Name: Isolamento de Fima rápida e específica de oligodendrócitos primário de Mouse (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-21T14:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 32 s
Description: Aprenda o isolamento imunomagnético de oligodendrócitos primários de camundongos neonatos para estudos de mielina. Este método rápido alcança mais de 80% de pureza em aproximadamente uma hora.

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Este estudo foi suportado por doações da sociedade nacional de esclerose múltipla (RG4591A1/2) e o National Institutes of Health (R03NS06740402). Os autores agradecer Dr. Ivan Hernandez e os seus membros de laboratório para fornecer conselhos, equipamentos e espaço de laboratório.

Os ratos utilizados neste estudo foram tratados de acordo com as diretrizes do número de protocolo de SUNY Downstate Medical Center divisão de laboratório Animal recursos (DLAR) 15-10492.
Nota: Oligodendrócitos primários foram isolados de neonatal (P5-P7 selvagem-tipo C57Bl/6N) ratos. Nesta fase, o imaturos OLs constituem mais de 80% da matéria branca roedor, garantindo alto rendimento celular. Todo buffer e composições de reagente estão disponíveis no final da Tabela de materiais.
1. preparação lamelas
Nota: Poli-D-lisina (PDL) / lamelas laminina revestida devem ser preparadas antes do isolamento de OL.
<ol><li>Lugar #1 alemão lamelas de vidro em um tubo cónico de 50 mL e adicionar 35 mL de 70% EtOH para limpá-los.</li>
	<li>Fechar o tubo, coloque-o em um misturador de oscilador e incubar a temperatura ambiente pelo menos 30 min enquanto balançando suavemente. As lamelas podem ser incubadas durante a noite.</li>
	<li>Descarte o EtOH 70%.</li>
	<li>Lave as lamelas 3 vezes com água desionizada, remover a água com vácuo aspiração sempre.</li>
	<li>Adicione 30-35 mL de PDL 50 µ g/mL para as lamelas do tubo de 50 mL, suficiente para cobrir as lamelas.</li>
	<li>Coloque o tubo de 50 mL contendo as lamelas em um misturador de oscilador e incubar a temperatura ambiente pelo menos 30 min enquanto balançando suavemente.</li>
	<li>Lave as lamelas 3 vezes com água desionizada, removendo a água cada vez com vácuo aspiração.</li>
	<li>Transferi as lamelas em 60mm placas de Petri contendo água desionizada.</li>
	<li>Use uma ponta de pipeta P200 para organizar as lamelas como uma camada cobrindo toda a superfície da caixa de Petri.</li>
	<li>Cuidadosamente, remova os pratos com vácuo aspiração da água.</li>
	<li>Remova o excesso de água em torno de lamelas e deixe-os secar durante a noite, com a tampa aberta e sob a luz do bairro UV. Nota: As lamelas de vidro revestido de PDL podem ser armazenadas a 4 ° C em placas de Petri estéreis por até três meses.</li>
	<li>Lugar de lamelas em placas de 24-bem, uma por bem, usando a pinça fina.</li>
	<li>Mova as lamelas para o centro do bem fazer com que as bordas não tocar a parede do poço.</li>
	<li>Adicione 100 µ l de 10 µ g/mL laminina diluído em B27NBMA (ver a Tabela de materiais) começando no centro de cada lamela e movendo-se em uma forma circular para as bordas para cobrir toda a área. Nota: Desde laminina está envolvida na manutenção OL e promove a diferenciação em OLs maduros, é um importante fator de sobrevivência de OL para em vitro cultura41,42,,43,.44.</li>
	<li>Incube a placa em uma incubadora de 37 ° C em 5% de CO2 pelo menos 1 h ou até as OLs estão prontos para o chapeamento.</li>
</ol>2. Mouse dissociação de córtex cerebral
<ol><li>Sacrifique pós-natal filhotes de rato C57Bl/6N velhos 5-7 dias por decapitação rápida com uma tesoura previamente limpada em etanol a 70%. Nota: córtices Cerebral de 5-6 filhotes de ratos neonatal foram utilizados para cada preparação. Em média, um cérebro de rato rende 1-1.5 x 106 OLs.</li>
	<li>Cortar a pele do couro cabeludo ao longo da linha mediana com tesouras pequenas de dissecação e retrair para expor a caveira.</li>
	<li>Corte o crânio cuidadosamente ao longo da linha mediana a partir da abertura na parte de trás do crânio em direção a área frontal, levantando-a com a tesoura para não danificar o cérebro. Em seguida, usando a abertura na parte de trás do crânio corte para cada soquete do olho ao longo da base do crânio.</li>
	<li>Use a pinça fina suavemente arreliar os córtices longe do mesencéfalo e transferi-los para um prato de cultura de tecidos de 60mm contendo 7 mL de B27NBMA. Repita as etapas 2.2 através de 2.4 para cada cérebro, reunindo os córtices dissecados.</li>
	<li>Transferir os córtices para um prato de cultura de tecidos de 60mm novo contendo 5 mL de tampão de dissociação (B27NBMA, 20-30 U/mL papaína e 2.500 U DNase eu).</li>
	<li>Os córtices com dados em pedaços pequenos, de cerca de 1 mm3 usando uma lâmina de bisturi 15 # e incubar durante 20 min em um 37 ° C, 5% CO2 incubadora.</li>
	<li>Adicione 1 mL de soro de crescimento bovino (BGS) para parar a reação enzimática.</li>
	<li>Transferi os córtices juntamente com os meios de comunicação de dissociação para um tubo cônico de 15 mL, usando uma pipeta sorológica 10ml.</li>
