-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Количественная клубочковой проницаемости Флуоресцентные макромолекул Используя 2-фотонной микроск...
Количественная клубочковой проницаемости Флуоресцентные макромолекул Используя 2-фотонной микроск...
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
Quantifying Glomerular Permeability of Fluorescent Macromolecules Using 2-Photon Microscopy in Munich Wistar Rats

Количественная клубочковой проницаемости Флуоресцентные макромолекул Используя 2-фотонной микроскопии в Мюнхене крыс Wistar

Full Text
10,965 Views
11:13 min
April 17, 2013

DOI: 10.3791/50052-v

Ruben M. Sandoval1, Bruce A. Molitoris1

1Medicine/Nephrology,Indiana University School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Техника использования высокого разрешения intavital 2-фотонной микроскопии непосредственно визуализировать и количественно gloemrular поверхность фильтрации в клубочках. Этот метод позволяет прямое определение характеристик проницаемости макромолекул в нормальных и болезненные состояния.

Общая цель этой процедуры заключается в успешной визуализации фильтрационной установки нефрона и количественной оценке фильтрации флуоресцентных макромолекул через фильтрационный барьер в мочевое пространство in vivo. Это достигается путем предварительной подготовки предметного столика микроскопа для живого животного. Далее почка обнажается, и крысу помещают на сцену.

Затем идентифицируются и картографируются отдельные клубочки, а также получаются фоновые 3D-изображения. Наконец, вводится флуоресцентный альбумин. Получены 3D-объемы отдельных клубочков и количественно определена проницаемость.

В конечном счете, можно получить результаты, показывающие коэффициент фильтрации макромолекул через клубочки в почках с помощью внутрифлаконной двухфотонной микроскопии. Основное преимущество двухфотонной микроскопии заключается в том, что она позволяет одновременно количественно оценить как клубочковую фильтрацию, так и реабсорбцию и трансцитоз проксимальных канальцев у животного. В то же время, последствия этого метода выходят за рамки механистических и становятся диагностическими и терапевтическими, поскольку важно понимать как роль клубочковой фильтрации, так и проксимальных канальцев.

Реабсорбция альбумина имеет решающее значение для определения таргетности терапии. После обезболивания крысы вставьте внутреннюю венозную линию через яремную или бедренную вену и побрейте левый бок от чуть ниже грудной клетки до чуть выше левого бедра. Это операция, не требующая выживания.

Положите крысу на правый бок так, чтобы левая бритая сторона была обращена вверх. Убедитесь, что он лежит на скамье ровно с вытянутой осанкой и не приседает, передние лапы касаются друг друга, а задние лапы касаются друг друга очень нежно. Пальпируйте почку, чтобы определить, где она естественным образом лежит в забрюшинном пространстве, и с помощью острия нарисуйте прямую линию, параллельную телу, с помощью пары зубных щипцов.

Возьмите кожу и используйте пару гемостатиков, чтобы сжать кожу вдоль нарисованной линии, чтобы раздавить ткань и предотвратить кровотечение с помощью хирургических ножниц. Разрежьте вдоль разреза. Используйте ту же процедуру для разрезания внешнего мышечного слоя, который при необходимости является тонким.

Используйте гемостатики для предотвращения кровотечения для разреза во внутреннем мышечном слое, который обнажит брюшину. Повторно пальпируйте почку, чтобы оценить размер. Зажмите линию разреза меньше почки, гарантируя, что разрез находится прямо над почкой.

Лучше всего сделать этот разрез слишком маленьким и при необходимости сделать его больше. Найдите почку и с помощью щипцов захватите окружающий жир, двигаясь к нижнему полюсу почки ладонью над ладонью. Как только нижний полюс почки будет достигнут, осторожно протяните почку через разрез, очень осторожно сжимая ниже почки, чтобы вывести ее наружу.

