TALEN-опосредованная интеграция целевых генов: использование сконструированных последовательно-специфичных нуклеаз для точной вставки гена флуоресцентного белка в гиПСК

0 views • 4:24 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Начните с индуцированной человеком плюрипотентной стволовой клетки или суспензии ИПСК в среде. Добавьте пару активатороподобных эффекторных нуклеаз транскрипции или плазмид, кодирующих TALEN. Дополните донорской плазмидой, несущей ген флуоресцентного белка, соединенный с геном устойчивости к антибиотикам, с соседними гомологическими плечами для специфического выравнивания по локусам-мишеням.

Электропорируйте смесь для образования переходных пор в клеточных мембранах, что обеспечивает интернализацию плазмид. Попадая внутрь клеток, плазмиды, кодирующие TALEN, обрабатываются, производя TALEN - химерные белки, состоящие из сайт-специфичного ДНК-связывающего домена TALE, слитого с неспецифическим доменом расщепления эндонуклеазы рестрикции FokI.

Каждый мономер TALEN через свой ДНК-связывающий домен, состоящий из тандемных модулей повторов аминокислот, распознает и связывается с локусами-мишенями, по одному модулю на нуклеотид, на каждой цепи ДНК в противоположных ориентациях, разделенных спейсерной последовательностью. Затем домены FokI димеризуются и расщепляют ДНК в последовательности спейсера, создавая двухцепочечные разрывы с выступами.

В присутствии донорской плазмиды, содержащей гомологические плечи, комплементарные областям, фланкирующим расщепленный сайт, происходит гомологическая репарация с использованием гомологичной последовательности в качестве матрицы для синтеза репарации ДНК для моста двухцепочечных разрывов. После лигирования зазубрин промежуточный флуоресцентный белок и гены устойчивости к антибиотикам интегрируются в геном хозяина.

Обрабатывайте ИПСК с посевом на слое питающих клеток для поддержки роста с помощью антибиотических сред. Ген устойчивости к антибиотикам без промотора, приводимый в действие вышестоящим эндогенным промотором, облегчает отбор клеток, отредактированных TALEN.

Начните с однократной промывки культур iPSC PBS, затем добавьте 1 миллилитр реагента для мягкой диссоциации клеток 37 градусов Цельсия в каждую лунку и инкубируйте клетки при температуре 37 градусов Цельсия в течение примерно 5 минут. Когда более 50% клеток диссоциируют от питательного сосуда, используйте пипетку P1000 для механического разрушения любых оставшихся клеточных скоплений или прикрепленных клеток. Затем добавьте по 2 миллилитра среды Е8 в каждую лунку, и с помощью 10-миллилитровой пипетки дополнительно разложите культуры на одноклеточные суспензии.

Теперь вылейте собранные клетки в 15-миллилитровую коническую пробирку и закрутите их вниз. Повторно суспендируйте гранулу в минимальном количестве среды E8 для подсчета. Затем, после подтверждения жизнеспособности культур путем исключения трипанового синего, а также их достаточной диссоциации, переносят по 3 млн клеток в каждую из двух 15-миллилитровых конических пробирок.

Пока клетки центрифугируются, настройте систему электропорации на программу, специфичную для клеточного типа линии эмбриональных стволовых клеток человека, H9. Затем добавьте 10 мкг только гомологичного рекомбинационного донора к 1 грануле для контрольного образца и 10 мкг гомологичной рекомбинационной донорской плазмиды вместе с 5 мкг каждой плазмиды TALEN для экспериментального образца.

Затем добавьте 100 микролитров полного раствора для трансфекции первичных клеток P3 комнатной температуры в каждую из контрольных и экспериментальных гранул и повторно суспендируйте клетки. Перенесите образцы в отдельные кюветы, а затем электропорируйте образцы. Сразу после трансфекции добавьте в каждую кювету 500 микролитров среды Е8 комнатной температуры, а затем переложите пересеченные образцы ИПСК по каплям в отдельные 10-сантиметровые чашки, содержащие эмбриональные фибробласты мыши DR4.

14:46

Эффективная генерация специфических для нокина репортеров hiPSC Neural Lineage с использованием системы CRISPR/Cas9 и Cas9 Double Nickase

Related Videos

0 Views

09:51

Создание Геном человека-редакцией плюрипотентных стволовых клеток: От Ориентация в изоляцию

Related Videos

0 Views

07:42

Геном Редактирование в Astyanax mexicanus Использование Транскрипция Активатор-как эффектор Нуклеазы (Таленс)

Related Videos

0 Views

03:29

Транспозон-опосредованное редактирование генов PiggyBac в ИПСК человека: процедура интеграции интересующего гена в ИПСК человека с использованием транспозонной системы PiggyBac

Related Videos

0 Views

12:13

Цинк-палец Nuclease Enhanced генного таргетинга в человеческих эмбриональных стволовых клеток

Related Videos

0 Views

07:28

Трансфекцию, Селекция, и колонии-сбор человеческих индуцированных плюрипотентных стволовых клеток Тален ориентированные с GFP гена в AAVS1 Safe Harbor

Related Videos

0 Views

11:36

Быстрое и эффективное создание рекомбинантного человеческого плюрипотентных стволовых клеток с помощью рекомбинантному-опосредованной кассетные бирже в AAVS1 Locus

Related Videos

0 Views

08:22

ТРИФОСФАТЫ/Cas9-опосредованной целенаправленной интеграции в естественных условиях с помощью стратегию на основе присоединения гомологии опосредованной конец

Related Videos

0 Views

14:48

Эндогенного белка, пометки в человека индуцированных плюрипотентных стволовых клеток с использованием ТРИФОСФАТЫ/Cas9

Related Videos

0 Views

09:03

Введение точечных мутаций в плюрипотентные стволовые клетки человека с помощью бесшовного редактирования генома

Related Videos

0 Views

Last updated: 27 June 2026