	<li>Delicadamente começa a dissociar o tecido cerebral pipetando lentamente acima e para baixo, 6 - 8 vezes usando uma pipeta de 10 mL serológica, usando cuidado para minimizar as bolhas.</li>
	<li>Permitir que os pedaços de tecido de contentar com 2-3 min e transferir o sobrenadante para um tubo de fresco.</li>
	<li>Adicionar 3 mL de B27NBMA contendo 10% BGS/2500 U DNase eu no tecido da pelota.</li>
	<li>Usar uma pipeta sorológica 5ml para dissociar suavemente o tecido cerebral durante a pipetagem para cima e para baixo 6 - 8 vezes. Tenha cuidado para minimizar as bolhas.</li>
	<li>Permitir que os pedaços de tecido de contentar com 2-3 min.</li>
	<li>Transferi o sobrenadante para um tubo de fresco. Adicionar 3 mL de B27NBMA contendo 10% BGS/DNase eu no tecido da pelota.</li>
	<li>Delicadamente, dissociar o tecido cerebral usando a ponta da pipeta P1000, enquanto pipetagem o mix de mídia e tecido do cérebro acima e para baixo. Repita as etapas 2.13 e 2.14 até permanecem sem grandes pedaços de tecido ou até B27NBMA contendo 10% BGS/DNase, está esgotado, o que vier primeiro. Tenha cuidado para minimizar as bolhas.</li>
	<li>Suspensão de células de piscina com sobrenadantes anteriores.</li>
	<li>Coloque o filtro de célula de 70 µm em um tubo de 50 mL. Usando uma pipeta de 10 mL serológica, passe a suspensão de eritrócitos em pool suavemente sobre o filtro de célula de 70 µm.</li>
	<li>Lavar o filtro célula adicionando 1 mL de B27NBMA contendo 10% BGS/DNase eu.</li>
	<li>Descarte o filtro da célula. Trazer o volume de 30 mL com B27NBMA contendo 10% BGS/DNase eu.</li>
	<li>Transferi a suspensão de eritrócitos para dois tubos cônicos de 15 mL. Centrifugar a suspensão de eritrócitos durante 10 minutos a 200 g de x.</li>
	<li>Remova o sobrenadante sem deixar as células expostas ao ar. O sobrenadante será nublado devido a detritos celulares. Adicionar 3 mL de B27NBMA contendo 10% BGS para a pelota.</li>
	<li>Cuidadosamente se dissociam o centrifugado usando uma pipeta P1000. Trazer o volume para 15 mL com B27NBMA contendo 10% BGS.</li>
	<li>Passe um coador de célula fresco 40 µm, a suspensão de eritrócitos.</li>
	<li>Lavar o filtro célula adicionando 1mL de B27NBMA contendo 10% BGS. Descarte o filtro da célula.</li>
	<li>Trazer o volume de 30 mL com B27NBMA contendo 10% BGS.</li>
	<li>Transferi a suspensão de eritrócitos para tubos cônicos de 2 x 15 mL. Centrifugar a suspensão de eritrócitos durante 10 minutos a 200 g de x.</li>
	<li>Remova a maioria do líquido sobrenadante sem deixar as células expostas ao ar. Resuspenda as pelotas de célula em 5 mL de célula de magnético frio gelo, classificando o tampão (MCS).</li>
</ol>3. a determinação da contagem de células e viabilidade
<ol><li>Dilua 100 µ l de suspensão de células com 400 µ l de solução de azul de Tripan em um tubo de 1,5 mL microcentrifuga para obter uma diluição de 1:5 em 0,4% (p/v).</li>
	<li>Centralize um vidro de tampa sobre uma câmara de hemocytometer e preencher as duas câmaras com 10 µ l da diluição celular usando uma pipeta de P10 e evitando encher em demasia. A solução passará sob o tampa de vidro por ação capilar.</li>
	<li>Coloque o hemocytometer na fase de microscópio e ajustar o foco usando 40 ampliação de X. Nota: A contagem de células é registradas usando um contador à mão em cada um dos cinco quadrados (quatro cantos e um centro). Apenas as células não-viáveis absorvem o corante e aparecem em azuis, enquanto vivo e células saudáveis aparecem redondos e refração e não absorvem o corante de cor azul, permitindo a determinação do número de células viáveis e totais por mililitro.</li>
</ol>4. isolamento de O4+ oligodendrócitos
<ol><li>Centrifugar a suspensão de célula 200 x g durante 10 minutos.</li>
	<li>Cuidadosamente, desprezar o sobrenadante usando vácuo aspiração, evitando a exposição das células ao ar.</li>
	<li>Resuspenda o pellet em 90 µ l de tampão MCS por 1 x 107 células total seguido pela adição de 10 µ l de anti-O4 grânulos por 1 x 107 células.</li>
	<li>Misture a suspensão de células e grânulos suavemente, passando rapidamente o tubo cônico de 15 mL, com o dedo 4 - 5 vezes.</li>
	<li>Incubar a mistura por 15 min a 4 ° C, passando rapidamente o tubo cônico de 15 mL, com o dedo 4-5 timesevery 5 min.</li>
	<li>Lave a mistura delicadamente adicionando 2 mL de tampão MCS por 1 x 107 células ao tubo. Centrifugue a mistura em 200 x g durante 10 minutos.</li>
	<li>Desprezar o sobrenadante, cuidadosamente usando vácuo aspiração, evitando a exposição das células ao ar. Ressuspender as células em 500 µ l de tampão MCS para cada 1 x 107 células.</li>
	<li>Anexe um separador magnético para um stand de separador magnético. Anexar uma coluna de seleção para o separador magnético e coloque um coador de célula de 40 µm em cima da coluna. Coloque dois 15 mL ou um tubo cónico de 50 mL abaixo da coluna de separação para coletar o fluxo através de.</li>
	<li>Pré-enxágue a coluna 40 µm de filtro e separação de célula com 3 mL de tampão MCS e deixe o buffer através da coluna sem deixá-lo secar.</li>
