25 de maio de 2017
Este protocolo demonstra um método baseado em fluorescência para visualizar a vasculatura e quantificar sua complexidade em Xenopus tropicalis . Os vasos sanguíneos podem ser visualizados minutos após a injecção de um corante fluorescente no coração batendo de um embrião após manipulações genéticas e / ou farmacológicas para estudar o desenvolvimento cardiovascular in vivo .
O objetivo geral deste procedimento é visualizar a vasculatura de girinos de Xenopus tropicalis. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área da biologia cardiovascular, como a regulação da angiogênese. A principal vantagem desta técnica é que os vasos sanguíneos em um embrião intacto do tipo selvagem podem ser visualizados mediante a injeção simples de um corante fluorescente.
Inicie utilizando um microcarregador para encher uma micropipeta de vidro cônica com aproximadamente cinco microlitros de solução clara de LDL diI acetilada, tomando cuidado para que nenhuma partícula precipitada seja carregada. Sob um microscópio estereoscópico, use um par fino de pinças número 55 para cortar a ponta da pipeta, ajustando assim o volume do complexo carregado, e configure o sistema de injeção controlado por pressão para ejetar aproximadamente cinco nanolitros de solução por injeção. Em seguida, submerja a ponta da pipeta em MS-222 a 0,04% em solução salina de Barth modificada 0,1X ou MBS, em um molde de Sylgard personalizado.
Em seguida, transfira o embrião de Xenopus tropicalis para o molde de Sylgard e confirme a sedação completa pela ausência de resposta à estimulação da nadadeira dorsal. Sob o microscópio estereoscópico, posicione o embrião com a face ventral voltada para cima na reentrância em forma de V do molde, em posição ligeiramente oblíqua. Ajuste firmemente dois pinos minutianos de 0,1 milímetro em um suporte para pinos e use um deles para perfurar a pele sobre o coração, que deve estar visivelmente pulsando.
Insira o pino através do orifício no espaço entre o coração e a pele sem perfurar o coração e posicione a ponta inserida na região onde será feita a incisão. Em seguida, esfregue o segundo pino contra o pino inserido para fazer uma incisão linear e use ambos os pinos juntos para alargar suavemente a incisão, expondo o coração. Para injetar a solução de LDL acetilado DiI, insira a ponta da pipeta de vidro no coração e injete de 50 a 60 nanolitros do LDL acetilado DiI em aproximadamente 10 pulsos de ejeção.
Quando toda a solução de corante tiver sido administrada, confirme que o coração ainda está batendo e transfira o embrião para um novo recipiente de Petri contendo MBS 0,1X. Após cinco a 10 minutos, o girino deverá se recuperar da anestesia e começar a se mover. Após um número apropriado de embriões ter sido injetado, examine visualmente os embriões anestesiados corretamente identificados em um microscópio de fluorescência, descartando qualquer animal que apresente outros órgãos marcados.
Embriões que foram insuficientemente marcados podem ser injetados novamente. Em seguida, capture imagens dos embriões corretamente marcados. Para uma visualização mais detalhada dos vasos sanguíneos, fixe os embriões reanestesiados em paraformaldeído 4% por uma hora à temperatura ambiente, protegidos da luz, para visualização por microscopia confocal.
Se uma quantidade suficiente de LDL acetilado diI for injetada no coração, a veia cardinais posterior, ou PCV, deve ficar imediatamente visível sob um microscópio de fluorescência. As veias interssomíticas, ou ISV, emergem dorsalmente da PCV em uma onda de anterior para posterior, começando no estágio 36 e terminando por volta dos estágios 40 a 41, tornando-se levemente ramificadas por volta do estágio 43. A PCV e as ISV crescem em um padrão angiogênico estereotipado que está sob rígido controle do desenvolvimento.
Curiosamente, o silenciamento do sinal TIE-2 por morfolinos antissenso reduz o comprimento e a complexidade das ISV, enquanto a expressão da forma constitutivamente ativa de TIE-2 induz ramificação excessiva das ISV. Um Índice de Complexidade de Veias pode ser calculado para avaliar a complexidade das ISV e caminhos renderizados podem ser gerados para visualizar a arquitetura geral do sistema vascular de embriões de Xenopus tropicalis. O protocolo original foi descrito para o uso de Xenopus laevis por Levin e Colics, e nós o adaptamos para Xenopus tropicalis.
Uma vez dominada, esta técnica pode ser concluída em uma hora se for realizada corretamente. Antes deste procedimento, podem ser realizadas manipulações genéticas e farmacológicas para responder perguntas adicionais, como quais genes e vias de sinalização regulam o desenvolvimento vascular. Utilizando este procedimento, a vasculatura marcada pode ser visualizada em um animal intacto em tempo real, fornecendo uma ferramenta poderosa para investigar a dinâmica do desenvolvimento vascular.
Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como injetar LDL aceticolado diI no coração de uma girina de Xenopus tropicalis para visualizar sua vasculatura.
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Este protocolo demonstra um método baseado em fluorescência para visualizar a vasculatura e quantificar sua complexidade em Xenopus tropicalis. A técnica permite a obtenção de imagens dos vasos sanguíneos logo após a injeção de um corante fluorescente no coração do embrião, facilitando estudos sobre o desenvolvimento cardiovascular in vivo.
Este método permite a visualização direta e a quantificação da complexidade vascular em um modelo vertebrado, apoiando a validação precoce de alvos em vias de angiogênese. Ao fornecer leituras quantitativas da brotação e ramificação dos vasos, ele facilita a redução de riscos mecanicistas de alvos vasculares antes do compromisso com campanhas de identificação de compostos líderes. O sistema Xenopus tropicalis oferece uma plataforma relevante para doenças na avaliação de fenótipos angiogênicos, com confiança preditiva em pesquisas cardiovasculares pré-clínicas.
O método se insere no continuum de descoberta, desde a verificação da hipótese do alvo até a identificação de compostos promissores, fornecendo dados de fenótipo vascular que orientam decisões de prosseguir ou interromper programas focados em angiogênese.