-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Выделение CD4 + Т-клеток от мышей лимфатических узлов с помощью Miltenyi MACS очистки
Выделение CD4 + Т-клеток от мышей лимфатических узлов с помощью Miltenyi MACS очистки
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Isolation of CD4+ T cells from Mouse Lymph Nodes Using Miltenyi MACS Purification

Выделение CD4 + Т-клеток от мышей лимфатических узлов с помощью Miltenyi MACS очистки

Full Text
36,266 Views
09:47 min
November 1, 2007

DOI: 10.3791/409-v

Melanie P. Matheu1, Michael D. Cahalan1

1Department of Physiology and Biophysics,University of California, Irvine (UCI)

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Выделение лимфоцитов с использованием набора Miltenyi ПДК является надежным способом очищают клетки от целых лимфоидной гомогенатах ткани. Клетки очищали с использованием системы Miltenyi, как правило, ≥ 96% чистой. Здесь мы демонстрируем, шаги, предпринятые для изоляции CD4 + Т-клеток, одна из многих комплектов, предлагаемых Miltenyi.

Это магнит Max MIDI. В нем говорится, осторожно, чрезвычайно сильные магнитные поля. Здравствуйте, меня зовут Мелани Мэтью из лаборатории Майка Коллинза на факультете физиологии и биофизики Калифорнийского университета в Ирвине.

Сегодня мы покажем вам препарат отрицательного отбора CD четырех положительных Т-клеток с помощью биотехнологических наборов Milton. Итак, здесь у нас есть минимакс и минимакс магниты, и минимакс используется для больших разделений. Вы можете пропустить до 10 до девятой ячеек через столбец, который помещается в минимакс, а минимакс используется для гораздо меньших объемов ячеек.

Таким образом, в зависимости от того, проводите ли вы положительное или отрицательное разделение, вы будете помечать свои клетки соответствующими антителами. На них есть магнитный бич, который будет прикрепляться к магниту. В случае отрицательного выбора, ячейки, которые вас интересуют, будут проходить через столбец, и вы сможете собрать загрязнитель EL, который будет содержать интересующие вас клетки.

Я должен упомянуть, что техники, которые я покажу вам сегодня вечером, не стерильны. И поэтому, если вы хотите использовать эти клетки для культивирования клеток, вы должны делать все в капюшоне для культивирования тканей с помощью стерильных инструментов. Так что, несмотря на то, что я показываю вам подготовку к CD4-положительным Т-клеткам, многие из этих методов применимы для очистки других типов клеток с помощью крошечных биотехнологических наборов.

Итак, я удалил лимфатические узлы у мыши и покажу вам, как это сделать в деталях в седьмом выпуске книги «Подготовка лимфатических узлов Джо к двухфотонной визуализации». А теперь я собираюсь измельчить лимфатические узлы в одноклеточную суспензию внутри 70-микронного клеточного фильтра. Итак, теперь я собираюсь измельчить лимфатические узлы в одноклеточную суспензию с помощью задней части шестимиллилитрового шприца.

Лимфатические узлы находятся в RPMI внутри фильтра, и важно сделать надлежащую суспензию для одиночных клеток. И причина, по которой мы делаем это в фильтре, заключается в том, что вы хотите убедиться, что у вас нет никаких скоплений клеток. Итак, когда я закончу шлифовку, я собираюсь вытащить фильтр из фильтрующего материала, а затем использовать все, что прошло через сетчатое фильтр и одноклеточную суспензию.

Когда вы измельчаете, вы должны быть уверены, что разрушаете все ткани как можно сильнее. Эта суспензия одиночных клеток — это то, от чего мы будем очищать наши CD четыре положительные Т-клетки. Итак, теперь я закончил шлифовку ткани, и вы можете видеть, что большинство лимфатических узлов практически исчезли.

У нас все еще есть небольшие кусочки жира и своего рода оболочка лимфатического узла с небольшим количеством соединительной ткани, которая слиплась из всех шести лимфатических узлов. А теперь снимаю ситечко с ячейки. И здесь вы можете видеть, что СМИ очень мутные.