	<li>Adicione a mistura de suspensão de células e grânulos para o filtro de célula e na coluna de seleção.</li>
	<li>Lave o filtro de célula 40 µm com 1 mL de tampão MCS.</li>
	<li>Descartar o filtro célula e deixe a mistura de células, grânulos e buffer de correr através da coluna sem deixá-lo secar.</li>
	<li>Lave a coluna de separação 3 vezes com 3 mL de tampão MCS e 1 vez com mídia de proliferação de OL.</li>
	<li>Remover a coluna de separação do separador magnético, rapidamente, coloque-o em um tubo cônico de 15 mL e imediatamente adicionar 5 mL de mídia de proliferação de OL.</li>
	<li>Coloque um êmbolo na parte superior da coluna e firme impulso para expulsar as pilhas etiquetadas no tubo cônico de 15 mL.</li>
	<li>Remova 100 µ l de suspensão de células para determinar a contagem de células e viabilidade usando Trypan azul e hemocytometer, conforme indicado no ponto 3. Nota: Viabilidade celular acima de 80% é considerada aceitável para prosseguir com a cultura de OLs, mas viabilidade maior que 90% é o ideal.</li>
</ol>5. chapeamento de O4 isolado+ oligodendrócitos
<ol><li>Diluir a suspensão de células para o desejo do chapeamento a densidade (5 x 105 células por lamela) usando a mídia de proliferação de OL. Nota: OL densidade de semeadura é muito importante, então a densidade de célula apropriada deve ser confirmada usando um microscópio de cultura do tecido antes de prosseguir. Semeando a densidade abaixo de 10.000 células/lamelas pode levar a sobrevivência da pilha pobre. No chapeamento de densidade de 10.000 a 25.000, OL diferenciação morfológica é lenta45. Nós da placa OLs em uma densidade de semeadura de no mínimo 50.000 células/lamelas para garantir a sobrevivência da pilha.</li>
	<li>Mova as placas de 24 poços contendo lamelas revestidas com laminina da incubadora para o bairro de cultura de tecidos.</li>
	<li>Remova cada lamela laminina e substituí-lo com 100 µ l de suspensão OL.</li>
	<li>Incube OLs em 37 °C/5% CO2 incubadora para um máximo de 45 min para promover a adesão OL para as lamelas.</li>
	<li>Após a incubação, remova as placas de 24 poços da incubadora. Inundar-nos bem da placa de 24 poços com 500 µ l de mídia de proliferação de OL.</li>
	<li>Coloque os OLs em 37 °C/5% CO2 incubadora para adicional 24h.</li>
	<li>24 h após o chapeamento de OLs, remova a mídia de proliferação e substituir com mídia de diferenciação OL para induzir a diferenciação.</li>
	<li>Coloque os OLs volta na incubadora e não remova até que as células estão prontas para fixação. Nota: Mudanças no pH são prejudicial para OLs e diminuir a viabilidade celular, portanto a remoção desnecessária de OLs culturas da incubadora deve ser evitada.</li>
</ol>6. mancha da imunofluorescência
<ol><li>Para a detecção de células marcadores de superfície (NG2, O1 e O4) Remova a mídia dos poços.</li>
	<li>Adicionar 250 µ l de sobrenadantes de hibridoma rato contendo anticorpos primários O1 (sem diluir)13 e O4 (sem diluir)13 e policlonais contra NG2 de coelho (1:150 diluído em B27NBMA). Nota: Se os anticorpos anti-O1 e anti-O4 comercialmente disponíveis devem ser utilizados, é aconselhável utilizar diluições sugeridas pelo fabricante.</li>
	<li>Incube as celulas com anticorpo primário por 45 min máximo numa incubadora 37 °C/5% CO2 .</li>
	<li>Lave duas vezes com 0,05% Tween-20/1 X PBS. Consertar as células com paraformaldeído 4% (4% PFA) por 10 min à temperatura ambiente.</li>
	<li>Lavar três vezes por 5 min cada com 0,05% Tween-20/1 X PBS.</li>
	<li>Dilua anti-rato cabra Alexa 488-conjugado IgM ou anti-coelho IgG anticorpo secundário (1: 400) em B27NBMA.</li>
	<li>Remova a 0,05% Tween-20/1 X PBS as lamelas. Incube as celulas com anticorpo secundário por 1h à temperatura ambiente no escuro.</li>
	<li>Lavar três vezes por 5 min cada com 0,05% Tween-20/1 X PBS.</li>
	<li>Para a dupla coloração para a detecção de marcadores internos (GFAP), remova as células 0,05% de Tween-20/1 X PBS e bloco/permeabilize com buffer de bloco/permeabilização durante 15 minutos à temperatura ambiente. Caso contrário, prossiga para a etapa 6.17.</li>
	<li>Retire o tampão do bloco/permeabilizacao e adicionar 250 µ l frango anti-GFAP (1: 100) diluído em tampão de bloco/permeabilização.</li>
	<li>Incube as celulas com anti-GFAP por 1h à temperatura ambiente. Lavar três vezes por 5 min cada com 0,05% Tween-20/1 X PBS.</li>
	<li>Dilua a cabra Alexa 594-conjugados anti-frango IgG anticorpo secundário (1: 400) em B27NBMA.</li>
	<li>Remova a 0,05% Tween-20/1 X PBS as lamelas. Incube as celulas com anticorpo secundário por 1h à temperatura ambiente no escuro.</li>
	<li>Lavar três vezes por 5 min cada com 0,05% Tween-20/1 X PBS.</li>
	<li>Counterstain com 4' 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) e montar as células com media mídia contendo DAPI de montagem.</li>
	<li>Deixe as lamelas curar durante a noite, no escuro à temperatura ambiente.</li>
	<li>Imagem das células coradas com um microscópio de epifluorescência. Nota: No presente protocolo, as células foram fotografadas na ampliação de X 40 usando um tempo de exposição uniforme.</li>
</ol>

