August 22nd, 2007
Способность манипулировать человеческой нейронных стволовых / клеток-предшественников (hNSPCs) в пробирке позволяет исследовать их полезность в качестве клеточных трансплантатов для использования в терапевтических целях, а также изучить человеческие развития нервной системы. Этот протокол представляет метод культивирования и пассажи hNSPCs в надежде на повышение воспроизводимости человеческого исследования стволовых клеток.
Привет, меня зовут Стив. Я работаю в лаборатории доктора Фланагана на кафедре патологии в Калифорнийском университете в Ирвине. Сегодня я покажу вам, как разделить человеческие нейронные клетки-предшественники.
Этот метод включает в себя кодирование новой колбы раствором человеческого фибронектина, снятие клеток с помощью буфера для диссоциации клеток, затем нейтрализацию буфера для диссоциации клеток с помощью 10% раствора сыворотки, центрирование клеточной суспензии и суспензию клеток в свежей среде, а также перенос клеточной суспензии в новую колбу. В нашей лаборатории мы культивируем человеческие нейронные клетки-предшественники, меняя половину их среды через день, и мы пропускаем их примерно раз в неделю, разделяя одну на две. Когда я прохожу через клетки, я могу пересчитать их, если хочу обменять их на эксперимент по иммунохимии или если я хочу сделать трансфекцию ядерным эффектором.
Важно использовать буфер для диссоциации клеток при упаковке клеток, потому что, во-первых, он не ферментативный, в отличие от трипсина, и гораздо мягче воздействует на клетки. Здравствуйте, мы сейчас в комнате для культивирования тканей, и прежде чем я покажу вам, как выглядит колба с человеческими клетками-предшественниками, сначала я подготовлю культуру ткани. Во-первых, я собираюсь выключить ультрафиолетовый свет и включить свет и поток воздуха.
Далее я собираюсь продезинфицировать вытяжку 70% этанолом, распылив бумажное полотенце и протерев капот. Важно распылять на бумажное полотенце 70% этанола, а не непосредственно на внутреннюю часть вытяжки, потому что распыление 70% этанола может повредить фильтр HEPA, что очень дорого. Далее я собираюсь распылить все реактивы и инструменты.
И, наконец, я собираюсь распылить вакуумные шланги, и все готово. Давайте рассмотрим эти клетки. Таким образом, эти клетки выглядят примерно на 80% сливающимися.
Это человеческие нервные клетки-предшественники, выделенные из человеческих плодов, и мы выращиваем их в колбах с Т-25. Мы делим их примерно каждую неделю, по одному-два. Теперь я готов к прохождению своих клеток.
И сначала я собираюсь принести новую колбу T 25, которую я покрывал в течение четырех часов человеческим фибронектином от BD biosciences. Поэтому я удалил раствор фибронектина. Я собираюсь промыть эту колбу BBS, прежде чем переместить ячейки в колбу.
И теперь я собираюсь вытащить клетки из инкубатора с температурой 37 градусов. Вот они. Теперь я собираюсь удалить раствор для промывки PBS из новой колбы, которая была покрыта человеческим фибронектином.
И я собираюсь добавить два миллилитра старой кондиционированной среды в новую колбу. Так что теперь мне нужно промыть свои клетки PBS, прежде чем я смогу снять его с поверхности. Итак, сначала я собираюсь удалить оставшуюся среду, добавить около двух мил PBS сразу, не смачивая клетки и не пересушивая.
Я собираюсь подождать около двух минут, прежде чем удалить PBS и ввести в продажу буфер диссоциации, чтобы снять продажи с поверхности зенитной артиллерии. Теперь я собираюсь удалить PBS, и снова я попытаюсь сразу добавить буфер для диссоциации клеток, чтобы клетки не высыхали. Итак, я собираюсь добавить 1,5 мил буфера диссоциации клеток.
И в отличие от PBS, я собираюсь добавить его непосредственно на ячейки и постараюсь охватить как можно большую площадь. Итак, я двигаю колбу из стороны в сторону, медленно добавляя этот буфер на ячейки. И я собираюсь подождать около пяти минут, пока клетки начнут отрываться от поверхности.
А колбу при комнатной температуре я оставлю в вытяжке. Как вы можете видеть здесь, клетки сначала начинают округляться вверх, а затем они начинают отрываться от поверхности, и вы можете видеть, как некоторые, некоторые клетки уже плавают. И если вы широко постучите по колбе сбоку, это поможет им оторваться.
Итак, прошло пять минут, и, как вы можете видеть, раствор стал очень плотным с клетками, которые оторвались от поверхности. И теперь я собираюсь нейтрализовать эффект буфера для диссоциации клеток, добавив 4,5 мил среды, содержащей сыворотку. Итак, я собираюсь использовать 10% инактивированную при нагревании фетальную бычью сыворотку в среде D-M-E-M-F 12, и я собираюсь добавить ее прямо на поверхность колбы, чтобы убедиться, что в ней не осталось прикрепленных клеток.
И я собираюсь, и я собираюсь аккуратно пипетировать вверх и вниз, чтобы удалить все оставшиеся клетки. А затем я собираюсь перенести раствор ячейки в коническую трубку диаметром 15 мил. И я собираюсь вращать его со скоростью тысяча оборотов в минуту в течение одной минуты.
Итак, ячейки вращаются, и у нас есть прекрасная палитра для ячеек. Я собираюсь удалить сыворотку очень, очень осторожно, не пытаясь потревожить палитру. А затем я собираюсь снова подвесить поддон в четырех миллионах носителей.
Поэтому я попробую ресуспендировать гранулу так, чтобы не осталось клеточных комков, чтобы раствор стал однородным и не содержал, не содержал комков. И поскольку я делаю разделение на один-два, я собираюсь взять две из четырех мельниц и перенести их в новую колбу, которая уже содержит два мила кондиционированной среды. И, наконец, я собираюсь пометить колбу с указанием типа ячейки, номера прохода и даты.
Это взгляд на камеры, которые мы прошли полчаса назад. И, как вы можете видеть, большинство из них прикрепились к поверхности и начали отрабатывать процессы. Вот и все, ребята.
И теперь я готов считать.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Этот протокол описывает метод культивирования и пассажирования человеческих нейрональных стволовых/предшественнических клеток (hNSPC) in vitro. Техника направлена на улучшение воспроизводимости исследований человеческих стволовых клеток и облегчение исследования нейронального развития и потенциальных терапевтических приложений.
Standardized passaging of human neural stem/precursor cells (hNSPCs) supports reproducible in vitro models for target validation and mechanistic de-risking in neurodegenerative disease research. Reliable expansion of hNSPCs enables consistent assay inputs for phenotypic screening and lead identification programs. This protocol addresses variability in stem cell culture that can confound translational biomarker studies and preclinical model fidelity.
This passaging method fits within the discovery continuum from target validation through assay optimization to preclinical model generation, where hNSPC consistency impacts data reliability across stages.