise de uma única célula de transcrição do gene pela RNA Fluorescente<em&gt; In Situ</em&gt; A hibridização (FISH)

Ribossomas desempenham um papel central na síntese de proteínas. Polyribosome (polysome) fracionamento por centrifugação em gradiente de densidade de sacarose permite a determinação direta da eficiência de tradução de mRNAs individuais em uma escala de todo o genoma. Além disso, este método pode ser usado para a análise bioquímica de ribossomas e factores associados--polissomas como acompanhantes e moléculas de sinalização.

Polysome Fracionamento e Análise de mamíferos Translatomes em uma escala genômica

Um ensaio baseado em ribozima altamente sensível, aplicável à triagem de alto rendimento de produtos químicos direcionados ao processo exclusivo de edição de RNA em patógenos tripanossomatídeos, é descrito neste artigo. Os inibidores podem ser usados como ferramentas para análise orientada por hipóteses do processo de edição de RNA e, finalmente, como terapêutica.

RNA Catalisador como repórter para Triagem Drogas contra edição de RNA em Tripanossomas

A capacidade das células de se adaptarem ao estresse é crucial para sua sobrevivência. A regulação da tradução do mRNA é uma dessas estratégias de adaptação, proporcionando uma regulação rápida do proteoma. Aqui, fornecemos um protocolo padronizado de perfil de polissoma para identificar mRNAs específicos que são traduzidos seletivamente sob condições de estresse.

Avaliação da Seletiva mRNA Tradução em células de mamíferos por polissoma Profiling

as interações RNA-proteína estão no centro de muitos processos celulares. Aqui, descrevemos um método in vivo para isolar RNA específico e identificar novas proteínas associadas a ele. Isso pode lançar uma nova luz sobre como os RNAs são regulados na célula.

Novel de Ligação a RNA Proteínas Isolamento pelo rápido Metodologia

Este manuscrito descreve um método para visualizar e quantificar eventos tradução localizada em compartimentos subcellular. A abordagem proposta neste manuscrito requer um sistema básico de imagens confocal e reagentes e é rápido e econômico.

Imunofluorescência quantitativa a medida Global localizadas Tradução

O objectivo geral da técnica de criação de perfil de polysome é análise da actividade translacional de mRNAs individuais ou mRNAs transcriptome durante a síntese de proteína. O método é importante para estudos de regulamento de síntese de proteínas, ativação de tradução e repressão em saúde e várias doenças humanas.

Polysome de criação de perfil em Leishmania, células humanas e testículo de rato

Um procedimento de isolamento de RNA em tandem (viagem) para recuperação de complexos mRNA-proteínas endogenamente formado é descrito. Especificamente, complexos de RNA-proteína são quitosana na vivo, polyadenylated RNAs são isolados de extratos com grânulos de oligo (descolamento) e particulares mRNAs são capturados com modificados oligonucleotides antisentidos do RNA. Proteínas vinculadas a mRNAs são detectadas pela análise de immunoblot.

Um procedimento de isolamento de RNA em Tandem do Oligonucleotide-baseado para recuperar complexos mRNA-proteínas eucariotas

Neste método, nós quantificamos a afinidade obrigatória de proteínas de ligação do RNA (rbps) aos locais de ligação cognato e non-cognato usando um simples, vivo, ensaio do repórter em pilhas bacterianas. O ensaio é baseado na repressão de um gene repórter.

Um ensaio para quantificar a ligação de RNA de proteína em bactérias

A tecnologia MAPS foi desenvolvida para examinar o targetome de um RNA regulatório específico in vivo. O sRNA de interesse é marcado com um aptamer MS2 permitindo a co-purificação de seus parceiros RNA e sua identificação por sequenciamento de RNA. Este protocolo modificado é particularmente adequado para bactérias Gram-positivas.

Purificação de Afinidade MS2 juntamente com sequenciamento de RNA em bactérias gram-positivas

Traduzindo ribossomos decodificam três nucleotídeos por codon em peptídeos. Seu movimento ao longo do mRNA, capturado pelo perfil ribossomo, produz as pegadas exibindo periodicidade trigêmea característica. Este protocolo descreve como usar o RiboCode para decifrar esse recurso proeminente de dados de criação de perfil ribossomos para identificar quadros de leitura abertos traduzidos ativamente no nível de transcriptome inteiro.

De novo Identificação de quadros de leitura abertos traduzidos ativamente com dados de perfil ribossomo

Aprenda métodos para investigar a regulação pós-transcricional em Plasmodium falciparum usando microRNAs de eritrócitos e perfilamento de polissomos. Esta técnica permite capturar RNAs totais e pequenos RNAs em uma única amostra.

Métodos para investigar o papel de Regulamentação dos Pequenos RNAs e Ribosomal Ocupação de

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