Os autores têm sem divulgações.

Nesta comunicação, apresentamos um método para a isolação eficiente das culturas do oligodendrocyte altamente purificada rato imaturo. Comparado com protocolos previamente publicados39,40, esse método resultou em uma maior pureza com um nível muito inferior de astrócitos GFAP positivo e uma percentagem muito baixa de outras células não-caracterizada. É importante salientar que estas são imaturos OLs já se comprometeu a linhagem oligodendroglial. Assim, estas célu...

Oligodendrócitos (OLs) são células do sistema nervoso central (SNC)1microambiental. O isolamento e a cultura de oligodendrócitos primários em um ambiente fortemente regulamentado é uma ferramenta valiosa para o estudo em vitro de desenvolvimento de oligodendróglias, bem como a biologia do desmielinizantes doenças como a esclerose múltipla2 . Isso requer um eficiente e robusto oligodendrocyte isolamento e cultura método3. Neste estudo, aproveitamos a expressão de um marcador de superfície de célula oligodendrocyte distintivo para implementar uma técnica de isolamento modificado que é rápida e específica.
Identificaram-se quatro fases distintas de maturação oligodendrocyte, cada um caracterizado pela expressão de marcadores de superfície celular distinto para cada estágio do desenvolvimento (Figura 1). Estes marcadores de superfície celular podem ser reconhecidos por anticorpos específicos4,5e podem ser usados para isolar OLs em estágios específicos. Na primeira fase, as células precursoras de oligodendrocyte (OPCs) têm a capacidade de proliferar, migrar e especificamente expresso de fator de crescimento derivado de plaquetas do receptor (PDGF-Rα)6, gangliosídeos A2B5 proteoglycan NG27,8 , polysialic ácido-neural celular adesão molécula9 e graxos-ácido-proteína obrigatória 7 (FABP7)10. OPCs têm morfologia bipolar com alguns processos curtos emanando os polos opostos do corpo celular, que é característica de células precursoras neurais11.
<img alt="Diagrama de maturação de oligodendrócitos; estágios com marcadores: OPC, Pré-oligodendrócito, Imaturo, Maduro." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57543/57543fig1v2.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Diagrama de maturação de oligodendrócitos; estágios com marcadores: OPC, Pré-oligodendrócito, Imaturo, Maduro."> Figura 1: expressão de marcadores de superfície celular durante o desenvolvimento do oligodendrocyte rato. OLs célula marcadores de superfície tais como A2B5 GalC (O1), NG2, O4 e PDGF-Rα podem ser usado para isolar especificamente oligodendrócitos no estágio de desenvolvimento específico usando anticorpos específicos.   <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57543/57543fig1v2large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
Na segunda etapa, OPCs dão origem a preoligodendrocytes em expresso na membrana da célula não apenas marcadores OPC, mas também o sulfatide (um galactolipid sulfatado) reconhecido pelo anticorpo O412,13e a proteína GPR1714, que persiste até o estágio imaturo oligodendrocyte (OL). Nesta fase, preoligodendrocytes estender processos curtos multipolares. Preoligodendrocytes são o grande palco OL em dia pós-Natal 2 (P2) na substância branca cerebral, do rato e do rato com uma pequena população de imaturos OLs15.
Durante a terceira fase, OLs imaturos continuam a expressar O4, perder a expressão de marcadores A2B5 e NG2 e expressar galactocerebroside C16. Nesta fase, OLs estão empenhados a linhagem oligodendroglial e tornar-se células pós mitóticas com ramos muito ramificado17,18. OL imaturo constituem mais de 80% da matéria branca roedor no P7... e neste momento as primeiras células MBP+ são observadas15,19,20,21. Portanto, o isolamento de OLs no P7 poderia garantir celulares de alto rendimento.
Na quarta e última fase de desenvolvimento de OL, maduros OLs expressam microambiental proteínas (proteína básica da mielina (MBP), proteína proteolipid (PLP), glicoproteína mielina associada (MAG) e mielina oligodendrocyte glicoproteína (MOG)22,23 ,24,25,26. Nesta fase, maduros OLs estendem as membranas que compacta de forma enwrapping bainhas em torno dos axônios e são capazes de myelinate. Isso coincide com a observação de que, no cérebro do rato e do rato, MBP+ células tornam-se cada vez mais abundantes em P1419,20,21.
Desde o primeiro isolamento do oligodendrocyte por Fewster e colegas em 196727, foram implementados diversos métodos para isolamento de OLs o roedor CNS incluindo immunopanning28,29,30, fluorescência-ativado da pilha de classificação (FACS) explorando a célula antígenos de superfície específicos28,31, centrifugação gradiente diferencial32,33,34,35 e agitação método baseado na aderência diferencial de diferentes CNS glia36,37. No entanto, os métodos de cultura existentes têm limitações, particularmente em termos de pureza, rendimento e tempo necessário para executar os procedimentos de38. Portanto, mais eficientes métodos de isolamento de oligodendrócitos são necessários.
Neste trabalho, apresentamos um simples e método de seleção eficiente para o isolamento de Fima da fase três O4+ preoligodendrocytes as células de filhotes de ratos neonatal. Este método é uma modificação das técnicas relatado por Emery et al 39 e Dincman et al . 40 e fornece uma pureza de preparação do oligodendrocyte acima de 80% em cerca de 4 h.

