12 de fevereiro de 2022
Este protocolo apresenta um método para aumentar o conteúdo percentual de tumores de amostras de tecido embutidas em parafina.
Os tecidos parafina-fixados ou FFPE são frequentemente misturas de materiais tumorais e não tumorais, onde a presença de material não tumorado é frequentemente indesejada e pode, se presente em alta proporção, impactar significativamente os resultados da análise genômica, assim, a principal vantagem da macrodiscção em relação ao trabalho com tecidos não ressecados é que as seções de tecido ressecados desparafinadas resultantes podem ser coletadas para o RNA e extração de DNA, que pode então ser usado com confiança na análise genômica a jusante. Sabendo que os materiais extraídos são derivados de tecidos com maior teor tumoral com contribuições mínimas da contaminação de tecidos não tumorais. O fluxo de trabalho em várias etapas deste processo será demonstrado pelo Sr. Lee Wisner, Dr. Brandon Larsen, e eu em preparação para a seção de tecidos, pré-enlouqueça os blocos de parafina em água gelada por 10 a 15 minutos.
O resfriamento dos blocos endurece a cera enquanto a água umedece o tecido, o que, juntos, facilita o corte do tecido. Enquanto os blocos estiverem no gelo, rotule os slides do microscópio adequadamente. Encha e aqueça o banho de água a 39 graus Celsius e coloque o microtome na espessura de corte desejada.
Carregue cuidadosamente a lâmina no microtome. Coloque a lâmina no lugar e coloque o protetor de segurança até que esteja pronto para começar a seccionar os blocos. Enquanto o guarda de segurança estiver no local, insira o bloco FFPE no mandril de microtome.
Para começar, sele lentamente o bloco até que uma seção facial completa seja obtida. Isso é conhecido como de frente para o bloco. Uma vez que isso é alcançado, o bloco pode estar em seção mais rápido para obter uma fita de seções.
Uma vez cortado, transfira a fita das seções de tecido para o banho de água morna. Use fórceps para separar uma única seção de tecido da fita. Para isso, coloque a parte de trás das fórceps curvas fechadas na articulação entre as duas seções e deixe que os fórceps abram suavemente para separar as seções.
Colete a seção de tecido isolado em uma lâmina de microscópio. Para evitar bolhas de aprisionamento, insira o deslizamento do microscópio na água em um ângulo. Agite suavemente o slide para remover o excesso de água antes de colocar no rack para secar o ar.
Uma vez seco, selecione pelo menos uma das seções de tecido recém-cortadas para hematoxilina e eosina, também conhecida como H e E.Once manchada, envie o slide H e E para revisão patológica. Durante a revisão patológica, um patologista especialista revisa as lâminas de manchas H e E para determinar onde está o tecido de interesse em cada tecido. O patologista primeiro revisa todo o tecido para determinar onde os tecidos de interesse residem dentro do tecido.
Uma vez que a histologia inicial e a revisão morfológica esteja completa, o patologista usa uma caneta de marcação de slides para anotar cada slide manchado de H e E. Usando o marcador, o patologista desenha um círculo em torno do tecido de interesse, excluindo o tecido que não é de interesse. Este processo de revisão é então repetido para todos os slides manchados de H e E no projeto.
Configure o espaço de trabalho de bancada de dissecção macro que permite que cada amostra seja tratada sequencial e eficientemente. Para cada amostra, devem estar as seções de tecido montados em lâminas não manchadas correspondentes, bem como os micro tubos pré-rotulados contendo o tampão de digestão para coleta de tecidos. Carregue os slides não manchados em um rack e prossiga para o capô da fumaça para desparafinação.
Desparafinar os slides imergindo os slides em duas lavagens sequenciais de D-limonene ou CitriSolv não diluídos seguidos de uma lavagem final em 100% de etanol por dois minutos por lavagem. No início de cada lavagem, agitar suavemente a lavagem por cerca de cinco a 10 segundos. Para minimizar a carryover entre as lavagens, deixe que os slides escorra brevemente e desaja o rack na toalha de papel.
Depois das três lavagens, os tecidos agora são altamente visíveis nos slides do microscópio. Deixe os slides secarem por 10 minutos. Uma vez seco, o H e O são então colocados de bruços no banco e o tecido desparafinado colocado em cima, também de frente para baixo, alinhando o tecido desparafinado com o H e E.Uma vez corretamente alinhado, a área tumoral marcada pelo patologista no H e E é rastreada na parte de trás da lâmina da seção de tecido desparafinado.
