May 20th, 2020
Цель этого протокола заключается в использовании молекулярной динамики моделирования для изучения динамических структурных изменений, которые происходят из-за активации мутаций белка киназы EGFR.
Молекулярно-динамическое моделирование является вычислительной техникой, которая может быть использована для изучения молекулярных движений и может выявить конформациальные изменения, критически важные для понимания биохимической и клеточной функции. Прощупыв диапазон динамических движений, доступных для макромолекулы трудно. Использование результатов молекулярно-динамического моделирования в сочетании с экспериментальными данными позволяет оценить их функциональную значимость.
Мы продемонстрируем с помощью молекулярно-динамического моделирования, как мутации, наблюдаемые у онкологических больных, влияют на EGFR, нацеленные на подтверждения и связывание лигандов. Чтобы подготовить дикий тип апо активной структуры EGFR нашей киназы, откройте программу визуализации Kymera, и под меню файла, нажмите принести ID.Select базы данных белка банка данных и указать код банка данных белка 2GS2. Для создания недостающих структурных элементов 2GS2 приобретайте эти сегменты у других структур EGFR.
Чтобы построить пять остатков глутамата 746 аланина 750 ELREA удаления в EGFR, нажмите любимый, последовательность, и показать последовательность, чтобы открыть дикий тип 2GS2 последовательности. И в результате окна последовательности, нажмите редактировать и добавить последовательность, чтобы выбрать удаление мутанта FASTA формат последовательности. В окне выравнивания выберите структуру и модель или гомологию.
В всплывающем окне укажите композитную структуру 2GS2 в качестве шаблона и мутантную последовательность в качестве запроса, который будет смоделирован, а затем выберите модель мутанта из полученных моделей на основе оценки zDOPE и визуального осмотра. Чтобы подготовить неактивную структуру киназы EGFR дикого типа, откройте структуру Банка данных 2GS7 и добавьте недостающие сегменты из других структур EGFR, моделируя форму мутанта удаления, как это было продемонстрировано. Для подготовки активной структуры киназы КИНАзы с использованием киназы СПС, используя структуру банка данных 2ITX в качестве принципиальной структуры, строя недостающие сегменты с использованием других структур EGFR и моделируя форму мутанта удаления с помощью модельера, как это было продемонстрировано.
Чтобы построить асимметричную структуру димера дикого типа EGFR, откройте 2GS2 в Kymera и нажмите инструменты, более высокую структуру порядка и ячейку единицы для преобразования структуры в биологическую сборку, которая содержит активатор и приемник киназы в асимметричном расположении. Выберите структуру 2GS2 и введите копии, затем выберите и сохраните один асимметричный димер из нескольких копий димера в результате операций симметрии. Чтобы построить аланин 702 валин мутант, выберите инструменты, редактирование структуры, и ротамеры, чтобы заменить аланин 702 с валином.
Откройте структуры в Maestro и нажмите кнопку мастера приготовления белка, затем выберите добавить атомы водорода и заполнить недостающие атомы боковой цепи и нажмите предварительной обработки. Чтобы определить состояния протонации ионизируемых остатков при рН 7.0, нажмите уточнить и использовать PROPKA для оптимизации ориентации аспарагина, глутамина и гистамина остатков для водорода связи, а затем свести к минимуму структуру. Чтобы настроить систему моделирования, откройте программу LEAP и импортировать силовое поле Amber FF14SB и молекулы воды TIP3P.
Для систем, связанных с АТФ, параметры импорта АТФ и загрузка структуры. Solvate структуры в октагедральной коробке с явным TIP3P молекулы воды, которая простирается 10 ангстремов во всех направлениях от поверхности атомов белка. Проверьте систему ремня и добавьте необходимые ионы, чтобы нейтрализовать его.
Чтобы достаточно моделировать биомолекулярные системы, добавьте дополнительные атомы натрия и хлорида в коробку моделирования, чтобы довести концентрацию соли в системе до 0,15 молара, затем создать и сохранить топологию и координировать файлы системы, чтобы служить в качестве входных данных для последующего моделирования производства. Используя Amber, изначально энергия сводит к минимуму систему моделирования, чтобы обойти любые неблагоприятные конфигурации. В файле минимизации ввода отрегулируйте максимальную переменную цикла для общего цикла минимизации и количество циклов, чтобы указать количество циклов для крутого алгоритма спуска.
Используйте переменную веса удерживающего устройства, чтобы применить удерживаемую силу на растворимые атомы, указанные параметром маски удерживающих устройств. Провести минимизацию в несколько шагов, постепенно снижая сдержанность применяется на растворимых атомов от 25 до 0 килокалорий на моль ангстрем квадрат, а затем использовать команду для запуска минимизации. Нагрейте систему в течение 100 пикосекунд от 0 до 300 Кельвин и использовать команды, чтобы установить 10 килокалорий молар на квадратный ангстрем сдержанность на растворимых атомов.
Затем используйте команду для выполнения отопления. Equilibrate системы в течение 900 пикосекунд под изотермальной изобарик ансамбль и установить девять ангстрем расстояние отсечения для дальнего электростатического взаимодействия, постепенно снизить растворимый атом сдержанность до 0,1 килокалории на моль ангстрем площади и завершить equilibration с безудержной пять наносекунд моделирования. Вы запустите уравнив с командой, как указано.
Отрегулируйте текст, чтобы производственное моделирование проводилось в течение 100 наносекунд, при этом конформации сохраняются каждые 10 пикосекунд, а затем запустите моделирование с командой, как указано. Чтобы визуализировать образец конформации во время моделирования киназы дикого типа и мутанта EGFR, откройте файлы топологии янтаря и соответствующие файлы траектории в Visual Molecular Dynamics. А используя удобные вторичные представления структуры, проанализируйте общую структурную динамику белков с записанной траектории.