<table><tbody><tr><td>Pipetas sorológicas de 10ml</td><td>Seringa</td> de 10ml Fisher Scientific <td>13-676-10J</td><td></td></tr><tr><td>Ponta Luer-Loc</td><td>BD, Becton Dickinson</td><td>309604</td><td></td></tr><tr><td>Tubos cônicos de 15ml</td><td>Falcon</td><td>352097</td><td></td></tr><tr><td>placas de cultura de tecidos de 24 poços</td><td>Falcon</td><td>353935</td><td></td></tr><tr><td>40&micro; filtro de células m</td><td>Fisher Scientific</td><td>22368547</td><td></td></tr><tr><td>tubos cônicos de 50ml</td><td>Falcon</td><td>352098</td><td></td></tr><tr><td>pipetas sorológicas de 5ml</td> Placas de cultura de tecidos <td>Fisher Scientific</td><td>13-676-10H</td><td></td></tr><tr><td>60mm</td><td>Falcon</td><td>353002</td><td></td></tr><tr><td>70&micro; filtro de células m</td><td>Fisher Scientific</td><td>22363548</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 anticorpo secundário IgG (H+L) de cabra anti-camundongo</td><td>Invitrogen</td><td>A11001</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 anticorpo secundário IgM (H+L) de cabra anti-coelho</td><td>Invitrogen</td><td>A21042</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 anticorpo secundário IgM (H+L) de cabra anti-coelho</td><td>Invitrogen</td><td>A11008</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 594 anti-frango IgG (H+L) anticorpo secundário</td><td>de cabra Invitrogen</td><td>A11042</td><td></td></tr><tr><td>Anti-O4 beads- Anti-O4MicroBeads</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-094-543</td><td></td></tr><tr><td>Apo-Transferrin humano</td><td>Sigma</td><td>T1147</td><td></td></tr><tr><td>Autofil conjunto completo de filtro superior de garrafa, filtro de 0.22um, 250ml</td><td>USA Scientific</td><td>6032-1101</td><td></td></tr><tr><td>Autofil filtro completo de topo de garrafa montagem, filtro de 0.22um, 250ml</td><td>Suplemento B27 da USA Scientific</td><td>6032-1102</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Invitrogen</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>Ácido bórico</td><td>Sigma</td><td>B7660</td><td></td></tr><tr><td>Soro de Crescimento Bovino (BGS)</td><td>GE Healthcare Life Sciences</td><td>SH30541.03</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP-1600-100</td><td></td></tr><tr><td>CNTF</td><td>Peprotech</td><td>450-50</td><td></td></tr><tr><td>d-Biotina</td><td>Sigma</td><td>B4639</td><td></td></tr><tr><td>Desoxirribonuclease I (DNAse I)</td> <td>Worthington</td><td>LS002007</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td> Microscópio de epifluorescência <td>Fisher Scientific</td><td>S311</td><td></td></tr><tr><td>com câmera Olympus DP70</td><td>Olympus</td><td>Bx51</td><td></td></tr><tr><td>Bisturis descartáveis de penas</td><td>Andwin Scientific</td><td>EF7281C</td><td></td></tr><tr><td>Forskolin</td><td>Sigma</td><td>F6886</td><td></td></tr><tr><td>lamínulas de vidro alemãs, espessura #1, diâmetro de 12mm redondo</td><td>Anticorpo GFAP NeuVitro</td><td>GG-12-oz</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Aves</td><td>GFAP</td><td></td></tr><tr><td>Glicose</td><td>Fisher Scientific</td><td>D16-1</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX</td><td>Invitrogen</td><td>35050-61</td><td></td></tr><tr><td>Insulina</td><td>Invitrogen</td><td>12585-014</td><td></td></tr><tr><td>Suporte separador magnético - MACS multistand</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-303</td><td></td></tr><tr><td>Separador magnético-MiniMACS separador</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-302</td><td></td></tr><tr><td>Millex PES 0.22&micro; m unidade de filtro</td><td>Millipore</td><td>SLG033RS</td><td></td></tr><tr><td>Mídia de montagem- Prolongue o ouro com DAPI</td><td>Thermo Fisher</td><td>P36930</td><td></td></tr><tr><td>N-acetil-cisteína (NAC)</td><td>Sigma</td><td>A8199</td><td></td></tr><tr><td>Natural mouse laminin</td><td>Invitrogen</td><td>23017-015</td><td></td></tr><tr><td>Neurobasal Medium A</td><td>Invitrogen</td><td>10888-022</td><td></td></tr><tr><td>Neurotrophin-3 (NT-3)</td><td>Peprotech</td><td>450-03</td><td></td></tr><tr><td>NG2 anticorpo</td><td>Millipore</td><td>AB5320</td><td></td></tr><tr><td>Papaína</td><td>Worthington</td><td>LS003126</td><td></td></tr><tr><td>PBS sem Ca2+ e Mg2+</td><td>Sigma</td><td>D5652</td><td></td></tr><tr><td>PDGF</td><td>Peprotech</td><td>100-13A</td><td></td></tr><tr><td>Placas de Petri</td><td>Falcon</td><td>351029</td><td></td></tr><tr><td>Poly-D-Lysine</td><td>Sigma</td><td>P6407</td><td></td></tr><tr><td>Primocin</td><td>Invivogen</td><td>ant-pm-2</td><td></td></tr><tr><td>Progesterona</td><td>Sigma</td><td>P8783</td><td></td></tr><tr><td>Putrescine</td><td>Sigma</td><td>P5780</td><td></td></tr><tr><td>Coluna de seleção-colunas LS</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-401</td><td></td></tr><tr><td>Selenito de sódio</td><td>Sigma</td><td>S5261</td><td></td></tr><tr><td>Oligoelementos B</td><td>Corning</td><td>25-000-CI</td><td></td></tr><tr><td>Triiodotironina (T3)</td> <td>Sigma</td><td>T6397</td><td></td></tr><tr><td>Triton-X</td><td>Sigma</td><td>T8787</td><td></td></tr><tr><td>Solução Azul de Tripano</td><td>Corning</td><td>25-900-CI</td><td></td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma</td><td>P1379</td><td></td></tr><tr><td>B27NBMA</td><td></td><td></td><td>487,75 mL Meio Neurobasal A; 10 mL de suplemento de B27; 1 mL de Primocin; 1,25 mL de Glutamax; Filtre, esterilize e armazene a 4 graus; C até o uso.</td></tr><tr><td>B27NBMA + 10% BGS</td><td>27 mL B27NBMA; 3 mL Estoque de solução de CNTF de soro</td><td></td><td></td> de crescimento bovino</tr><tr><td>(10 &micro; g/ml; 1000X)</td><td></td><td></td><td>Encomenda da Peprotech (450-50). Perfazer a dose de 0,1 a 1 mg/ml, de acordo com o fabricante» s (pode variar de lote para lote) em buffer (por exemplo, DPBS + 0.2% BSA). Armazenar a -80 &deg;C. Solução de trabalho (10 &micro; g/ml, 1000X) 1. Faça 0,2% de BSA (Fisher scientific BP-1600-100) em solução de DPBS e esterilize por filtro. 2. Aliquota de estoque mestre diluída para 10&micro; g/ml em BSA/DPBS. estéril, refrigerado a 0,2% 3. Alíquota (20&micro; l/tubo) e congelamento instantâneo em nitrogênio líquido. 4. Armazene alíquotas a -80 ° C.