Os slides agora marcados não manchados são mergulhados em uma solução de 3% de glicerol para minimizar a coleta estática e auxiliar os tecidos. Remova lentamente os slides mergulhados para minimizar a quantidade de solução de glicerol que se apega ao slide mergulhado. Uma vez removido, limpe a parte de trás do slide e quaisquer áreas livres de tecido na parte frontal do slide para remover o excesso de glicerol.
Em seguida, usando uma lâmina limpa, rastreie as marcas patológicas com a lâmina para quebrar a conexão entre o tecido de interesse e o resto do tecido. Observando que esse passo pode ser feito antes do mergulho do glicerol, particularmente se as marcas patológicas são complexas, pois cortar tecido seco pode ser mais fácil e também pode minimizar o risco de arrasto tecidual. O tecido fora das marcas patológicas não são de interesse.
Estes são removidos usando a borda plana da lâmina, certificando-se de que o canto da lâmina prende a parte externa das marcas patológicas. Uma vez que o tecido indesejado é removido, uma nova lâmina é usada para coletar o tecido de interesse. O tecido coletado é então removido da lâmina usando a extremidade plana de uma vara de madeira e, em seguida, transferido para um micro tubo pré-rotulado com tampão de digestão, completando assim o enriquecimento mediado do tecido tumoral mediado por macro dissecção, que agora está pronto para extração de ácido nucleico.
Para demonstrar como a macrodiscção pode afetar a análise genômica a jusante, seções teciduais de cinco linfomas difusos de células B grandes, ou DLBCL, com diferentes conteúdos tumorais foram dissecadas macroditos ou não dissecadas macro. Extrações de ácido nucleico foram realizadas nos tecidos coletados e o RNA resultante examinado utilizando o ensaio de perfil de expressão genética digital DLBCL90, que também é conhecido como o ensaio de assinatura de duplo hit. O DLBCL é composto por três subtipos moleculares distintos, ou seja, GCB, ABC, e seu subtipo intermediário denotado não classificado, que pode ser determinado usando o ensaio DLBCL90.
Este ensaio também é capaz de identificar tumores DLBCL que abrigam translocações de duplo impacto envolvendo o gene BCL2. Os resultados do DLBCL 90 são mostrados nesta tabela. Amostras dissecadas macro foram executadas duas vezes.
Uma vez usando sua concentração de estoque de RNA e uma vez usando o estoque de RNA diluído para corresponder à concentração de suas respectivas contrapartes não-macro-dissecadas. Os resultados mostram que a dissecação macro resultou em alterações de chamada de subtipo ou duplo em três das cinco amostras. A macrodiscção da amostra A não teve efeito na chamada do subtipo, mas alterou a chamada de duplo hit de negativa para não classificada, e essa alteração foi observada independentemente da entrada de RNA amostral dissecada macro.
Em contraste, a macrodiscção da amostra C não teve efeito na chamada de duplo hit, mas alterou a chamada do subtipo de GCB para não classificada, o que também foi observado independentemente da entrada de RNA amostral dissecada macro. Semelhante à amostra A, a macro-dissecção da amostra E não teve efeito na chamada do subtipo, mas alterou a chamada de duplo hit. No entanto, para a amostra E, a chamada mudou de não classificada para negativa, e novamente, o fez independentemente da entrada de RNA amostral dissecada macro.
Notavelmente, esta chamada alterada para duplo impacto negativo faz sentido biológico, dado que a amostra E foi encontrada como ABC e translocações de duplo impacto envolvendo BCL2 foram relatadas como sendo observadas exclusivamente em tumores GCB. Juntos, esses resultados destacam a importância da pureza tumoral e dos ensaios genômicos e da macrodiscção como uma ferramenta confiável para isso. Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma melhor compreensão do que é macrodiscção, a importância da revisão patológica e os benefícios do estudo obtidos pela inclusão da macro dissecção no seu fluxo de trabalho de manuseio de tecidos.
Este estudo apresenta um protocolo para melhorar o conteúdo tumoral em amostras de tecido formalin-fixadas e embutidas em parafina (FFPE). O método se concentra na macro-dissecção para isolar material tumoral, melhorando assim a precisão das análises genômicas derivadas dessas amostras.
Macrodissection-driven tumor enrichment addresses a critical challenge in genomic studies by minimizing non-tumor contamination in FFPE samples. This enables higher predictive confidence in downstream molecular profiling, directly impacting target validation and biomarker discovery. Integrating macrodissection at the tissue preparation stage enhances the reliability of genomic data for portfolio decision-making in oncology R&D.
Macrodissection is positioned at the interface of tissue processing and molecular analysis, bridging pathology review with nucleic acid extraction for genomics-driven discovery and translational research.