Он наполнен клетками из одноклеточной суспензии, чтобы гарантировать, что мы получим максимальное количество клеток из фильтра, и некоторые из них прилипнут к нему. Я промываю его парой мил среды, а затем помещаю всю среду в пробирку Falcon объемом 15 мил и раскручиваю ее, чтобы подвергнуть клетки последующей очистке. Итак, вот моя одноклеточная суспензия, раскрученная и гранулированная при 300 G в течение 10 минут.

Если вы думаете, что у вас будет большое количество мертвых клеток в суспензии одиночных клеток, рекомендуется использовать набор для удаления мертвых клеток от Milit Tene. Итак, теперь, когда я это забросал, я собираюсь слить среду и провести лизис эритроцитов, а затем я собираюсь посчитать клетки, а затем сделать набор для отбора CD четырех положительных Т-клеток на этих конкретных клетках. Итак, теперь я собираюсь сделать лизис эритроцитов.

Мы собираемся лизировать красные кровяные тельца, которые мы гранулировали, вместе с лимфоцитами, уменьшая осмолярность раствора, сначала добавляя воду, а затем доводя его до одного раствора, добавляя 10 X-D-B-P-S. Наши лимфоциты более устойчивы к изменению осмолярности, чем эритроциты, но мы все равно должны работать быстро, иначе наши лимфоциты будут работать, чего мы не хотим делать. Часть быстрой работы заключается в том, что я заполняю объемы, которые мне понадобятся для лизиса, прежде чем добавлять воду в систему.

Поэтому я хочу иметь возможность добавить свои 10 X-D-B-P-S-A через несколько секунд после добавления воды, чтобы убедиться, что я не лизирую свои лимфоциты и не корректирую лис эритроцитов. Поэтому я беру 900 микролитров воды. Это почти мельница и сотня микролитров 10 X-D-B-P-S.

У меня обе трубы готовы к работе. В лизис я добавляю воду, жду пару секунд, может быть, немного встряхиваю тюбик, а затем добавляю 10 X-D-B-P-S, встряхиваю тюбик еще немного. И если у вас много красных кровяных телец, которые являются лизином, вы увидите большой вид аморфной формы капли всех разрушенных клеточных мембран.

У нас здесь есть немного этого, и вы можете видеть, что это немного разрушенных клеточных мембран. Итак, после того, как я сделал лизис, на случай какой-либо ошибки при пипетировании, я предпочитаю добавлять несколько миллей среды в клетки, чтобы убедиться, что осмолярность правильная, и мы больше не продолжаем использовать лизин. Итак, теперь у меня есть лимфоциты в одноклеточной суспензии.

Опять же, я провел лизис красных кровяных телец, и я собираюсь раскрутить их и измельчить. Прежде чем я это сделаю, я собираюсь посчитать их на гемоцитометре, чтобы определить, сколько антител нам нужно добавить для набора для отбора CD четырех положительных Т-клеток. Итак, теперь я трачу ячейки в максимальном буфере, и вы можете видеть, что гранула стала намного более белой после того, как мы сделали лизис эритроцитов.

И я собираюсь провести отрицательный отбор для CD четырех положительных Т-клеток. Итак, я собираюсь слить всю среду, весь максимальный буфер, в котором я провожу ячейки. И я собираюсь пометить коктейлем антител к биотину, который является первым шагом в отрицательном отборе для CD четырех положительных Т-клеток.

А потом выдерживаю в холодильнике 10 минут. Итак, мои клетки закончили свою первоначальную инкубацию. Теперь я собираюсь добавить антибиотик к микрогранулам и положить их обратно в холодильник на 15 минут.

Итак, для этого конкретного разделения клеток мы используем колонку LS от крошечной биотехнологической компании Milit, и мы собираемся поместить ее на магнитный держатель и подготовить колонку, пропустив через нее три мельницы максимального буфера. Через нее мы собираемся открыть колонку и разместить ее так, чтобы зубцы были обращены внутрь внутрь магнита. Теперь я собираюсь добавить максимальный буфер в столбец, и вы должны увидеть, как он опускается вниз по столбцу LS и начинает капать внизу. Не беспокойтесь о том, что колонна иссякнет.