Если разрез слишком маленький, раздавите мышечный слой и разрежьте его, чтобы расширить его. Повторите процедуру экстериоризации почки после экстериоризации почки крысы и помещения крысы на предметный столик микроскопа для визуализации. Если ваш микроскоп оснащен моторизованным предметным столиком, способным отмечать местоположения с помощью двухпроходного флуоресцеинового стержня, доминного фильтра и маломощного объектива, найдите и центрируйте отдельные клубочки, которые будут выглядеть как пустые круглые структуры, окруженные проксимальными канальцами.

Наличие присущей ей желто-оранжевой автофлуоресценции для каждой локации, переключение турели на более мощную цель погружения в воду и получение 3D-данных для каждого клубочка. Убедитесь, что капиллярные петли и пространство Боумена хорошо видны. Использование псевдоцветовой палитры поможет визуализировать эти структуры.

Затем, сосредоточившись на поверхностном кровеносном сосуде, медленно вводите флуоресцентный альбумин, убедившись, что дано время для системного распределения молекул с низким коэффициентом клубочкового цинка или GSC, важно максимизировать значения интенсивности в плазме, но не достигать уровней, которые насытят фотодетекторы в микроскопе. Это повышает обнаруживаемость отфильтрованных молекул Подождав примерно 10 минут, чтобы любые потенциальные фрагменты с малой молекулярной массой очистились, получите трехмерные объемы с интервалом в один микрон для использования при расчете альбумина с помощью программного обеспечения для обработки изображений метаморфов. Загрузите наборы 3D-данных вместе с фоновыми изображениями для каждого клубочка в объеме, содержащем флуоресцентный альбумин.

Найдите поверхностную капиллярную петлю с достаточным пустым пространством между ее определенными краями и краем капсулы Боумена. На заднем плане объем. Найдите ту же фокальную плоскость, которая должна содержать все визуальные признаки изображения, содержащего альбумин.

Выберите интересующую область в пределах интересующей вас капиллярной петли и обратите внимание на показания средней интенсивности. Затем выберите область в пространстве Боумена и обратите внимание на среднее значение интенсивности. Они будут использоваться в качестве фоновых значений для количественной оценки.

Выберите аналогичную область в пространстве Боумена на изображении, содержащем альбумин. Проделайте это по крайней мере для двух других областей, чтобы получить значение средней интенсивности в пространстве Боумана. Выберите капиллярную петлю с самой яркой интенсивностью плазмы и нарисуйте область вокруг нее.

Затем, используя функцию порога, выделите яркие значения в циркулирующей плазме, избегая темных полос, которые являются циркулирующими эритроцитами. Обратите внимание на средние значения интенсивности выбранного пространства плазмы. Важно отдавать предпочтение светлым областям плазмы, потому что факторы в крови могут привести только к недооценке уровня флуоресценции плазмы.

Введите значения в таблицу Excel, чтобы рассчитать GSC, где GSC равен разнице необработанного пространства лучника. Интенсивность минус фон Интенсивность пространства Боумена деленная на разность интенсивности необработанной капиллярной петли минус фоновая интенсивность капиллярной петли. Поглощение отфильтрованного флуоресцентного альбумина происходит преимущественно в раннем сегменте проксимальных канальцев.

S-образный, эта панель показывает поперечное сечение клубочка и S-одного, взятого у мюнхенской крысы-суфлера Wistar, примерно через 20 минут после инфузии первоначального коллоса техасского красного RSA. Открытие пространства Боумена и жадное поглощение альбумина красным цветом показано в сегменте S one. На этой панели показана неглубокая 3D-проекция того же набора данных размером 20 микрон, а здесь показана проекция с меньшей мощностью, сделанная примерно через 60 минут после инфузии.

Эти изображения демонстрируют, что внутривитальная микроскопия может позволить визуализировать судьбу введенного материала после фильтрации, подтверждая в некоторой степени наблюдаемый здесь коэффициент фильтрации, показанный здесь, является изображениями, полученными с поверхности клубочка. Эта панель является фоновым изображением, и это изображение было сделано примерно через 12 минут после инфузии сывороточного альбумина техасской красной крысы. Эти две панели нарисованы в псевдоцвете.