</td></tr><tr><td>d-Biotina solução estoque (50 &micro; g/ml; 5000X)</td><td></td><td></td><td>Ressuspenda a d-biotina (Sigma-B4639) em H2O bidestilado a 50 &micro; g/ml (por exemplo, 2,5 mg em 50 ml de ddH2O). A ressuspensão pode levar uma boa quantidade de agitação / vórtice ou um leve aquecimento brevemente a 37 ° C. Se a d-biotina ainda não for solubilizar, não há problema em fazer um menos concentrado (por exemplo, 10&micro; g/ml) e adicionar um volume maior ao B27NBMA (1/1000), em vez de 1/5000). Armazene a 4 graus C.</td></tr><tr><td>Solução de estoque</td><td></td><td></td> DNase I <td>1. Dissolver a 12.500 U de desoxirribonuclease I/ml em HBSS resfriado em gelo. 2. Esterilizar por filtro em ice 3. Alíquota em 200 &micro; l e congelar durante a noite a -20&<C.br/> 4. Armazene alíquotas de -20 a -30 graus.</td></tr><tr><td>Dulbecco' s Solução salina tamponada com fosfato (sem Ca2+ e Mg2+)</td><td></td><td></td><td>Dissolva a bolsa em 1 litro de água para produzir 1 litro de meio a 9,6 gramas de pó por litro de meio. Armazene a 2-8 ° C.</td></tr><tr><td>Solução estoque de forscolina (4,2 mg / ml; 1000X)</td><td></td><td></td><td>Adicione 1 ml de DMSO estéril a 50 mg de forscolina no frasco (Sigma-F6886) e pipete até ressuspendê-lo. Transferir para um tubo de centrifugação de 15 ml e adicionar 11 ml de DMSO estéril para perfazer 4,2 mg/ml. Alíquota (por exemplo, 20 &micro; l) e armazene a -20 graus C.</td></tr><tr><td>Hank' s sais balanceados (HBSS) (Sigma</td><td></td><td></td><td>1. Meça 900 ml de água (temperatura 15-20 &deg; C) em um cilindro e mexa delicadamente. 2. Adicione a potência e mexa até dissolver. 3. Enxágue a embalagem original com uma pequena quantidade de água para remover todos os vestígios do pó. 4. Adicione à solução na etapa 2. 5. Adicionar 0,35 gr de bicarbonato de sódio (7,5% p/v) para cada litro de volume final. 6. Continue mexendo até dissolver. 7. Ajuste o pH do tampão enquanto agita para 0,1-0,3 unidades abaixo do pH = 7,4, pois pode aumentar durante a filtração. Recomenda-se o uso de HCl 1N ou NaOH 1N para ajustar o pH. 8. Adicione mais água para trazer o volume final para 1L. 9. Esterilizar por filtração usando uma membrana com porosidade de 0,22 mícrons. 10. Armazene a 2-8 ° C.</td></tr><tr><td>Insulina estoque (4000 &micro; g/ml)</td><td></td><td></td><td>Descongele a garrafa e alíquota 25 &micro; l por tubo de microcentrífuga e armazenar a -20 ° C.</td></tr><tr>Solução <td></td><td></td><td>de laminina</td><td>Descongele lentamente a laminada no frio (2&deg; C a 8&deg; C) para evitar a formação de gel. Em seguida, alíquota em tubos de polipropileno. Armazene a 5&deg; C a -20 graus C em alíquotas (por exemplo, 20 &micro; l) e não congele/descongele repetidamente. A laminina pode ser armazenada nessas temperaturas por até seis meses.</td></tr><tr>Tampão <td></td><td></td> de <td>Classificação de Células Magnéticas (MCS)</td><td>Prepare a solução contendo solução salina tamponada com fosfato (PBS), pH 7,2 e 0,5% de albumina de soro bovino (BSA), 0,5 mM EDTA, 5&micro; g/ml de insulina, 1 g/L de glicose. Esterilize e desgaseifique filtrando o tampão passando-o por um 0,22 &micro; m Filtro Millex. Armazene o buffer a 4&deg; C até o uso</td></tr><tr><td>solução estoque de N-acetil-L-cisteína (NAC) (5mg/ml; 1000X)</td><td></td><td></td><td>Dissolver N-acetil-L-cisteína (Sigma-A8199) a 5 mg/ml em DMEM (por exemplo, 50 mg de NAC em 10 ml B27NBMA). Filtrar, esterilizar e alíquota (por exemplo, 20 &micro; l). Armazene a -20 graus C.</td></tr><tr><td>NT3 solução-mãe (1 &micro; g/ml; 1000X)</td><td></td><td></td><td>Estoque mestre: Pedido da Peprotech (450-03). Perfazer a dose de 0,1 a 1 mg/ml, consoante o fabricante» s instruções (pode variar de lote para lote), em buffer (por exemplo, DPBS + 0,2% BSA). Armazene a -80&C. Estoque de trabalho (1&micro; g/ml; 1000X): 1. Faça 0,2% de BSA em solução de DPBS e esterilize por filtro. 2. Dilua a alíquota do estoque mestre para 1 &micro; g/ml em BSA/DPBS. estéril, refrigerado a 0,2% 3. Alíquota (por exemplo, 20&micro; l/tubo) e congelamento instantâneo em nitrogênio líquido. 4. Armazene alíquotas a -80 graus C.</td></tr><tr><td>Solução estoque PDGF (10 &micro; g/ml; 1000X)</td><td></td><td></td><td>Estoque mestre: Pedido da Peprotech (100-13A). Perfazer a dose de 0,1 a 1 mg/ml, consoante o fabricante» s instruções (pode variar de lote para lote) em buffer (por exemplo, DPBS) + 0,2% BSA). Armazene a -80&C. Estoque de trabalho (1&micro; g/ml; 1000X): 1. Faça 0,2% de BSA em solução de DPBS e esterilize por filtro. 2. Dilua a alíquota do estoque mestre para 1&micro; g/ml em BSA/DPBS. estéril, refrigerado a 0,2% 3. Alíquota (por exemplo, 20&micro; l/tubo) e congelamento instantâneo em nitrogênio líquido. 4. Armazene alíquotas a -80 graus C.</td></tr><tr><td>Poli-D-lisina (1mg/ml; 100X)</td><td></td><td></td><td>Ressuspende poli-D-lisina, peso molecular 70-150 kD (Sigma P6407) a 0,5mg/ml em ácido bórico 0,15M pH 8,4 (por exemplo, 50mg em tampão borato de 50ml). Esterilização por filtro e alíquota (por exemplo, 100&micro; l/tubo). Armazene a -20 graus C. Antes de usar, dilua o estoque 100X (1 mg / ml) para 50 & micro; g/ml em água estéril.</td></tr><tr><td>Meios de</td><td></td><td></td> proliferação de oligodendrócitos<td>, consulte <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57543/57543_SupplementalTable.xlsx">Tabela suplementar 1</a></td></tr><tr><td>Meios</td><td></td><td></td> de diferenciação de oligodendrócitos, <td>consulte <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57543/57543_SupplementalTable.xlsx">Tabela suplementar 1</a></td></tr><tr><td>Suplemento Sato (100X)</td><td></td><td></td><td>ver <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57543/57543_SupplementalTable.xlsx">Tabela Suplementar 1</a></td></tr><tr><td>Referências: a lista de reagentes e receitas foi adotada a partir dos protocolos descritos anteriormente por Emery et. al. 2013 (Emery, B. & Dugas, J. C. Purificação de células de linhagem de oligodendrócitos de córtices de camundongos por imunopanning. Protoc Harb de Primavera Fria. 2013 (9), 854-868, doi:10.1101/pdb.prot073973, (2013)) e Dincman et. al. (Dincman, T. A., Beare, J. E., Ohri, S. S. & Whittemore, S. R. Isolamento de células precursoras de oligodendrócitos corticais de camundongos. J Métodos Neurosci. 209 (1), 219-226, doi:10.1016/j.jneumeth.2012.06.017, (2012))</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

