January 19th, 2024
Os protocolos descritos são novos métodos de visualização de estruturas periféricas na lente ocular com métodos de quantificação de imagens. Estes protocolos podem ser utilizados em estudos para melhor compreender a relação entre as estruturas da microescala do cristalino e o desenvolvimento/função do cristalino.
Nosso objetivo é determinar os mecanismos moleculares que estabelecem a intrincada arquitetura da lente e como esta arquitetura estabelecida regula a função da lente na transparência e na mudança da forma da lente. Para avançar a pesquisa em nosso campo, usamos novos métodos de imagem que nos permitem visualizar as características da lente com alta resolução espacial, e isso nos permite realizar a análise quantitativa de imagens das estruturas da lente e características celulares. A aquisição de imagens de montagem inteira é vantajosa em relação à visualização de cortes de tecido ou procedimentos de montagem plana, pois permite a preservação da estrutura geral do tecido 3D.
Isso nos permite realizar um exame morfométrico aprofundado e quantificação da estrutura do cristalino nativo. A lente é um tecido biológico integrado com funções especializadas que dependem da localização e profundidade dependentes de geometrias das células e suas estruturas associadas. A utilização dos protocolos de imagem e métodos de quantificação demonstrados permitirá uma maior compreensão de como as estruturas do cristalino e a complexa organização do cristalino são estabelecidas.
Este estudo explora os mecanismos moleculares que estabelecem a arquitetura intrincada da lente ocular e como ela regula a função da lente, especificamente a transparência e as mudanças de forma. Utilizando novas técnicas de imagem de montagem inteira, a pesquisa enfatiza a importância da alta resolução espacial para a análise quantitativa das estruturas da lente.
Quantitative whole mount imaging of the ocular lens enables high-resolution visualization of peripheral lens structures and cellular organization, supporting early discovery efforts in ocular biology. This approach provides critical morphometric data for understanding lens development, age-related changes, and disease mechanisms, directly informing target validation and mechanistic de-risking in ophthalmic R&D. Integrating these imaging protocols enhances predictive confidence at key inflection points in the discovery pipeline.
This imaging protocol integrates into the discovery continuum from early hypothesis testing through lead identification and preclinical research in ocular biology.