Три небольшие области интереса, нарисованные в пространстве Боумана, используются для расчета средней интенсивности флуоресцентного альбумина, который переместился через фильтрационный барьер. Средние значения интенсивности для отдельных регионов были представлены в выделенной области в диалоговом окне «Показать статистику региона». Значение GSC для альбумина 0,0111, полученное для этого отдельного клубочка, находится в пределах диапазона у этой линии мюнхенских звездных крыс в состоянии кормления.

После этой процедуры могут быть выполнены другие методы, такие как количественный и качественный анализ других почечных структур, чтобы ответить на дополнительные вопросы, такие как возможный транспорт макромолекулы после фильтрации в мочевое пространство после ее развития. Этот метод позволил исследователям в области физиологии почек исследовать динамические физиологические и патофизиологические процессы не один раз, а в продольном направлении. Со временем так и стало.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Медицина выпуск 74 биомедицинской инженерии молекулярной биологии клеточной биологии анатомии физиологии хирургии нефрологии почек Двухфотонные микроскопии почки клубочки клубочковой Коэффициент просеивания (GSC) проницаемость проксимальных канальцев протеинурия макромолекул 2 Фотон микроскопия прижизненной визуализации Мюнхен Вистар крысы животной модели

Related Videos

Аспирация жидкости из клубочков мыши: метод аспирации клубочковой жидкости из мыши с помощью двухфотонной микропунктуры

06:43

Аспирация жидкости из клубочков мыши: метод аспирации клубочковой жидкости из мыши с помощью двухфотонной микропунктуры

Related Videos

2.8K Views

Высокая пропускная метод измерения скорости клубочковой фильтрации в сознании Мыши

07:07

Высокая пропускная метод измерения скорости клубочковой фильтрации в сознании Мыши

Related Videos

44.2K Views

Количественная Single микрососудов проницаемость в изолированном крови-перфузии Rat Подготовка легких

07:22

Количественная Single микрососудов проницаемость в изолированном крови-перфузии Rat Подготовка легких

Related Videos

9.9K Views

Одноканальный анализ и Кальций изображений в подоцитов в Свежевыделенные клубочков

12:19

Одноканальный анализ и Кальций изображений в подоцитов в Свежевыделенные клубочков

Related Videos

11.6K Views

В естественных условиях Blood - brain барьер проницаемость Assay мышей с использованием дневно помечены Трейсеры

09:35

В естественных условиях Blood - brain барьер проницаемость Assay мышей с использованием дневно помечены Трейсеры

Related Videos

26K Views

Оценка функции почек в моделях мыши клубочковых болезни

09:16

Оценка функции почек в моделях мыши клубочковых болезни

Related Videos

18.5K Views

Micropuncture боуменова пространства в мышей, облегчается 2 фотона микроскопия

07:37

Micropuncture боуменова пространства в мышей, облегчается 2 фотона микроскопия

Related Videos

9.7K Views

Трансдермальные измерение скорости клубочковой фильтрации в мышей

07:25

Трансдермальные измерение скорости клубочковой фильтрации в мышей

Related Videos

23.2K Views

Высокочувствительная измерение гломерулярной проницаемости у мышей с флуоресцеином изотиоцианат-полисукроз 70

09:16

Высокочувствительная измерение гломерулярной проницаемости у мышей с флуоресцеином изотиоцианат-полисукроз 70

Related Videos

7.3K Views

Использование 2-фотонной микроскопии для количественной оценки влияния хронической односторонней обструкции мочеточника на клубочковые процессы

11:47

Использование 2-фотонной микроскопии для количественной оценки влияния хронической односторонней обструкции мочеточника на клубочковые процессы

Related Videos

2.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code