isolamento de fima rápida e específica de oligodendrócitos primário de mouse

Rapid and Specific Immunomagnetic Isolation of Mouse Primary Oligodendrocytes

O isolamento eficiente e robusto e a cultura de oligodendrócitos primários (OLs) é uma ferramenta valiosa para o estudo em vitro de desenvolvimento de oligodendróglias, bem como a biologia do desmielinizantes doenças como a esclerose múltipla e Doença de Pelizaeus-Merzbacher-como (PMLD). Aqui, apresentamos um simples e método de seleção eficiente para o isolamento de Fima da fase três O4+ preoligodendrocytes as células de filhotes de ratos neonatal. Desde que o imaturo OL constituem mais de 80% da matéria branca de cérebro de roedor no 7º dia pós-natal (P7) este método de isolamento não só garante alto rendimento celular, mas também o isolamento específico de OLs já se comprometeu a linhagem oligodendroglial, diminuindo o possibilidade de isolar células contaminantes como astrócitos e outras células do cérebro do rato. Este método é uma modificação das técnicas relatado anteriormente e fornece a pureza de preparação oligodendrocyte acima de 80% em cerca de 4 h.

O objetivo deste estudo foi estabelecer um método de isolamento melhorada para O4+ oligodendrócitos mouse principal, exigindo a mínimo possível manipulação das células alvo. Todo o procedimento de eutanásia dos filhotes para chapeamento das células em lamelas leva cerca de 4 h e dados mostrados aqui representam três experimentos independentes. Após a dissociação do tecido, uma média de 4,3 ± 0,46 x 107 células foram isolados para cada experimento independente, com um...

Descrevemos o isolamento de Fima de oligodendrócitos mouse principal, que permite o isolamento das células para cultura em vitro rápido e específico.

Isolamento de Fima rápida e específica de oligodendrócitos primário de Mouse

The efficient and robust isolation and culture of primary oligodendrocytes (OLs) is a valuable tool for the in vitro study of the development of ...

O objetivo geral desta técnica é usar o isolamento imunomagnético para selecionar oligodendrócitos O4 positivos de filhotes de camundongos recém-nascidos para sua análise de cultura in vitro. Este método pode ajudar a responder a questões-chave no campo da ciência neural relacionadas ao estudo de doenças que afetam a mielina e a mielinização. A principal vantagem desta técnica é que ela facilita a preparação da cultura final de oligodendrócitos com pureza superior a 80% em cerca de horas-hora.Comece usando uma pequena tesoura de dissecação para cortar a pele ao longo da linha média do couro cabeludo de um camundongo do quinto ao sétimo dia pós-natal. Retraia a aba de pele para expor o crânio e corte-o cuidadosamente ao longo da linha média, desde a abertura nas costas até a área frontal. A partir da abertura na parte de trás do crânio, corte em direção a cada órbita ocular ao longo da base do osso e use uma pinça fina para afastar suavemente os córtices do mesencéfalo.Em seguida, transfira os córtices para uma placa de cultura de tecidos de 60 milímetros contendo sete mililitros de meio B-27 Neurobasal A. Quando todos os cérebros tiverem sido coletados, transfira os córtices para uma nova placa de cultura de tecidos de 60 milímetros contendo cinco mililitros de tampão de dissociação e use uma lâmina de bisturi número 15 para cortar os córtices em pedaços de um milímetro cúbico. Incube os pedaços de cérebro em uma incubadora de 37 graus Celsius 5% CO2 por 20 minutos.Em seguida, adicione um mililitro de Soro de Crescimento Bovino para interromper a reação enzimática. Usando uma pipeta sorológica de 10 mililitros, transfira a pasta de tecido para um tubo cônico de 15 mililitros e dissocie suavemente o tecido cerebral de seis a oito vezes com pipetagem. Deixe os pedaços de tecido dissociados assentarem por dois a três minutos.Em seguida, transfira o sobrenadante para um novo tubo. Em seguida, adicione três mililitros de meio Neurobasal A, suplementado com soro de crescimento bovino e DNase I aos tecidos, e use uma pipeta de cinco mililitros para dissociar suavemente os tecidos com mais pipetagem. Veja bem, a força de pipetagem apropriada é crucial para garantir um alto rendimento de células viáveis.Se a pipetagem for muito difícil, a viabilidade pode ser baixa. Considerando que, se a pipetagem for muito suave, o rendimento celular pode ser baixo. Deixe os pedaços de tecido assentarem por mais dois a três minutos.Em seguida, transfira o sobrenadante para um novo tubo e adicione três mililitros de meio Neurobasal A fresco, suplementado com soro de crescimento bovino e DNase I ao tecido. Dissocie suavemente o tecido cerebral com uma ponta de pipeta P-1000 até que não haja um grande pedaço de tecido, tomando cuidado para evitar bolhas. Use uma pipeta de 10 mililitros para filtrar a solução celular através de um filtro de células de 70 mícrons em um tubo cônico de 50 mililitros e traga o volume final da suspensão de célula única para 30 mililitros com meio Neurobasal A fresco, suplementado com soro de crescimento bovino e DNase I. Divida a suspensão celular em dois tubos cônicos de 15 mililitros, e peletizar as células neurais por centrifugação.Remova todos, exceto os últimos cinco a 10 microlitros de sobrenadante turvo e adicione três mililitros de meio neurobasal A suplementado com soro de crescimento bovino às células. Ressuspenda cuidadosamente o pellet de células e aumente o volume final para 15 mililitros com meio Neurobasal A fresco contendo 10% de soro de crescimento bovino. Filtre a solução celular através de um filtro de células de 40 mícrons em um novo tubo cônico de 50 mililitros e aumente o volume final para 30 mililitros com meio Neurobasal A fresco contendo 10% de soro de crescimento bovino.Em seguida, divida a suspensão de células filtradas entre dois tubos cônicos de 15 mililitros para centrifugação. e ressuspenda os pellets em 2,5 mililitros de tampão de classificação de células magnéticas geladas antes de agrupar as células. Após a contagem, centrifugue as células novamente e ressuspenda o pellet em 90 microlitros de tampão de classificação de células magnéticas fresco por um vezes 10 para as sete células.Em seguida, adicione 10 microlitros de contas anti-04 por um vezes 10 às sete células e misture a solução celular com movimentos suaves. Após 15 minutos a quatro graus Celsius com um movimento suave a cada cinco minutos, adicione suavemente dois mililitros de tampão de classificação de células magnéticas por um vezes 10 às sete células para uma lavagem por centrifugação e descarte o sobrenadante por aspiração cuidadosa a vácuo. Ressuspenda o pellet em 500 microlitros de tampão de classificação de células magnéticas fresco para cada uma vezes 10 a sete células e coloque uma coluna de classificação de esferas magnéticas de tamanho apropriado em seu separador magnético correspondente.Coloque um filtro de 40 mícrons na coluna e pré-enxágue o filtro com três mililitros de tampão de classificação de células magnéticas, deixando o amortecedor passar pela coluna sem deixar a coluna secar. Adicione as células ao filtro, seguido por uma lavagem de um mililitro com o tampão magnético de classificação de células. Lave a coluna três vezes com três mililitros de tampão de classificação de células magnéticas por lavagem e uma vez com meio de proliferação de oligodendrócitos.Em seguida, transfira a coluna para um tubo de 15 mililitros e use o êmbolo para lavar imediatamente cinco mililitros de meio de proliferação de oligodendrócitos fresco através da coluna. Após a contagem, dilua as células até uma densidade de revestimento apropriada e substitua a laminina de lamínulas pré-revestidas em uma placa de 24 poços com 100 microlitros de meio de proliferação de oligodendrócitos. Incube os oligodendrócitos a 37 graus Celsius e 5% de CO2 por não mais de 45 minutos para promover a adesão dos oligodendrócitos às lamínulas.Em seguida, inunde cada poço da placa de 24 poços com 500 microlitros de meio de proliferação de oligodendrócitos para uma incubação de 24 horas. No dia seguinte, substitua os sobrenadantes por meio de diferenciação de oligodendrócitos e devolva as células à incubadora até que estejam prontas para fixação. 24 horas após o plaqueamento, as células parecem ser bi ou tripolares sob microscopia de contraste de fase, uma característica do oligodendrócito proliferante em estágio inicial.A coloração por imunofluorescência mostra que 24 horas após o plaqueamento, a maioria desses pré-oligodendrócitos também demonstra marcação de NG2 e O4, enquanto a marcação com GFAP e anticorpo anti-01 é muito menos comum, sugerindo que a maioria das células neste estágio são pré-oligodendrócitos com poucos oligodendrócitos imaturos ou maduros. Às 72 horas, a morfologia dos oligodendrócitos parece ser mais complexa do que às 24 horas, e há uma frequência muito menor de células positivas para o marcador inicial de oligodendrócitos, NG2. Além disso, a maioria das células demonstra marcação de O4, e quase metade das células coradas para 01 anticorpo nesta fase, sugerindo que as células estão se diferenciando em um fenótipo mais maduro.Notavelmente, a presença de astrócitos permanece extremamente baixa. Esses resultados indicam que, ao longo do tempo, os oligodendrócitos imunomagneticamente isolados são capazes de se diferenciar in vitro no Estágio Três de maturação com muito pouca contaminação de outros tipos de células, como os astrócitos. Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como isolar oligodendrócitos primários de filhotes de camundongos neonatais usando isolamento imunomagnético.Uma vez dominada, essa técnica pode ser concluída em quatro horas, se for executada corretamente. Obrigado por assistir. Boa sorte com seus experimentos.