Поверхностное натяжение жидкости не даст ей пересохнуть, пока вы не добавите свои ячейки. Прежде чем добавлять ячейки, важно дать максимальному буферу полностью пропитаться через столбец. Итак, после 15-минутной инкубации с нашими магнитными шариками биотина, которые я потратил на клетки и максимальный буфер, я собираюсь слить буфер, снова суспендировать их в буферном количестве, которое соответствует нашему количеству клеток.

Так что вам придется проверить свой протокол milli tiny для этого. А затем я собираюсь нанести их на колонку, которую мы только что промыли максимальным буфером. Итак, теперь мы добавим суспензию ячеек в столбец.

И поскольку это столбец с отрицательным отбором, мы собираемся собрать клетки, которые прошли через него, и все они должны быть CD четырьмя положительными Т-клетками в данном случае. Итак, теперь я собираюсь промыть колонку максимальным буфером 12 мил, и снова мы собираем элюирование, которое должно содержать только четыре CD положительных Т-клеток. Итак, теперь я собираюсь раскрутить четыре CD-положительные Т-клетки, ресуспендировать их, а затем пометить соответствующим красителем, который я собираюсь использовать для тау-визуализации.

Я также возьму небольшую выборку клеток, которые я очистил, и помечу их анти-CD-3 и анти-CD-4, а затем проверю их на основе фактов, чтобы убедиться, что у меня есть чистая популяция CD-4-положительных Т-клеток. Итак, вот взгляд на клетки, которые мы только что раскрутили. Это должна быть популяция чистых CD 3, CD 4 положительных Т-клеток.

Итак, я только что показал вам отрицательный отбор для CD четырех положительных Т-клеток. Используя крошечный биотехнологический набор Milit, мы собираемся перенести эти клетки в мышь и использовать ее для одного из наших собственных Т-фотонных и машинных экспериментов. Удачи вам в собственных экспериментах.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Иммунологии выпуск 9 изолятор Сотовые разделения Т-клетки очистка Мышь лимфоцитов очистка Miltenyi MACS комплект

Related Videos

Выделение мышиные клетки легких Дендритные

09:04

Выделение мышиные клетки легких Дендритные

Related Videos

29.7K Views

Обогащение Т-клеток: метод выделения Т-клеток из смешанной популяции клеток с помощью магнитной сепарации

03:57

Обогащение Т-клеток: метод выделения Т-клеток из смешанной популяции клеток с помощью магнитной сепарации

Related Videos

3.8K Views

Селективное выделение CD4+ Vδ1+ γδ Т-клеток из мононуклеарных клеток периферической крови человека

06:39

Селективное выделение CD4+ Vδ1+ γδ Т-клеток из мононуклеарных клеток периферической крови человека

Related Videos

517 Views

Выделение и Th17 дифференцировки наивных CD4 Т-лимфоцитов

12:59

Выделение и Th17 дифференцировки наивных CD4 Т-лимфоцитов

Related Videos

35.2K Views

Мышь наивного CD4 + Т-клеток Выделение и В пробирке Дифференциация в Т-клеточных подмножеств

07:12

Мышь наивного CD4 + Т-клеток Выделение и В пробирке Дифференциация в Т-клеточных подмножеств

Related Videos

53.8K Views

Эффективная и высокая Метод Выход для выделения мышиных дендритных клеток подмножествах

09:09

Эффективная и высокая Метод Выход для выделения мышиных дендритных клеток подмножествах

Related Videos

15.8K Views

Выделение и активация мышиных лимфоцитах

08:08

Выделение и активация мышиных лимфоцитах

Related Videos

21.6K Views

Изоляция лимфоциты от мыши небольшой кишечной иммунной системы

11:28

Изоляция лимфоциты от мыши небольшой кишечной иммунной системы

Related Videos

55.9K Views

Изоляции и приемных передачи высоких соли лечить антиген представляя дендритные клетки

09:29

Изоляции и приемных передачи высоких соли лечить антиген представляя дендритные клетки

Related Videos

6K Views

Разбор и 2-Фотон изображений периферических лимфатических узлов у мышей

16:48

Разбор и 2-Фотон изображений периферических лимфатических узлов у мышей

Related Videos

47.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code