Затем просмотрите конкретные взаимодействия между атомами и остатками интереса, такие как каталитически необходимый лизин 745-глутамат 762 соляной мост. Кроме того, сохраните несколько конформаций, отобранных во время моделирования в формате Protein Data Bank, и откройте конформации в Kymera. Используйте вариант свахи, чтобы наложить структуры на начальную или медианную структуру и отобразить медианную структуру в твердом, а остальные выровненные структуры в выцветших белых, чтобы позволить визуализацию записанных структурных движений с большей ясностью.
Проанализировать глобальную стабильность ЕГФР дикого типа и мутантов и изучить гибкость различных структурных единиц, импортировать типологию янтаря и соответствующие файлы траектории. В корневом среднем квадратном файле ввода отклонения укажите атомы позвоночника исходной структуры в качестве ссылки на корневую квадратную установку. В корневом среднем файле ввода квадратных колебаний укажите атомы C-альфа исходной структуры в качестве ссылки на корневую квадратную установку.
Затем запустите анализ с помощью программы CPPTRAJ и навести данные вывода. Кроме того, выровнять конформативные ансамбли и окрасить каждый остаток на основе корня атома C-альфа означает квадратное отклонение, открыть конформации в Kymera и выровнять их с вариантом свахи. Выберите инструменты, изображение и визуализацию по атрибуту.
Выберите остатки конформации ансамблей и установите корень C-альфа среднее квадратное отклонение в качестве атрибутов, а затем нажмите OK. Цепной след конформаций будет окрашен в синий, белый или красный цвета, отражающие области высокой, средней и низкой структурной стабильности соответственно. Для анализа взаимодействий водородных связей между АТФ и ЭГФР дикого типа и удаления подготовьтесь к сценарию CPPTRAJ для выполнения этой задачи. Укажите анализ для интермолекулярных водородных связей только с переменной ноинтрамол и определите водородную связь с расстоянием донора-приемора менее 3,5 ангстремов и углом связи больше или равен 135 градусам.
Для оценки внутримолекулярных взаимодействий, например, между каталитически важными остатками лизина и глутамата, укажите лизин в качестве донора водорода и глутамата в качестве остатков рецептора и запустите сценарий, как указано, чтобы позволить анализ результата. Чтобы вычислить связывающие свободные энергии между АТФ и как диким типом, так и удалением EGFR, подготовьте рецептор лиганда фазы газа и лигандовый рецепторный комплекс белковых файлов Банка данных в программе LEAP и установите АТФ в качестве лиганда и EGFR в качестве рецептора. Установите обобщенное родился радио значение M Бонд I2. Затем генерируйте топологию янтаря и координируйте файлы для файлов банка данных о газовой фазе Protein Data Bank.
Аналогичным образом, для расчета связывания свободных энергий между активатором и приемником киназы дикого типа и аланина 702 валиновых EGFRs, укажите приемник киназы как лиганд и активатор киназы в качестве рецептора и сохранить соответствующую топологию и координировать файлы. Подготовь молекулярную механику обобщенного файла ввода поверхностной поверхности и установите значение IGB до двух, а соляной - до 0,1. Затем с помощью mmpbsa.
скрипт, доступный в Amber, введите команду, как указано для выполнения связывающих энергетических вычислений и анализа выходных данных. Во время этого репрезентативного 100 наносекундного моделирования, аланин 702 валин мутант показал повышенную конформационную стабильность juxtamembrane B сегмента, вероятно, из-за ужесточения гидрофобных взаимодействий по сравнению с диким типом EGFR. Аланин 702 валин мутант также выставлены более низкой свободной энергии связывания между активатором и приемником киназы по отношению к дикого типа EGFR, представляющих более благоприятные димер взаимодействия, которые поддерживают активную конформацию EGFR киназы.
Моделирование мутации удаления привело к снижению колебаний атома С-альфа функционально ключевой альфа-C-спирали по сравнению с ЭГФР дикого типа, продлевая время активного состояния EGFR. Удаление мутации также привело к частому образованию водородных связей между боковой цепью полярных атомов лизина 745 и глутамата 762, ключевое взаимодействие для enzymatic деятельности EGFR по сравнению с диким типом EGFR. Кроме того, количество водородных связей между АТФ и EGFR было больше для удаления мутанта, чем для дикого типа EGFR.
Удаление мутации также привело к внутреннее движение EGFR неактивное состояние альфа-C-спирали, структурные изменения, ожидаемые во время перехода к активному государству. В отличие от этого, альфа-C-спираль неактивного EGFR дикого типа сохранила свою первоначальную конформацию. Для оценки воздействия мутаций крайне важно выбрать соответствующие конформационные состояния структур и правильно подготовить и уравночные эти структуры.
Важно сочетать молекулярно-динамическое моделирование с экспериментальными исследованиями, поскольку синергия между этими методами приносит пользу интерпретации результатов и может сообщить дополнительные влажные лабораторные эксперименты.
Этот протокол описывает использование молекулярно-динамических симуляций для исследования структурных изменений в белке киназ EGFR вследствие активирующих мутаций. Целью исследования является улучшение понимания того, как эти мутации влияют на связывание лигандов и конформацию белка.
Molecular dynamics simulations enable mechanistic de-risking of EGFR-targeted drug discovery by linking activating somatic mutations to structural and energetic consequences. This approach supports target validation and predictive confidence in early discovery by quantifying how mutations alter kinase conformation, ATP binding, and dimer stability. Insights inform go/no-go decisions and prioritize compounds with higher likelihood of clinical efficacy.
The method integrates into early discovery workflows to evaluate target vulnerability before lead identification, using structural simulations to prioritize mutants with high predictive confidence for downstream validation.