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociência

Neste vídeo, descrevemos um protocolo para isolar células CD11b, incluindo microglia, de cérebros de filhotes de camundongos usando classificação de células ativadas por magnetismo. Os tecidos cerebrais são homogeneizados para obter suspensões unicelulares, que são incubadas com microesferas revestidas com anticorpos anti-CD11b, seguidas por uma separação baseada em coluna magnética para purificar a população de células CD11b+.

Isolamento magnético de microglia de cérebros de filhotes de camundongos

Este vídeo demonstra uma técnica para isolar e cultivar células precursoras de oligodendrócitos (OPCs) do córtex cerebral de filhotes de camundongos.

Isolando e cultivando células precursoras de oligodendrócitos do córtex cerebral de filhotes de camundongos

Este vídeo demonstra um método para isolar células oligodendrócitos primárias de uma suspensão de células neurais obtida de um filhote de camundongo usando separação magnética. A técnica emprega esferas magnéticas revestidas com anticorpos específicos para antígenos de oligodendrócitos, permitindo o isolamento seletivo dessas células.

Isolando oligodendrócitos primários murinos usando grânulos imunomagnéticos

Este vídeo demonstra um protocolo para extrair células microgliais de lesões desmielinizantes em cérebros de camundongos usando classificação magnética de células. O protocolo envolve a dissecação do tecido cerebral lesionado contendo células microgliais, o tratamento do tecido com enzimas específicas para obter uma suspensão unicelular e a utilização de esferas magnéticas específicas do receptor microglial para isolar as células microgliais.

Isolando a microglia de lesões desmielinizantes do cérebro de camundongos usando classificação de células ativadas por magnetismo

Aqui, nós apresentamos um protocolo para isolar microglia de crias de rato pós-natais (dia 1) para experimentação in vitro. Este método improvisada de isolamento gera tanto rendimento e pureza elevados, uma vantagem significativa em relação aos métodos alternativos que permite a ampla gama de experimentação para efeitos de elucidação da biologia da microglia.

Isolamento magnético rápido e refinado CD11b da Primária Microglia com pureza e versatilidade

Um protocolo para a isolação de micróglia primária do cérebro murino é apresentado. Esta técnica ajuda a promover o entendimento atual de condições neurológicas. Centrifugação de gradiente de densidade e separação magnética são combinados para produzir rendimento suficiente de uma amostra altamente puro. Além disso, descrevem as etapas para a caracterização da micróglia.

Caracterização e isolamento de Mouse Microglia primária por centrifugação gradiente de densidade

Aqui apresentamos um protocolo para isolamento in vitro de múltiplas populações de células gliais de um SNC de camundongo. Este método permite a segregação de micróglias regionais, células precursoras de oligodendrócitos e astrócitos para estudar os fenótipos de cada um em uma variedade de sistemas de cultura.

Dissecção e isolamento da glia murina de múltiplas regiões do sistema nervoso central

Culturas primárias de micróglias são comumente usadas para avaliar novas moléculas anti-inflamatórias. O presente protocolo descreve um método reprodutível e relevante para isolar magneticamente a micróglia de filhotes recém-nascidos.

Isolamento Magnético de Células Microgliais de Rato Neonato para Culturas Celulares Primárias

Aqui, apresentamos um protocolo para isolar e purificar a microglia primária em modelos animais de doenças desmielinizantes, utilizando a triagem celular ativada por colunas magnéticas.

Isolamento da Microglia Primária do Rato por Triagem celular ativada por magnético em modelos animais de desmielinização

Até o momento, os protocolos para o isolamento simultâneo de todos os principais tipos celulares residentes no sistema nervoso central do mesmo camundongo são uma demanda não atendida. O protocolo mostra um procedimento aplicável em camundongos ingênuos e experimentais com encefalomielite autoimune para investigar redes celulares complexas durante a neuroinflamação e, simultaneamente, reduzir o número necessário de camundongos.

Isolamento Simultâneo dos Principais Tipos Celulares Residentes no Sistema Nervoso Central de Camundongos Adultos com Encefalomielite Autoimune

Descrevemos um protocolo para isolar células microgliais do hipotálamo de camundongo (ou pequenas estruturas cerebrais equivalentes) usando classificação de células ativadas magneticamente (MACS), em um tempo relativamente curto. A microglia hipotalâmica classificada por MACS pode ser usada para análise ex vivo e pode ser plaqueada para realizar ensaios in vitro .

Isolamento da microglia hipotalâmica do cérebro de camundongo adulto recém-perfundido por classificação de células ativadas por magnetismo  

Aprenda o isolamento imunomagnético de oligodendrócitos primários de camundongos neonatos para estudos de mielina. Este método rápido alcança mais de 80% de pureza em aproximadamente uma hora.

Isolamento de Fima rápida e específica de oligodendrócitos primário de Mouse

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